Cel ćwiczenia: Opis stanowiska - MEMS lab
Transkrypt
Cel ćwiczenia: Opis stanowiska - MEMS lab
ZASTOSOWANIE MIKROSYSTEMÓW W MEDYCYNIE LABORATORIUM Ćwiczenie nr 4 MIKROCYTOMETR DO BADANIA KOMÓREK BIOLOGICZNYCH Cel ćwiczenia: Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z budową i warunkami działania mikrocytometru typu „T” z detekcją fluorymetryczną. W ćwiczeniu badany będzie poziom sygnału fluorescencyjnego pochodzącego od mikrokulek fluorescencyjnych, które stanowią model dla oocytu/zarodka bydła lub trzody chlewnej. Opis stanowiska: 1. 2. 3. 4. 5. Krzemowo-szklany mikrocytometr typu „T” Źródło światła: laser o długości fali emisji 532 nm i mocy 5 mW Kamera CCD z filtrem optycznym górnoprzepustowym FEL600 nm oraz kartą TV Zasilacz do kamery (12 V) oraz lasera (3V) Komputer z oprogramowaniem Rys. 1. Schemat budowy mikrocytometru Rys. 3. Idea pracy mikrocytometru Rys. 2. Obszar detekcji fluorymetrycznej Rys. 4. Schemat układu pomiarowego ________________________________________________________________________ ___ www.memslab.pl 1 Przebieg ćwiczenia: 1. Zaznajomienie się z układem pomiarowym 2. Pomiary sygnału fluorescencyjnego: Włączyć zasilacz Sprawdzić, czy są podłączone laser oraz kamera CCD do zasilacza Włączyć komputer i zalogować się na konto Student (hasło: Student) Odsunąć kamerę CCD, tak aby widoczny był cały chip Pobrać kulki zawieszone w roztworze za pomocą pipety Wprowadzić kulki do kanału cieczowego Umieścić kamerę CCD nad chipem, tak aby jeden otwór wylotowy nie został przykryty przez kamerę 8. W programie VirtualDub wybrać opcję nagrywania (File→ Capture AVI) 9. Określić ścieżkę zapisu filmu (File→ Set Capture File) 10. Sprawdzić, czy jest widoczna na ekranie komputera strefa detekcji fluorescencji (skrzyżowanie „T”) 11. Przez otwór wylotowy nieprzykryty przez kamerę bardzo powoli zasysać ciecz z kulkami 12. Rozpocząć proces nagrywania filmu (Capture → Capture Video) 13. Film powinien trwać ok. 4-8s. 14. W czasie nagrywania filmu jedna kulka powinna przepłynąć przez skrzyżowanie „T” tak, aby dobrze widoczny był sygnał fluorescencji 15. Wyłączyć nagrywanie filmu poprzez wybranie Capture → Stop Capture 16. Procedurę powtórzyć dla 10 kulek 17. Po wykonaniu pomiaru należy przepłukać chipa w wodą dejonizowanej 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 3. Analiza wyników pomiarów: Wszelkich analiz dokonuje się na podstawie obrazów graficznych zarejestrowanych kamerą cyfrową. Zmiana rozmiaru filmu 1. Uruchomić program VirtualDub. 2. Wczytać plik z filmem (File → Open video file). Pojawią się dwa okna z wczytanym filmem. 3. Następnie zmienić rozmiar analizowanego pliku (Video → Filters → Add…; pojawi się dodatkowe okienko, w którym wybieramy filtr resize i zadajemy szerokość 320 i wysokość 240 pikseli po czym zatwierdzamy przyciskiem OK. dwukrotnie). 4. Kolejnym krokiem jest zapisanie filmu w formacie .avi (File → Save as AVI). 5. Czynność tą wykonujemy dla każdego z nagranych filmów. Analiza sygnału fluorescencji 1. Uruchomić program OPTOLABCARD software. 2. Wybrać ścieżkę zapisu wygenerowanego po analizie pliku xls oraz zdjęcia (Change dir). ________________________________________________________________________ 2 ___ www.memslab.pl 3. Wczytać wybrany film do analizy (Select movie). 4. Po wczytaniu pliku w oknie po prawej stronie pojawi się obraz do analizy. Analizowany obraz 5. W celu dokładnego zaznaczenia analizowanych punktów należy powiększyć analizowany obszar poprzez naciśnięcie Enlarge area i zakreślenie tylko obszar kanału oświetlanego. 6. Należy wybrać obszary, które będą poddane analizie. W tym celu należy wybrać 2 pola do analizy (1 - czerwone i 2 - zielone). Jedno z nich powinno znajdować się w obszarze świecenia wiązki światła (sygnał fluorescencji kulki), a drugie poza nim (sygnał tła), ale w obszarze kanału. Pola do analizy nie powinny przekraczać wymiarów 2×2. W celu dokładnego narysowania pola do analizy można się posługiwać precyzyjnymi strzałkami. Analizowane pola Rozmiar analizowanych pól Precyzyjne strzałki 7. W celu dokonania analizy zaznaczonych pól należy wcisnąć przycisk Measure. Spowoduje to pojawienie się krzywych pomiarowych w lewej części programu ________________________________________________________________________ ___ www.memslab.pl 3 (Rys. 5) oraz automatycznie zostaną wygenerowane pliki xls oraz bmp do katalogu, który był wskazany na początku. Krzywe pomiarowe 8. Powyższe czynności należy wykonać dla co najmniej 10 kulek. 4. Opracowanie wyników: 1. Wygenerowany w trakcie analizy plik xls zawiera trzy kolumny: 1 – czas, 2 – sygnał fluorescencji z pola czerwonego, 3 – sygnał fluorescencji z pola zielonego 2. Dla pojedynczej kulki należy odjąć maksymalny sygnał tła od maksymalnego sygnału fluorescencji w programie Excel lub Origin. Z uzyskanej różnicy należy wybrać maksimum. 3. Czynności te należy powtórzyć dla każdej kulki. 4. Końcowym wynikiem analizy danych pomiarowych jest wykres intensywności fluorescencji w zależności od numeru kulki. UWAGA !!! Po przeprowadzeniu serii pomiarów należy mikrocytometr przepłukać wodą dejonizowaną. Przykładowe pytania: Gdzie znajdują zastosowanie urządzenia typu Lab-on-a-Chip? Przedstawić schemat budowy mikrocytometru wraz z opisem funkcji poszczególnych elementów. Jakie rodzaje detekcji oraz jakie detektory stosuje się w mikrocytometrach? Jakie metody są wykorzystywane do oceny jakości komórek rozrodczych? Przed wykonaniem ćwiczenia proszę zapoznać się z materiałami pomocniczymi przygotowanymi do ćwiczenia. ________________________________________________________________________ ___ www.memslab.pl 4