Charakterystyka hodowlana stada szczurów LEW tl/tl
Transkrypt
Charakterystyka hodowlana stada szczurów LEW tl/tl
Szkoła Główna Gospodarstwa Wiejskiego w Warszawie Wydział Nauk o Zwierzętach Anna Kosowska Charakterystyka hodowlana stada szczurów LEW tl/tl – zwierzęcego modelu osteopetrozy Praca dyplomowa na kierunku „Zwierzęta laboratoryjne – hodowla, utrzymanie i użytkowanie” Praca wykonana pod kierunkiem Dr inż. Marty Gajewskiej Warszawa, 2 lipca 2016r. 1 SPIS TREŚCI 1. WSTĘP'''''''''''''.'.''str. 3 a. HODOWLA ''''''''.''.....str. 4 b. UTRZYMANIE ZWIERZĄT''....''.str. 5 c. ROZRÓD ''''''''''.''.str. 7 2. CEL PRACY ''''''''''''''.str. 9 3. MATERIAŁY I METODY '''''..'.''.str. 9 4. WYNIKI I DYSKUSJA '''''''..''.str. 11 a. WYNIKI ROZRODU''''..''.'.str. 11 b. PORÓWNANIE RECESYWNYCH HOMOZYGOT Z RODZEŃSTWEM'''''''''str. 13 c. ANALIZA GENETYCZNA''''...'str. 20 5. DYSKUSJA - MODEL SZCZURZEJ OSTEOPETROZY. ZNACZENIE ZACHOWANIA MUTACJI'..'''''''.str. 21 6. WNIOSKI'''''''''''''''..str. 24 7. PIŚMIENNICTWO..''''''''.'''str. 26 2 1. Wstęp Zwierzęta laboratoryjne stanowią modele szeregu chorób człowieka, wśród nich wielu chorób rzadkich, czyli występujących z częstością mniejszą niż 1 na 1000 urodzeń. W celu analizy patogenezy, zapobiegania lub leczenia choroby wykorzystuje się fakt, że podstawowe procesy biologiczne są podobne u różnych gatunków, więc jest możliwe ich porównanie. Jedną z takich chorób rzadkich jest osteopetroza - uwarunkowana genetycznie choroba kośćca. W chorobie tej dochodzi do zaburzenia ilości i jakości materiału tkanki kostnej, co powoduje zmniejszoną wytrzymałość kości i jest przyczyną złamań. Ważną rolę w utrzymaniu prawidłowego metabolizmu tkanki kostnej ma odpowiedni stosunek kościogubnych komórek (osteoklastów). kościotwórczych W sposób (osteoblastów) cykliczny zachodzi do komórek wewnętrzna przebudowa tkanki kostnej, u człowieka dorosłego około 10 % masy kostnej jest wymienione w ciągu roku ( Manolagas i wsp. 2000). Kość taka cechuje się zmniejszoną objętością jamy szpikowej. Zredukowana ilość szpiku powoduję, że jest zmniejszona produkcja elementów morfotycznych krwi. Ograniczona jest również przestrzeń dla przebiegających przez kość nerwów i naczyń krwionośnych. W przebiegu osteopetrozy wszystkie kości są dotknięte chorobą, jednak, jak wykazują badania radiologiczne, nasilenie zmian nie jest równomierne - niektóre kości wykazują większą gęstość od pozostałych. Właściwy model zwierzęcy powinno cechować podobieństwo do schorzenia występującego u ludzi, umożliwiając badanie etiologii oraz możliwości leczenia. Szczurzy model osteopetrozy „toothless” tl/tl wywołany jest spontaniczną recesywną mutacją autosomalną, która powoduje znaczne obniżenie jakości tkanki kostnej. U zwierząt dotkniętych tym defektem stwierdza się znaczny niedobór osteoklastów, któremu towarzyszy niedobór makrofagów otrzewnowych. Osteopetrotyczne szczury mają dużo gorszy metabolizm w stosunku do rodzeństwa. Wyraża się to poprzez gorsze przyswajanie pokarmu, słabszą odporność organizmu. Dodatkowo ich zdolność termoregulacji jest słaba, gdy nie są ogrzewane przez rodzeństwo to marzną. Ich cechą charakterystyczną jest to, że są dużo mniejsze niż rówieśnicy i często nie dożywają roku. Charakterystyczne jest dla nich również obniżenie 3 odporności i bezpłodność. Jedną z najbardziej typowych cech mutantów (której zawdzięczają one swoją nazwę) jest brak zębów (toothless) (ryc.1). Ryc. 1. Homozygota w wieku 16 dni. Widoczny brak zębów Hodowla Stado szczurów tl/tl utrzymywane jest od 1992 roku w Zwierzętarni Katedry i Zakładu Histologii i Embriologii Warszawskiego Uniwersytetu Medycznego. Zwierzęta pochodziły z Uniwersytetu Medycznego w Massachusetts USA. Mutacja ta wystąpiła spontanicznie w ośrodku, z którego pochodziły. Obecnie prowadzenie hodowli szczurów LEW tl/tl ma na celu utrzymanie zmienności w obrębie stada niekrewniaczego, przy jednoczesnym zachowaniu tej cennej mutacji. Hodowla opiera się na właściwej selekcji oraz odpowiednim doborze do kojarzeń. Planowane kojarzenia mają wskazać zwierzętach homozygotyczne, a jednocześnie muszą być prowadzone w taki sposób, by zapobiegać wzrostowi inbredu. 4 Szczury tl/tl są niezwykle rzadkimi i trudnymi do hodowli zwierzętami. Trudności w hodowli wynikają ze specyfiki tego stada. Genotyp jakiego poszukujemy to homozygoty recesywne, jednak są one bezpłodne, z tego powodu do kojarzenia używa się płodne heterozygoty, posiadające gen recesywny. Zasadniczym problemem powstającym podczas planowania kojarzeń i wyboru zwierząt do dalszej hodowli jest to, że zwierzęta te nie są genotypowane, a obecność genu recesywnego u heterozygot, nie ujawnia się fenotypowo w żaden sposób. Przydatność zwierząt do dalszej hodowli i ocena czy posiadają gen recesywny odbywa się dopiero na podstawie analizy urodzonego potomstwa. Samicę użytkuję się przeważnie tylko raz, więc kojarzy się prawie wszystkie urodzone samice. Samce wybierane do dalszego użytkowania pochodzą z miotów, w których urodziła się przynajmniej jedna recesywna homozygota.. Po kilkukrotnym skojarzeniu samca, jeśli nie da potomstwa, w którym urodzi się recesywna homozygota, wykreśla się go z użytkowania. Do dalszych kojarzeń zostawia się samce dające mutanty. Trudne jest tu stosowanie typowych metod kojarzeń z unikaniem pokrewieństwa (np. systemu hanowerskiego), ponieważ z jednej strony chcemy zapobiec wzrostowi homozygotyczności a z drugiej staramy się uzyskać jak najwięcej homozygot recesywnych. Zdarza się, że w celu zachowania opisywanej mutacji niezbędne jest zastosowanie kojarzenia krewniaczego. Kolejną specyfiką jest poligamiczność hodowli. Prowadzenie hodowli monogamicznej znacznie wydłużyłoby czas oczekiwania na recesywne homozygotyczne potomstwo. Dodatkowo zwiększyłby się czas sprawdzania nosicielstwa pojedynczego samca, co w konsekwencji, mogłoby doprowadzić do zestarzenia się zwierząt i zatrzymania rozrodu. Szczury tl/tl utrzymuje się w zatem systemie kojarzeń haremowych, gdzie do dwóch, trzech samic dokładany jest samiec. Ciąża trwa 21 dni. Zwierzęta ze stada tl/tl są bardzo wrażliwe na stres, Obecność samca podczas i po porodzie jest elementem stresującym, co mogłoby skutkować zagryzieniem młodych. Aby nie niepokoić samicy przed porodem około 14 dnia ciąży samica jest umieszczana w indywidualnej klatce. Utrzymanie zwierząt Stado utrzymywane jest w warunkach konwencjonalnych, w pomieszczeniach z klimatyzacją, regulowaną dobą świetlną (12h/12h) oraz regulowaną temperaturą 22-240C . Warunki utrzymania są wystandaryzowane, co zapewnia ujednolicenie 5 zdrowotne. Wszystkie zwierzęta w zwierzętarni podlegają okresowej kontroli zdrowia. Ocena bakteriologiczna i parazytologiczna jest prowadzona zgodnie z wytycznymi zalecanymi dla zwierząt laboratoryjnych i jest wykonywana przez Instytut Onkologii w Warszawie. Zwierzęta są sprawdzane na obecność bakterii (Mycoplasma sp., sp., Salmonella Yersinia pseudotuberculosis, Bordetella bronchiseptica, Corynobacterium murium Kutscheri, Proteus sp., Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca, Citrobacter sp., Streptococcus pneumoniae, Staphylococcus aureus) oraz pasożytów (Giardia muris, Spironucleus muris, Syphacia sp., Eimeria sp., Ectoparasites). Ze względu na posiadaną zmianę genetyczną homozygoty tl/tl, jak wcześniej wspomniano, są w dużo gorszej kondycji zdrowotnej niż zwierzęta bez takiej mutacji. Znaczący wpływ na rozród i utrzymanie zwierząt w dobrej kondycji mają warunki w jakich zwierzęta przebywają. Konieczne jest zapewnienie odpowiedniej paszy o dobrej jakości oraz, w celu uzupełnienia braków żywieniowych wynikających z osłabionego genami wchłaniania, odpowiednich dodatków żywieniowych. Wydaje się na podstawie doświadczenia, że mleko dla niemowląt ma najbardziej właściwy skład, pokrywający potrzeby żywieniowe tych zwierząt. Szczury żywione są paszą granulowaną pełnoporcjową dla zwierząt laboratoryjnych Labofeed H. Pasza i woda dostępne są ad libitum. Dla zwierząt bezzębnych pokarm jest specjalnie przygotowywany. Granulki paszy są namaczane w gorącej wodzie i po ostygnięciu, podaje się je szczurom. Ilość tak przygotowywanej paszy jest jednorazowa. Nie może ona zostać na dłużej, ponieważ mogłaby ulec zepsuciu. Oprócz namoczonych granulek, zwierzęta te dostają również pulpę zrobioną m.in. z mleka dla niemowląt. Dodatkowo do karmienia zwierząt bezzębnych wykorzystuje się powstały z paszy miał (ryc.2.). . Ryc. 2 Miał z paszy, którym karmione są szczury bezzębne 6 Zwierzęta homozygotyczne recesywne nie mogą być utrzymywane pojedynczo. Wiąże się to z faktem, że są mniejsze i słabsze od rówieśników i wymagają dogrzewania przez nie. Do około 30 dnia życia utrzymuje się młode bezzębne z matką i rodzeństwem. Po tym czasie zwierzę osteopetryczne umieszcza się w klatce z dwójką rodzeństwa. Rozród Stado LEW tl/tl, podobnie jak inne szczury są zwierzętami synantropijnymi i mogą rozmnażać przez cały rok, jednak można u nich zauważyć pewną okresowość związaną z rytmem biologicznym. Pomimo, iż zapewniony mają właściwy cykl świetlny - dzień/noc (12/12), to lepsze wyniki rozrodcze obserwujemy latem i na wiosnę. Liczba miotów roku, w których jest homozygota recesywna jest niewielka. Samice są kojarzone. Dojrzałe, trzymiesięczne samice kojarzy się raz na dwa miesiące, w systemie haremowym. W ciągu jednego pokolenia na trzydzieści siedem miotów tylko w kilku (ostatnio w sześciu) jest mutant (ryc.3). Tak mała liczba związana jest ze słabą przeżywalność tych zwierząt, a także wynika z losowego wyboru rodziców do kojarzeń, gdzie nie mamy pewności czy użyte zwierzęta niosą allel recesywny. Podobnie jak w przypadku innych szczurów laboratoryjnych samice (heterozygotyczne i homozygoty wolne od mutacji) z tego stada osiągają dojrzałość płciową w wieku około 8 tygodni a samce w wieku około 12 tygodni. Samice przejawiają cykl rujowy o całkowitej długości ok. 5 dni, przy czym sama ruja trwa niewiele ponad dobę. Do hodowli używa się samice w wieku około 12 tygodnia życia, kiedy to uzyskać można najlepsze wyniki hodowlane. Samice są użytkowane najczęściej raz. Kojarzenie samicy 4 – 5 miesięcznej po raz kolejny, kończy się najczęściej niedonoszeniem ciąży lub nieodchowaniem młodych, jeśli się urodzą. Na podstawie obserwacji stwierdzono obniżenie mleczności u matek, używanych po raz kolejny. Samce są płodne do około roku czasu. Po tym czasie przestają interesować się samicami, następuje u nich spadek masy ciała, obniżenie odporności, często na łapach zaczynają się pojawiać odleżyny. 7 Na płodność i plenność tych zwierząt wydaje się w istotny sposób wpływać mutacja, jaką w sobie noszą. Powoduje ona m.in. osłabienie wskaźników rozrodczych (plenność, płodność). Oznacza to bardzo często problemy z zapłodnieniem i donoszeniem ciąży przez samice heterozygotyczne. Dużym problemem jest kanibalizm samic w stosunku do noworodków. Szczury są to zwierzęta kierujące się instynktem i tendencją do pozostawiania jak najsilniejszego i najlepszego potomstwa. Dosyć częstym jest usuwanie z miotu młodych, prawdopodobnie najsłabszych. Nie ma więc pewności, czy te co rodzą się martwe lub bardzo słabe i ulegają zjawisku kanibalizmu, nie są to recesywne homozygoty. Wybierając zwierzęta do dalszej hodowli, bierzemy pod uwagę ich pochodzenie (preferowane są osobniki z miotów, w których była homozygota recesywna. Ryc. 3. Graficzne przedstawienie liczby miotów gdzie pojawiły się zwierzęta bezzębne w stosunku do miotów gdzie nie było mutantów brat"m" 11.10.13 408 ur.12.01.2014 6(5♀1♂) ur. 13.11.14r. 8(5♀3♂) ur. 15.06.14r. brat"m" 11.10.14 409 ur.12.01.2014 brat"m" 11.10.15 410 ur.12.01.2014 6(5♀1♂) ur. 13.11.14r. 8(4♀3♂+1♀b z) ur. 31.05.14r. 12(6♀6♂) ur.30.05.14r. brat"m" 11.10.16 syn "m" 411 412 ur.12.01.2014 ur.19.01.2014 12(7♀5♂)ur. 3.12.14r 418 ur.31.05.2014 7(3♀4♂)ur. 1.04.15r 10(5♀5♂)ur. 7.02.15r 419 ur.31.05.2014 12(7♀5♂)ur. 6.04.15r 11(7♀4♂)ur. 12.04.15r 420 ur.31.05.2014 7(6♀1♂)ur.15. 05.15r 6(3♀3♂)ur.13. 08.15r 6(3♀3♂)ur. 17.06.15r 7(2♀5♂)ur. 5.04.15r 10(7♀3♂)ur. 7.06.15r 9(4♀1♂)ur.14. 08.15r 11(5♀6♂)ur.4. 10.15r 10(3♀7♂)ur.25 .09.15r * syn "m" 413 ur.19.01.2014 406 415 ur.4.03.2014 5(1♀4♂) ur.7.5.15r. 1(1♀) ur. 29.03.15r. 406 416 ur.4.03.2014 4(2♀2♂) ur.25.10.14r. 6(1♀3♂) ur.25.10.14r. 424 ur.18.02.2015 8(4♀4♂) ur.26.09.15r. 9(5♀4♂) ur.22.07.15r. 421 ur.17.01.2015 422 ur.17.01.2015 10(3♀7♂) ur.21.06.15r. 6(2♀4♂) ur.12.10.15r. 3(1♀2♂) ur.20.10.15r. 11(3♀8♂)ur.13. 12(5♀6♂)ur.1 12.15r 4.08.15r 7(2♀5♂)ur. 17.01.15r 7(3♀2♂+1♀bz 1♂bz) ur.18.02.15r. 423 ur.18.02.2015 6(1♀3♂) ur.12.8.15r. 7(4♀1♂+1♀bz 1♂bz) ur.13.09.15r. 8(2♀6♂)ur.14. 4(1♀1♂+2♂bz 06.15r ) ur.29.08.15r. syn "m" 414 ur.19.01.2014 3(1♀1♂+1♀bz 1) ur.14.12.15r. 6(3♀2♂+1♂bz) ur.15.12.15r. Czerwony kolor oznacza mioty, w których urodziły się recesywne homozygoty. 8 2. Cel pracy 1. Ocena parametrów hodowlanych stada LEW tl/tl. 2. Ocena wybranych parametrów morfologicznych zwierząt tl/tl i ich prawidłowego rodzeństwa. 3. Przetestowanie, czy znana mutacja w genie Csf1 (insercja 10pz) jest odpowiedzialna za zmiany obserwowane u szczurów tl/tl. 4. Opracowanie testu pozwalającego określać genotyp zwierząt używanych do hodowli. 3. Materiał i metody. W celu oceany parametrów rozrodu badanych zwierząt wykorzystano dane hodowlane szczurów LEW tl/tl z dwóch pokoleń, 90 i 91. Oceną morfologiczną objęto 7 zwierząt (4szt. homozygoty tl/tl, 3szt. zwierząt nie wykazujących objawów mutacji) z pokoleń 90 i 91. U badanych szczurów przeanalizowany następujące cechy: masę ciała, długość ciała, długość czaszki . Do badań molekularnych wykorzystano zgromadzony wcześniej materiał tkankowy pochodzący od zwierząt tl/tl (4 szt.) i zwierząt niewykazujących objawów mutacji (3szt.). DNA wyizolowano zestawem GenomicMini (A&A Biotechnology, Polska), zgodnie z protokołem producenta dla tkanek zwierzęcych. Startery dla mutacji opisanej w pracy Wesenbeeck i wsp. (2002) zaprojektowano w programie Primer3 (http://frodo.wi.mit.edu/) (tab.1). Startery Csf1agF i Csf1agR zostały użyte do oceny produktu na żelu agarozowym. 9 Tab. 1. Startery użyte w badaniach. nazwa sekwencja 5’-3’ startera Csf1agF AAGGAAGCGAACGAACCAG Csf1agR GCCACGGTTGCAGCTTAC długość produktu długość produktu tl wt 123 pz 113 pz Reakcję PCR przeprowadzono wg standardowych warunków opisanych poniżej (tab.2a,2b.). Ocenę wielkości fragmentów wykonano na 4% żelu agarozowym wysokiej rozdzielczości Metapfore (NuSieve, USA) z dodatkiem bromku etydyny. Jako markera wielkości użyto DNA low range ladder (Fermentas, Litwa). Tab. 2a. Reakcja PCR – skład mieszaniny reakcyjnej: Składnik Objętość na 1 próbkę ReadyMix (2 x ReadyMix) 5µl Startery (10µM) 0,1 µl x 4 (lub x 2)* Woda 2,2 µl (lub 2,4 µl)* DNA (80 ng/µl) 2,4 µl Tab. 2b Reakcja PCR - profil termiczny: Etap reakcji PCR Temperatura Czas denaturacja wstępna 94°C 3 min. denaturacja 94°C 30 s przyłączanie starterów 55°C 30 s wydłużanie starterów 72°C 1 min. wydłużanie końcowe 72°C 3 min. utrwalenie produktu 4°C ∞ cykl* 10 4. Wyniki i dyskusja: Wyniki rozrodu Liczebność miotów nie jest stała i nie jest cechą typowa dla stada. Samice rodzą zarówno po 8-10 jak też po 1-2 młode. Średnia liczebność miotów, w których pojawił się mutant wynosi około 6 szt. a w miocie bez homozygoty recesywnej około 8 szt (tab.3). W hodowli dąży się do wyeliminowania samic rodzących mała liczbę młodych. Szczury „bezzębne” muszą pozostawać stale w towarzystwie heterozygotycznego rodzeństwa. W przypadku, gdy urodzi się mała liczba młodych w miocie, rodzeństwo, u którego nie ujawniła się mutacja a może być nosicielem recesywnego allelu, nie zostanie użyte do dalszej hodowli. Tab. 3.Porównanie liczebności miotów Liczba zwierząt w miocie, gdzie urodziła się bezzębna homozygota Liczba zwierząt w miocie bez homozygoty recesywnej 8 7 7 4 3 6 średnia Odchylenie standartowe 5,83 1,94 10 11 6 9 6 6 7 8 3 11 12 10 9 8,31 2,59 Przebieg postnatalnego wzrostu młodych uzależniony jest zarówno od czynników genetycznych, jak i środowiskowych. Homozygoty tl/tl w pierwszym okresie swojego wzrostu nie różnią się fenotypowo od rodzeństwa nie wykazującego znamion mutacji. (Ryc.4.) 11 Ryc. 4. Rodzeństwo homo – i heterozygotyczne w wieku 16 dni Różnice te zaczynają być widoczne w wieku około trzech tygodni, kiedy to zaczyna zanikać laktacja u matek. Dorosłe homozygoty są nawet o połowę mniejsze od rodzeństwa (ryc.5). Ryc.5. dorosłe samce; osobniki mniejsze są to osteopetryczne samce, samiec na górze – ich brat z jednego miotu 12 Porównanie recesywnych homozygot z rodzeństwem, u którego mutacja się nie ujawnia Cechy homozygoty recesywnej • Obfite porfiryny przy oczach • Mniejsza masa ciała w stosunku do rodzeństwa • Wyraźnie mniejsze od rodzeństwa • Wolniejsze ruchy • Nastroszona, dosyć rzadka (brzydka) sierść, • Mniej odporne • Brak zębów Zwierzęta osteopetrotyczne cechuje mniejsza masa ciała. Potwierdza to analiza wskaźników morfologicznych. Średnia masa ciała zwierząt osteopetrycznych wynosi 174,5 g natomiast zwierząt bez upośledzonego fenotypu to aż 400,67 g. W przypadku miotów gdzie jest więcej niż jedna homozygota recesywna, różnice są również między tymi osobnikami. Różnice te przedstawiają wykresy (wyk. 1, wyk. 2, wyk. 3) Objaśnienia: BZ – zwierzę bezzębne, osteopetrotyczne NORM – zwierzę nie wykazujące objawów mutacji dł. ciała - mierzona od nosa do nasady ogona długość czaszki – mierzona od nosa do nasady uszu 13 1. miot z którego pochodziły oceniane zwierzęta: 5 szt.(3 ♀1♂ + 1 ♂ bz) ur. 15.02.2016r Rodzeństwo; dwa samce urodzone 15.02.2016r 1 ♂ bz. ur. 15.02.2016r (pomiar wykonany w wieku trzech miesięcy): • Masa ciała – 152g • Długość ciała – 16 cm • Długość ogona – 14 cm • Długość czaszki – 3 cm 1 ♂ ur. 15.02.2016r (pomiar wykonany w wieku trzech miesięcy): • Masa ciała – 398g • Długość ciała – 22 cm • Długość ogona – 16 cm • Długość czaszki – 5 cm 2. miot z którego pochodziły oceniane zwierzęta: 5szt.( 3♀1♂ + 1 ♀ bz) ur. 14.12.2015r 14 Rodzeństwo; samice urodzone 14.12.2015r. 1 ♀ bz. ur. 14.12.2015r (pomiar wykonany w wieku pięciu miesięcy): • Masa ciała – 176g • Długość ciała – 16 cm • Długość ogona – 14 cm • Długość czaszki – 4 cm 1 ♀. ur. 14.12.2015r (pomiar wykonany w wieku pięciu miesięcy): • Masa ciała – 276g • Długość ciała – 21 cm • Długość ogona – 19 cm • Długość czaszki – 5 cm 15 3. miot z którego pochodziły oceniane zwierzęta: 4 szt.(1 ♀1♂ + 2 ♂ bz) ur. 29.08.2015r Rodzeństwo; samce urodzone 29.08.2015r 1 ♂ bz. ur. 29.08.2015r (pomiar wykonany w wieku dziewięciu miesięcy): • Masa ciała – 144g • Długość ciała – 14 cm • Długość ogona – 12 cm • Długość czaszki – 4 cm 1 ♂ bz. ur. 29.08.2015r (pomiar wykonany w wieku dziewięciu miesięcy): • Masa ciała – 226g • Długość ciała – 17 cm • Długość ogona – 13 cm • Długość czaszki – 4 cm 1 ♂ ur. 29.08.2015r (pomiar wykonany w wieku dziewięciu miesięcy): • Masa ciała – 528g • Długość ciała – 23 cm • Długość ogona – 20 cm • Długość czaszki – 5,5 cm 16 Tab.4. Porównanie mas ocenianych zwierząt. Masa ciała BZ Masa ciała NORM 152 398 176 276 144 528 226 ŚREDNIA 174,50 400,67 ODCHYLENIE 36,93 126,02 STANDARDOWE Wyk. 1 Porównanie masy ciała zwierząt osteopetrycznych i ich rodzeństwa 17 Tab. 5. Porównanie długości ciał ocenianych zwierząt Długość ciała BZ Długość ciała NORM 16 22 16 21 14 23 17 ŚREDNIA ODCHYLENIE 15,75 22,00 1,26 1,00 STANDARDOWE Wyk. 2 Porównanie długości ciała zwierząt osteopetrycznych i ich rodzeństwa 18 Tab. 6. Porównanie długości czaszki ocenianych zwierząt Długość czaszki BZ Długość czaszki NORM 3 5 4 5 4 5,5 4 0 ŚREDNIA 3,75 3,88 ODCHYLENIE 0,50 2,59 STANDARDOWE Wyk. 3 Porównanie długości czaszki zwierząt osteopetrycznych i ich rodzeństwa 19 Analiza genetyczna Przeprowadzone testy wykazały u badanych zwierząt obecność mutacji opisywanej wcześniej przez Wesenbeeck i wsp. (2002) (Ryc. 5). Zastosowanie pary starterów Csf1agF i Csf1agR pozwala na zaproponowanie prostego testu, umożliwiającego genotypowanie zwierząt przed włączeniem ich do hodowli. Jak widać na załączonym zdjęciu możliwe jest jednoznaczne określenie genotypu zwierzęcia i na tej podstawie wybranie do hodowli zwierząt heterozygotycznych. Ryc. 5. Wyniki przeprowadzonych testów za pomocą techniki PCR Objaśnienia skrótów: tl - mutanty, wt - osobniki wolne od mutacji, het - heterozygota, M -marker wielkości 20 Dyskusja 5. Model szczurzej osteopetrozy – znaczenie zachowania mutacji tl/tl Prowadzenie badań nad osteopetrozą bez udziału zwierząt byłoby praktycznie niemożliwe. Badań nad szczurzym modelem osteopetrozy oraz możliwościami jej leczenia podjął się m. in. Prof. Wojtowicz. W cyklu swoich wieloletnich badań opisał fenotyp szczegółowo stwierdzany u szczurów tl/tl. Celem jego badań było znalezienie przyczyn zahamowanej resorpcji tkanki kostnej. Profesor Wojtowicz i inni badacze wykazali, że na proces resorpcji i kościotworzenia wpływają różne czynniki, m.in. hormony i cytokiny. Tworzą one stymulatory i inhibitory resorpcji kościotworzenia. Czynnikami stymulującymi resorpcję kości jest m.in. aktywna witamina D3- 1,25(OH) 2D3, cytokiny hematopoetyczne, będące czynnikami wzrostowymi (M-CSF) oraz RANKL-ligand RANK. Głównym inhibitorem resorpcji kości są osteoprotegryna (OPG), transformujący czynnik wzrostu β (TGF-β), kalcytonina i estrogeny. Osteoklasty powstają z jednojądrowych komórek prekursorowych. Różnicowanie się prekursorów osteoklastów jest możliwe pod wpływem cytokiny M-CSF (ang. Macrophage colony stimulating factor)- czynnik stymulujący powstawanie kolonii komórkowych linii monocyt-makrofag. (ryc. 6.) Ryc. 6. Proces dojrzewania osteoblastu. Stwierdzony u osteopetrycznych mutantów szczurzych niedobór MCSF, stworzył nowe możliwości terapeutyczne osteopetrozy, to właśnie badaniom na tym 21 modelu zwierzęcym można przypisać pojawienie się nowych metod leczenia. Wykazano, że osteopetroza może być wynikiem deficytu w genie CSF-1. Powoduje to, że kości mutantów tl/tl są znacząco zmienione. Ponadto podawanie egzogennego MCSF spowodowało znaczną poprawę parametrów u mutantów. U młodych zwierząt nastąpiło przyspieszenie wzrostu masy ciała i wzrostu kości długich, poprawiła się morfologia nasady kości poprzez zwiększenie resorpcji kości, nastąpiło zwiększenie objętości szpiku kostnego. Wykazano również, że zawartość minerałów w kościach długich u młodych tl/tl mutantów nie było znacząco różne od heterozygotycznego rodzeństwa, natomiast krystalizacja minerałów w kości była słabsza w porównaniu z kontrolą (Marks i wsp. 1992) W innym badaniu prowadzonym na szczurach toothless stwierdzono, że mutacja powoduje znaczne zahamowanie resorpcji kości ma skutek dużego deficytu osteoklastów i ich prekursorów. Badanie wykazało, że przebudowa kości jest mocno obniżona. Terapeutyczne dla tego schorzenia okazało się, podobnie jak w poprzednim badaniu, podawanie czynnika CSF-1. Powoduje to przywrócenie aktywności kościotwórczej (Wojtowicz i wsp. 1997) Działanie czynnika CSF-1 zostało potwierdzone w innym badaniu przeprowadzonym na szczurach z łagodniejszą formą mutacji (mib/mib). Podawanie CSF-1 spowodowało poprawę procesów przebudowy kości, nastąpiła normalizacja liczby osteoklastów oraz ich funkcjonowania.( Wojtowicz i wsp. 1998) Badania prowadzone na szczurzych mutantach w innym ośrodku, zdają się potwierdzać uzyskane wyniki. Zmapowano i zsekwencjonowao gen niosący mutację tl/tl. Wykazano tu korzystny wpływ podawania MCSF. Poprawie ulegają obserwowane zmiany fenotypowe. Najbardziej podatne na poprawę są makrofagi otrzewnowe i populacje osteoklastów trzonu i nasady kości. Dowiedziono jednocześnie, że MCSF jest czynnikiem niezbędnym również w czasie rozwoju płodu Podawanie tego czynnika po porodzie daje mniejsze korzyści od oczekiwanych (Van Wesenbeeck i wsp.2002). Kluczowa rola MCSF w utrzymaniu prawidłowej homeostazy kości u szczurów tl/tl podkreślają jest w innym badaniu (Dobbins i wsp. 2002). Uważa się, że w mutacji tej białko Csf1 jest skrócone i nie może osiągnąć biologicznej aktywności. Zaburzenia homeostazy spowodowanej nieprawidłowym działaniem białka nie można odwrócić 22 wykonując przeszczepy szpiku kostnego od zdrowego rodzeństwa. Mutacja szczurów tl/tl została zmapowana i poprzez porównanie tego regionu z homologicznym regionem mysim i ludzkim, stwierdzono, że jest to ta część genomu w której znajduje się gen odpowiadający odpowiada za kodowanie białka Csf1. Wyniki pokazały, że osteopetroza u szczurów tl/tl jest efektem 10-nukleotydowej insercji sekwencji kodującej genu Csf1. Zaproponowany w niniejszej pracy test genetyczny pozwoli na precyzyjniejszy dobór zwierząt do kojarzeń, przy jednoczesnym zachowaniu zmienności genetycznej (unikanie kojarzeń krewniaczych). Pozwoli również na ograniczenie namnażania zwierząt, poprzez zmniejszenie liczby klatek hodowlanych niezbędnych do utrzymania mutacji w hodowanym stadzie. Będzie to praktyczne wdrożenie zasady 3R do hodowli tej grupy zwierząt. 23 6. Wnioski 1. Przeprowadzona analiza wykazała, ze wskaźniki rozrodcze takie jak dojrzałość płciowa i hodowlana w stadzie LEW tl/tl jest podobna jak u innych szczurów laboratoryjnych. To, co je wyróżnia to zdecydowanie przydatność do dalszej hodowli. Samice w stadzie LEW tl/tl użytkuje się znacznie krócej w porównaniu do innych grup szczurów hodowanych w naszej jednostce. 2. Badania wykazały, że średnia wielkości miotów, w których jest bezzębna homozygota w porównaniu do miotów gdzie nie było mutanta jest podobna i nie różni się znacząco od innych szczurów utrzymywanych w laboratoriach. 3. Przedstawiona analiza morfologiczna stada LEW tl/tl wykazała, że szczury tl/tl w porównaniu do zdrowego rodzeństwa wykazują znacząco mniejszą masę ciała, długość ciała oraz długość czaszki. 4. Przeprowadzona analiza genetyczna wykazała obecność mutacji w genie Csf1. Obecność mutacji w układzie homozygotycznym ujawnia się fenotypowo m.in. poprzez zmniejszenie rozmiarów ciała, skrócenie długości życia, brak zębów oraz powoduje bezpłodność. 5. W przeprowadzonym badaniu użycie odpowiednich starterów pozwoliło na wprowadzenie testu pozwalającego określić genotyp zwierząt. Losowy dobór zwierząt do dalszej hodowli znacznie zwiększa liczbę osobników niezbędnych do utrzymania tej cennej mutacji. Zastosowanie testu umożliwiającego genotypowanie pozwoli znacznie ograniczyć tę liczbę. 24 Piśmiennictwo David E Dobbinsa, Raman Soodb, Akira Hashiramotoc, Carl T Hansend, Ronald L Wildere, Elaine F Remmers (2002): Mutation of macrophage colony stimulating factor (Csf1) causes osteopetrosis in the tl rat. Biochem Biophys Res Commun.;294(5):1114-20. S.C.Manolagas (2000): Birth and death of bone cells: basic regulatory mechanisms and implications for the pathogenesis and treatment of osteoporosis. Endocr Rev;21(2):115-37 Liesbeth Van Wesenbeeck, Paul R. Odgren, Carole A. MacKay, Marina D'Angelo, Fayez F. Safadi,Steven N. Popoff, Wim Van Hul*, Sandy C. Marks, Jr.(2002):The osteopetrotic mutation toothless (tl) is a loss-of-function frameshift mutation in the rat Csf1 gene: Evidence of a crucial role for CSF-1 in osteoclastogenesis and endochondral ossification. Proc Nat Acad Sci USA.;99(22):14303-8. Marks SC Jr., Wojtowicz A, Szperl M, Urbanowska E, MacKay CA, Wiktor-Jedrzejczak W, Stanley ER, Aukerman SL (1992): Administration of colony stimulating factor-1 corrects some macrophage, dental, and skeletal defects in an osteopetrotic mutation (toothless, tl) in the rat. Bone;13(1):89-93 Wojtowicz, A. Dziedzic-Goclawska, A. Kaminski, W. Stachowicz, K. Wojtowicz, S.C. Marks Jr., M. Yamauchi,(1997): Alteration of mineral crystallinity and collagen cross-linking of bones in osteopetrotic toothless (tl/tl) rats and their improvement after treatment with colony stimulating factor1. Bone;20(2):127-32 Wojtowicz A., Yamauchi M, Sotowski R, Ostrowski K. (1998): Normalization of periodontal tissues in osteopetrotic mib mutant rats, treated with CSF-1. J Periodontal Res.;33(8):486-90 25