ANALIZA POLIMORFIZMU GENU 16S rRNA SZCZEP¬W

Transkrypt

ANALIZA POLIMORFIZMU GENU 16S rRNA SZCZEP¬W
!.!,):!0/,)-/2&):-5'%.53R2.!3:#:%0¬7-9#/"!#†
4%2)5-45"%2#5,/3)3#/-0,%8:79+/2:934!.)%-4%#(.)†
+)!2$2!
!NALYSISOFPOLIMORPHISMOF3R2.!GENEINSTRAINSOF-YCO†
BACTERIUMTUBERCULOSISCOMPLEXBY!2$2!METHOD
2OBERT$7OJTYCZKA$ANUTA)DZIK-AŒGORZATA+ÃPA-ICHAŒ7IECZOREK*ERZY0ACHA
+ATEDRAI:AKŒAD-IKROBIOLOGII7YDZIAŒU&ARMACEUTYCZNEGOZ/DDZIAŒEM-EDYCYNY,ABORATORYJNEJW3OSNOWCU
gL’SKIEGO5NIWERSYTETU-EDYCZNEGOW+ATOWICACH
Streszczenie
W rutynowej diagnostyce mikrobiologicznej, jedynie
stwierdzenie obecności prątków w badanym materiale
metodą hodowli potwierdza istnienie procesu chorobowego. Obecnie coraz częściej poszukuje się różnych
technik molekularnych, które umożliwiłyby nie tylko
identyfikację, ale także różnicowanie prątków w obrębie rodzaju.
Celem badań było określenie przydatności techniki ARDRA do identyfikacji prątków gruźlicy i ich różnicowania wewnątrzgatunkowego.
Badania przeprowadzono na 30 szczepach Mycobacterium tuberculosis complex z użyciem starterów opartych
na genie 16S rRNA, oraz trzech enzymów restrykcyjnych: HindIII, EcoRI i HaeIII. Warunki reakcji dobrano
doświadczalnie.
Analizując otrzymane wyniki największą różnorodność
w profilach restrykcyjnych uzyskano w przypadku enzymu HaeIII, mniejszą przy zastosowaniu enzymu EcoRI, a najsłabszą dla enzymu HindIII.
Podsumowując, można stwierdzić, że technika ARDRA
przy doborze szerokiego panelu różnych enzymów restrykcyjnych może stanowić skuteczne narzędzie diagnostyczne do identyfikacji szczepów Mycobacterium
sp., oraz ich różnicowania.
Summary:
In routine microbiological diagnostics, detection of mycobacteria in examined material, through the cultivation,
confirms morbidity. In our paper we tested usefulness of
ARDRA for identification of tubercule bacilli and their
differentiation inside species. Experiments were carried out with Mycobacterium tuberculosis complex and
starters based on 16S rRNA and 3 restriction enzymes
HindIII, EcoRI and well as HaeIII. Reaction conditions
were got experimentally.
It was observed that restriction profiles were most diverse when HaeIII was used and the most weak for Hind
III. So we showed that ARDRA can be a useful diagnostic tool for identification of Mycobacterium as well as
their species differentiation.
Key words: ARDRA, Mycobacterium tuberculosis complex, 16sRNA
Słowa kluczowe: ARDRA, Mycobacterium tuberculosis complex, 16sRNA
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
COPYRIGHT‚'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
–ŸœkUŸžŸ¤°°U
'˜ ւ
Gruźlica to jedna z najstarszych chorób poznanych przez
człowieka, która nadal odpowiedzialna jest za miliony zgonów każdego roku.
W rutynowej diagnostyce mikrobiologicznej, jedynie
stwierdzenie obecności prątków w badanym materiale metodą hodowli potwierdza istnienie procesu chorobowego.
Dlatego coraz częściej poszukuje się innych technik m. In.
molekularnych, które umożliwiłyby nie tylko identyfikację,
ale także umożliwiałyby różnicowanie prątków w obrębie
rodzaju [1].
W chwili obecnej diagnostykę molekularną szczepów
Mycobacterium tuberculosis complex (MTC), opiera się
głownie, na wykorzystaniu techniki PCR z zastosowaniem fragmentu insercyjnego IS6110 lub fragmentu genu
gyrB jako miejsca docelowego do przyłączenia starterów.
Technika ta, choć skuteczna do identyfikacji kompleksu
MTC jako czynnika etiologicznego przebiegającego procesu chorobowego, nie nadaje się do różnicowania szczepów w obrębie MTC lub w badaniach epidemiologicznych [2,3].
Taką zaletę posiada technika ARDRA (amplified rDNA
restriction analysis), która opiera się na amplifikacji fragmentu genu 16S rRNA a następnie na wykorzystaniu enzymów restrykcyjnych do otrzymania profili restrykcyjnych
danego gatunku. Następnie porównując otrzymane profile
z profilami referencyjnymi gromadzonymi w bibliotece (library of ARDRA profiles) można precyzyjne i z wysoką czułością przeprowadzić skuteczna identyfikację [3].
RqŸ7-J-Í
Celem badań było określenie przydatności techniki ARDRA do identyfikacji prątków gruźlicy i ich różnicowania
wewnątrzgatunkowego przy użyciu starterów opartych na
genie 16S rRNA.
R |J¬p-Ÿ7-J-Í
Badania przeprowadzono na 30 szczepach Mycobacterium tuberculosis complex z użyciem starterów opartych na
genie 16S rRNA,
MBUZ 1 5’- GAC GAA CGC TGG CGG CGT GTC
TAA C – 3’
MBUZ 2 5’ – CGT CCC AAT CGC CGA TC – 3’,
które dają produkt amplifikacji o wielkości około 1500
pz.
Amplifikację prowadzono przy użyciu termostabilnej polimerazy HOT STAR Taq Polymerase (QIAGEN) wg następującego profilu temperaturowego:
0
wstępna
denaturacja 95
C – 15 minut
3 cykle
0
C – 1 minuta94
denaturacja
0
przyłączanie
C – 2 minutystarterów 55
0
wydłużanie
starterów 72
C – 1 minuta
następnie
0
denaturacja
94
C – 20 sekund
0
przyłączanie
C – 1 minutastarterów 55
0
C – 1 minuta
wydłużanie
starterów 72
COPYRIGHT‚'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
Po zakończeniu reakcji PCR dokonano detekcji produktów amplifikacji stosując elektroforezę w 1,5% żelu agarozowym.
W kolejnym etapie badań przeprowadzono cięcie amplimeru przy użyciu trzech enzymów restrykcyjnych: HindIII,
EcoR1 i HaeIII oraz doświadczalnie dobranych warunków
reakcji.
'¬ylplŸ7-J-͟lŸJ¬˜p¥˜o-Ÿª¬ylp}ª
Obecność amplimeru w postaci widocznego prążka o
długości około 1460 pz. stwierdzono u 30 izolatów DNA
poddanych reakcji PCR (ryc.1).
W wyniku cięcia amplimerów enzymem restrykcyjnym
HaeIII otrzymano 5 profili restrykcyjnych
1 profil – obecność prążków o wielkościach 391 pz, 207
pz i 198 pz
2 profil – 391 pz i 198 pz
3 profil – 198 pz
4 profil – 391 pz i 207 pz
5 profil – brak cięcia (ryc.2)
Analizując próbki pocięte enzymem EcoRI także otrzymano 5 profili restrykcyjnych
1 profil – 839 pz, 625 pz i 564 pz
2 profil – 839 pz i 625 pz
3 profil – 625 pz
4 profil – 564 pz
5 profil – brak cięcia (ryc. 3)
W przypadku enzymu Hind II nie stwierdzono miejsca
uchwytu enzymu w sekwencji amplimeru.
Cięcie enzymami HaeII i Eco RI umożliwiło podział badanych próbek na 5 grup. Jednak zestawienie wyników badań obu enzymów razem (Tabela I) pozwoliło na uzyskanie
12 różnych profili restrykcyjnych w obrębie 30 badanych
szczepów, co może świadczyć o możliwości użycia techniki
ARDRA do identyfikacji i różnicowania szczepów w obrębie rodzaju Mycobacterium.
¬˜p¥˜oPokrewieństwo niektórych gatunków z rodzaju Mycobacterium jest bardzo wysokie i niekiedy sięga wartości
99%. Dlatego też konwencjonalne metody badań prątków
takie jak badania mikroskopowe i hodowlane, okazują się
zupełnie nieprzydatne do ich różnicowania.
Z tego też względu ciągle trwają badania nad prostą,
szybką i skuteczną techniką molekularną służącą do identyfikacji i różnicowania różnych gatunków z rodzaju Mycobacterium.
Takie możliwości może dawać metoda ARDRA. Jest to
metoda na tyle prosta (składa się z dwóch głównych etapów
– amplifikacji i cięcia enzymami restrykcyjnymi), że daje
możliwości zastosowania jej także w mało wyspecjalizowanych laboratoriach.
W badaniach prowadzonych przez Baerra i Mendorca przebadano 3500 próbek klinicznych, w których w 151
przypadkach wykryto obecność drobnoustrojów z rodzaju Mycobacterium a tylko 3 nie udało się zidentyfikować.
Związane to było z obecnością bardzo rzadkich gatunków,
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
–ŸœkUŸžŸ¤°°U
¬A‡Ÿ‡Ÿ'¬ylplŸ-u‚ql]p-AolŸŸ®Ÿ¥¸¬AlRuŸ˜ -– R–}ªŸ#®ŸŸ
lŸ#+Ÿ¤Ÿ„‚–}7plŸk°ŸŠŸu-–pR–…
których profile restrykcyjne nie zostały jeszcze umieszczone
w bibliotece [4].
Dokładność metody ARDRA rośnie wraz z ilością użytych enzymów restrykcyjnych do analizy. Potwierdzają to
przeprowadzone badania gdzie w przypadku użycia pojedynczych enzymów uzyskano jedynie 5 profili restrykcyjnych, a w przypadku ich kombinacji już 12 różnych profili
restrykcyjnych. Użycie jednak zbyt wielkiej liczby enzymów może skomplikować analizę i wydłużyć czas badania,
dlatego optymalne wydaje się użycie 3 – 4 enzymów.
W badaniach Vanehouette i Beenhower zastosowano zestaw 3 enzymów restrykcyjnych: CfoI, MboI i RsaI. Już po
użyciu CfoI i MboI badacze byli w stanie zidentyfikować 18
z 21 badanych szczepów [5].
W przypadku użycia 4 innych enzymów, takich jak: HhaI,
MboI, RsaI, BstUI, Baera i Mendroc sklasyfikowali 33 z 51
¬A‡Ÿ ¤‡Ÿ |®J®l-tŸ RqRp –|\|–R ¬A®y¬Ÿ ‚–|J¥p }ªŸ AlÖAl-Ÿ Ry®¬k
uRuŸ–R˜ –¬pA¬oy¬uŸ-RŸŸ„‚–}7plŸk^GŸGŸk°GŸ…
badanych szczepów wzorcowych a pozostałe podzielili na
kilka grup o wysokim stopniu pokrewieństwa [4].
W prowadzonych badaniach ważny wydaje się także
fragment DNA poddawany analizie restrykcyjnej. Metody
oparte na analizie regionu genu 16SrRNA wydają się bardzo
skuteczne, gdyż już do tej pory dostarczyły bardzo wielu
informacji na temat systematyki rodzaju Mycobacterium.
Metody te są obecnie szeroko akceptowane i traktowane
jako szybki i dokładny sposób identyfikacji nie tylko rodzaju Mycobacterium, ale i innych rodzajów.
Należy jednak pamiętać, że
mimo wysokiej skuteczności
tej metody nie wszystkie gatunki można nią zróżnicować.
Duże trudności spotkano w różnicowaniu szczepów Mycobacterium kansasi od Mycobacterium gastri, Mycobacterium
malmoense od Mycobacterium
szulgai, Mycobacterium marinum od Mycobacterium ulcerans, oraz wśród gatunków
należących do Mycobacterium
tuberculosis complex (MTC).
Związane to jest z wysokim
podobieństwem w sekwencji
16S rRNA pomiędzy tymi gatunkami [6].
Można to jednak rozwiązać
wprowadzając np. analizę regio¬A‡¡‡Ÿ |®J®l-tŸ RqRp –|\|–R ¬A®y¬Ÿ ‚–|J¥p }ªŸ AlÖAl-Ÿ Ry®¬uRuŸ –R˜ –¬pA¬oy¬uŸ A|Ÿ nu leżącego pomiędzy genami
„‚–}7plŸkzGŸGŸk¤°GŸ…
16S i 23S rRNA co przykłado-
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
COPYRIGHT‚'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
–ŸœkUŸžŸ¤°°U
¥uR–Ÿ‚–}7pl

¤
¡
`
^

œ
U
z
°

¤
¡
`
^

œ
U
z
¤°
¤
¤¤
¤¡
¤`
¤^
¤
¤œ
¤U
¤z
¡°
t¥a|²ÉŸ\–-auRy }ªŸ–R˜ –¬pA¬oy¬AiŸ¥®¬˜p-y¬AiŸ t¥a|²ÉŸ\–-auRy }ªŸ–R˜ –¬pA¬oy¬AiŸ¥®¬˜p-y¬AiŸ
ªŸª¬ylp¥ŸAlÖAl-ŸRy®¬uRuŸ-R
ªŸª¬ylp¥ŸAlÖAl-ŸRy®¬uRuŸA|
¡zŸ‚®
¤°œŸ‚®
zUŸ‚®
7–-p
U¡zŸ‚®
¤^Ÿ‚®
^`Ÿ‚®
7–-p
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
Š
"-7Rq-Ÿ‡Ÿ–|]qRŸ–R˜ –¬pA¬oyRŸ¥®¬˜p-yRŸªŸª¬ylp¥ŸAlÖAl-Ÿ-u‚qluR–¥ŸRy®¬u-ulŸ-RŸlŸA|
wo precyzyjnie różnicuje szczepy MTC od Mycobactreium
avium [7].
Podsumowując uzyskane wyniki badań oraz doniesienia
literaturowe, mimo dynamicznego rozwoju różnych technik
molekularnych bardziej precyzyjnych od metody ARDRA,
to zautomatyzowana hodowla w połączeniu z ta techniką
ciągle wydaje się być atrakcyjnym narzędziem do identyfikacji mykobakterii.
-De Baerze T. e
tion analysis (ARDRA) for the identification of cultured
mycobacteria in a diagnostic laboratory. BMC Microbiol. 2002 2, 4.
5.
Vaneechouette M., et all
Mycobacterium species using amplified ribosomal DNA restriction
analysis. J. Clin. Microbiol. 1993, 8, 2061-2065.
-Kasai H. Ezak
6.
geneticaly related slowly growing Mycobactera by their
gyrB sequences. J. Clin. Microbiol. 2000, 1, 301 – 308.
7.
Sansila A., et al. Differentiatio
Mycobacterium
Piśmiennictwo
tuberculosis and Mycobacterium avium by amplification
of the
– 23Siribosomal
DNA spacer.
J. Clin. Micro1.
Zalewska
N. 16S
Gruźlica
mykobakteriozy
– diagnostyka
biol. 1998, 8, 2399 – 2403
laboratoryjna. Centrum diagnostyki i terapii AIDS. Wojewódzki Szpital Zakaźny, Warszawa, 1999.
2.
Niemann
Mycobac-S. et al. Differentiation of clinical
terium tuberculosis complex isolated by gyrB DNA sequence polymorphism analysis. J. Clin. Microbiol. 2000,
38, 3231-3234.
3.
-Wojtyczka R.D. et al. PCR-RFLP analysis of a point mu
tation in codons 315 and 463 of the katG gene of Mycobacterium tuberculosis isolated from patients in Silesia,
Poland. Pol. J. Microbiol. 2004, 53, 89-93.
COPYRIGHT‚'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
4.
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY