florigen – legenda czy rzeczywistość?

Transkrypt

florigen – legenda czy rzeczywistość?
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
POSTÊPY BIOLOGII KOMÓRKI
31
TOM 34 2007 NR 1 (31–47)
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
FLORIGEN – LEGEND OR REALITY?
Waldemar WOJCIECHOWSKI, Jacek KÊSY, Jan KOPCEWICZ
Zak³ad Fizjologii i Biologii Molekularnej Roœlin, Instytut Biologii Ogólnej i
Molekularnej, Uniwersytet Miko³aja Kopernika, Toruñ
Streszczenie: 70 lat temu Mikhail Chailakhyan zaproponowa³ hormonaln¹ teoriê kwitnienia uwa¿aj¹c, ¿e
w liœciach powstaje specyficzny hormon kwitnienia, florigen, który transportowany jest nastêpnie do
wierzcho³ka wzrostu. Poszukiwanie mitycznego florigenu zakoñczy³o siê niepowodzeniem. Badania
wykaza³y jednak, ¿e u podstaw indukcji kwitnienia le¿y wspó³dzia³anie grupy genów charakteryzuj¹cych siê wysok¹ aktywnoœci¹ w obrêbie komórek wi¹zek przewodz¹cych. Mobilny sygna³ kwitnienia
mo¿e byæ produktem jednego z tych genów b¹dŸ to w formie transkryptu mRNA, b¹dŸ bia³ka.
S³owa kluczowe: florigen, indukcja kwitnienia, geny kwitnienia.
Summary: It is almost 70 years since Mikhail Chailakhyan put forward his hormonal theory of flowering
induction, which envisaged the leaves producing and exporting to the shoot apex a specific floral hormone
which he called „florigen”. The search for isolation of mythical florigen ended unsuccessfully. However,
the investigations have shown that fundamental for flower induction is cooperation between family of
flowering gens which express high activity in cells of vascular bundles. The mobile flowering signal could
be a product of one of them in the form of transcript mRNA or protein.
Key words: florigen, flower induction, flowering genes.
Wykaz skrótów: ABA – abscisic acid; AP1 – apetala 1, AP2 – apetala 2, CO – CONSTANS, FCA –
flowering locus CA, FD – flowering locus D, FLC – flowering locus C, FT – flowering locus T, FY –
flowering locus Y, GA – giberellic acid, gibberellin, ga1 – GA requiring 1, gai – gibberellin insensitive,
GUS – beta–glucuronidase, HD1 – heading date 1, HD3a – heading date 3a, ID1 – indeterminate 1, LFY
– leafy, MFT – mother of FT and TFL1, SOC1 – suppressor of overexpression of constans 1, TFL1 –
terminal flower 1, spy – spindly, TSF – twin sister of FT .
32
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
Autorzy dedykuj¹ tê pracê
Profesorowi Marianowi Michniewiczowi,
nestorowi badañ nad hormonami roœlinnymi i kwitnieniem w Polsce
1. WSTÊP
70 lat temu Mikhail Chailakhyan pracuj¹c w Instytucie Fizjologii Roœlin w Moskwie
nad problemem fotoperiodycznej kontroli kwitnienia doszed³ do wniosku, ¿e w wyniku
indukcji pojawia siê w liœciach hormon kwitnienia, który nazwa³ florigenem [16, 17].
Wniosek ten wysnu³ na podstawie obserwacji, ¿e sygna³ fotoperiodyczny jest przyjmowany przez liœcie, zaœ ró¿nicowanie generatywne zachodzi w wierzcho³kach wzrostu,
istnieje wiêc koniecznoœæ przekazania informacji i mobilny florigen jest w³aœnie jej
noœnikiem. Równie¿ przekazywanie w wyniku szczepieñ sygna³u kwitnienia z zaindukowanych donorów do wegetatywnych receptorów stanowi³o podstawê do wysuniêcia
przez Chailakhyana koncepcji florigenu. Koncepcja ta zak³ada³a wiêc, ¿e w wyniku
indukcji fotoperiodycznej powstaje w liœciach specyficzny, uniwersalny hormon kwitnienia
– florigen, który przemieszcza siê floemem do wierzcho³ka wzrostu, zmieniaj¹c wzorzec
jego ró¿nicowania z wegetatywnego na generatywny. Wytworzony w zaindukowanych
do kwitnienia roœlinach florigen jest tak¿e przekazywany drog¹ szczepieñ, powoduj¹c
kwitnienie roœlin wegetatywnych. Koncepcja ta zosta³a szeroko zaakceptowana i sta³a
siê przez kilkadziesi¹t lat dominuj¹cym sposobem myœlenia w badaniach mechanizmów
kwitnienia. Okaza³o siê jednak, ¿e istnienia tak rozumianego florigenu nie sposób
udowodniæ. Z drugiej strony nie sposób tak¿e zaprzeczyæ, ¿e mobilny sygna³ kwitnienia
powstaje w liœciach, sk¹d przemieszcza siê do wierzcho³ków wzrostu, a tak¿e jest
przekazywany drog¹ szczepieñ. Do czego wiêc 70 lat badañ nad najbardziej tajemniczym
i kontrowersyjnym w fizjologii kwitnienia problemem doprowadzi³o? Czy teoria
mistycznego florigenu jest ci¹gle ¿ywa, czy jest ju¿ tylko wspomnieniem historii, echem
zawiedzionych nadziei?
2. HISTORIA BADAÑ NAD FLORIGENEM
Badania nad fotoperiodyczn¹ kontrol¹ kwitnienia prowadzone w latach trzydziestych
ubieg³ego stulecia przez Chailakhyana, Cholodnego, Moshkova, Kuijpera i innych,
doprowadzi³y do postawienia koncepcji florigenu. Chailakhyan opar³ siê na faktach, i¿
liœcie s¹ organami receptorowymi dla bodŸca fotoperiodycznego w kwitnieniu roœliny
dnia krótkiego (SDP) Chrysanthemum indicum oraz wykaza³, ¿e mo¿na wywo³aæ
indukcjê kwitnienia wskutek miêdzygatunkowego szczepienia miêdzy SDP Helianthus
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
33
tuberosus L. i roœlin¹ neutraln¹ (NDP) Helianthus annus L. [77]. Dalsze badania
wykaza³y, ¿e bodziec kwitnienia jest przekazywalny poprzez ró¿ne gatunki roœlin
nale¿¹cych do ró¿nych typów wra¿liwoœci fotoperiodycznej, a wiêc pomiêdzy SDP i
LDP (roœlinami dnia d³ugiego), jak równie¿ NDP (roœlinami neutralnymi) [78].
Wyci¹gniêto st¹d wniosek, ¿e florigen jest uniwersalnym dla wszystkich roœlin hormonem
kwitnienia. Wydawa³o siê wtedy, ¿e pozostaje tylko kwestia izolacji i chemicznej
identyfikacji tej substancji, aby problem mechanizmu indukcji fotoperiodycznej zosta³
rozwi¹zany. Rzeczywistoœæ jednak okaza³a siê du¿o bardziej skomplikowana. Szeroko
prowadzone badania izolacji florigenu w wielu czo³owych pracowniach na œwiecie
koñczy³y siê niepowodzeniami. Badano zarówno ekstrakty z liœci, jak i eksudaty
floemowe. Generalnie, wielokrotnie uzyskiwano czêœciowo aktywne w procesie
kwitnienia frakcje, ale identyfikacja by³a albo niemo¿liwa ze wzglêdu na niskie stê¿enie
substancji aktywnych, b¹dŸ identyfikowano, w konsekwencji, substancje nieaktywne
[21]. Niepowodzenie tych badañ prowadzi³o do frustracji, jednak¿e pora¿ki t³umaczono
niedoskona³oœci¹ metod izolacji i identyfikacji, jak równie¿ brakiem odpowiednich testów
kwitnieniowych. W tej sytuacji Anton Lang w 1956 roku odkry³, ¿e gibereliny, jak
równie¿ bogate w gibereliny ekstrakty z roœlin s¹ w stanie wywo³aæ indukcjê kwitnienia
u rozetowych roœlin dnia d³ugiego, tak¿e u Arabidopsis thaliana rosn¹cych w warunkach nieindukcyjnego dnia krótkiego [43]. Badania te wykaza³y du¿¹ rolê giberelin w
kwitnieniu, a uczestniczy³ w nich przebywaj¹cy ówczeœnie w pracowni prof. A. Langa
w Kalifornii profesor Marian Michniewicz [47] z Uniwersytetu Miko³aja Kopernika w
Toruniu, pionier polskich badañ nad hormonami roœlinnymi i fizjologi¹ kwitnienia.
Wykazanie roli giberelin w kwitnieniu spowodowa³o, ¿e M. Chailakhyan zmodyfikowa³
w 1958 roku wyjœciow¹ koncepcjê florigenu, przyjmuj¹c, ¿e jest on dwusk³adnikowym
kompleksem z³o¿onym z giberelin i antezyn [18]. Gibereliny mia³yby byæ odpowiedzialne
za tworzenie ³odyg kwiatowych, a antezyny, hipotetyczne hormony kwiatowe, za
tworzenie kwiatów. Chailakhyan zak³ada³, ¿e przy nieindukcyjnych fotoperiodach
antezyny s¹ limituj¹cym czynnikiem w zakwitaniu SDP, a gibereliny u LDP. Zaczêto
wiêc poszukiwaæ antezyn. Historia jednak powtórzy³a siê. Próby izolacji i identyfikacji
antezyn koñczy³y siê niepowodzeniami [19]. Powraca³a frustracja i zniechêcenie.
Starano siê dalej modyfikowaæ koncepcjê florigenu proponuj¹c istnienie tak¿e
antyflorigenu (inhibitora kwitnienia). O kierunku ró¿nicowania wierzcho³ka wzrostu
(wegetatywny/generatywny) decydowaæ mia³aby wewnêtrzna równowaga florigenu i
antyflorigenu [78]. Jednak¿e brak mo¿liwoœci potwierdzenia istnienia florigenu
doprowadzi³ do redefinicji bodŸca kwitnienia i zanegowania jego uniwersalnoœci. Zaczêto
kwestionowaæ, ¿e florigen jest substancj¹ drobnocz¹steczkow¹ i postulowano kompleksowoœæ jego struktury [10]. Zaobserwowano, ¿e w tworzeniu kwiatów grochu bierze
udzia³ dominuj¹cy allel Sn. Jednoczeœnie wp³ywa on jednak tak¿e na zwiêkszenie liczby
m³odocianych liœci, skrócenie miêdzywêŸli, hamowanie rozwoju owoców. W wielu
doœwiadczeniach wykazano, ¿e bodŸce kwitnienia przenoszone przez szczepienia
wp³ywaj¹ równie¿ na inne procesy rozwojowe. Nie s¹ wiêc uniwersalne czy te¿
wybiórczo specyficzne. Zaczê³y siê tak¿e pojawiaæ sugestie, ¿e przemieszczaj¹cy siê
bodziec kwitnienia mo¿e byæ ró¿ny u ró¿nych roœlin, co tak¿e negowa³o uniwersalnoœæ
florigenu [8]. W rezultacie pojawi³y siê nowe koncepcje t³umacz¹ce mechanizm
34
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
kwitnienia, takie jak: hipoteza ró¿norodnoœci pokarmowej (rola asymilatów) [61],
wieloczynnikowy model kwitnienia [9] czy te¿ przyjêcie, ¿e sygna³ kwitnieniowy jest
natury fizycznej [71]. Zdawaæ trzeba sobie z tego sprawê, ¿e koncepcje te pojawi³y siê
przede wszystkim z powodu niemo¿noœci okreœlenia struktury chemicznej florigenu,
jednak przekonanie o potrzebie poznania natury mobilnego induktora kwitnienia pozosta³o.
Badania nad mechanizmami indukcji kwitnienia w erze biologii molekularnej prowadzone
s¹ na dwóch poziomach: hormonalnym i molekularno-genetycznym. Wnios³y one nowe
spojrzenie tak¿e na koncepcjê florigenu. Zagadnienia te by³y szeroko omawiane w
naszych wczeœniejszych pracach przegl¹dowych [42, 66, 67].
3. BADANIA UDZIA£U SUBSTANCJI
NISKOCZ¥STECZKOWYCH W INDUKCJI KWITNIENIA
Zdecydowana wiêkszoœæ powsta³ych modeli kwitnienia przypisywa³a bodŸcom
kwitnienia drobnocz¹steczkow¹ hormonaln¹ naturê. Naturê tak¹ mia³ mieæ florigen,
antyflorigen i antezyny. Jedyn¹ substancj¹ spe³niaj¹c¹ w du¿ej mierze wymagania
postawione florigenowi by³a giberelina. U wielu roœlin dnia d³ugiego, jak np. Samolus
parviflorus, Rudbeckia bicolor oraz Lolium temulentum gibereliny ca³kowicie zastêpuj¹ w indukcji kwitnienia fotoperiod [11, 38]. Zmiany poziomu giberelin w trakcie
indukcji kwitnienia u Lolium temulentum wykazuj¹ przebieg w pe³ni zgodny z klasyczn¹
teori¹ Chailakhyana. Percepcja indukcyjnego fotoperiodu wywo³uje wzrost poziomu
giberelin w liœciach, z których s¹ one transportowane do wierzcho³ka wzrostu pêdu,
gdzie indukuj¹ kwitnienie [37]. Równoczeœnie u wielu gatunków roœlin gibereliny nie
tylko nie stymuluj¹ indukcji kwitnienia, ale nawet j¹ hamuj¹ [54]. I chocia¿ z tego
wzglêdu giberelin nie mo¿na nazwaæ florigenem, to wspó³czesne badania genetyczne
wykonane na Arabidopsis thaliana potwierdzaj¹ jednak istotn¹ rolê tych hormonów
w indukcji kwitnienia. W warunkach dnia krótkiego mutant biosyntezy giberelin ga1
nie kwitnie, dopóki nie zostan¹ dostarczone egzogenne gibereliny [74], natomiast mutant
szlaku transdukcji sygna³u giberelinowego gai kwitnie bardzo póŸno, a mutant spy,
charakteryzuj¹cy siê konstytutywn¹ odpowiedzi¹ na gibereliny jest wczeœnie kwitn¹cy
[35]. Aktywnoœæ genu LFY u mutanta ga1 jest obni¿ona, a jego aktywacja dniem
d³ugim jest opóŸniona, natomiast u mutanta spy rosn¹cego na dniu krótkim jest podwy¿szona [14]. Doœwiadczenia na mutantach, koresponduj¹ce w pe³ni z wczeœniejszymi
obserwacjami fizjologicznymi, doprowadzi³y ostatecznie do odkrycia u Arabidopsis
thaliana zale¿nego od giberelin szlaku sygna³owego bezpoœrednio aktywuj¹cego geny
kwitnienia (ryc. 2) [12]. Nie wiadomo jednak, czy identyczny szlak funkcjonuje tak¿e u
innych roœlin stymulowanych do kwitnienia przez gibereliny. Wyjaœnienia wymaga
równie¿ rola giberelin w indukcji kwitnienia u pozosta³ych roœlin.
Pomimo wielu lat badañ, mechanizmy dzia³ania pozosta³ych hormonów roœlinnych
w indukcji kwitnienia nie zosta³y poznane w takim stopniu jak funkcjonowanie giberelin.
Auksyny i etylen zazwyczaj stymuluj¹ kwitnienie roœlin dnia d³ugiego i hamuj¹ indukcjê
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
35
RYCINA 1. Schemat inaktywacji kompleksu bia³kowego FCA-FY przez ABA w mechanizmie kontroli
aktywnoœci transkrypcyjnej genu FLC. Bia³kowy produkt genu FLC jest represorem kwitnienia. Jego
ekspresja jest negatywnie regulowana miêdzy innymi przez kompleks bia³kowy FCA-FY. W zwi¹zku
z tym odpowiednio wysoki poziom zagregowanych bia³ek FCA-FY umo¿liwia roœlinie wytworzenie
kwiatów. ABA uniemo¿liwia tworzenie siê kompleksów FCA-FY, wskutek czego dochodzi do
ekspresji genu FLC i wytwarzanie kwiatów nie nastêpuje (na podstawie [62] zmodyfikowany)
roœlin dnia krótkiego. Choæ zdarzaj¹ siê pojedyncze przypadki pe³nej stymulacji lub
hamowania kwitnienia przez te hormony, jak np. indukcja kwitnienia ananasa przez
etylen [11], to nie zawsze jest to skorelowane z endogennymi zmianami ich poziomu w
trakcie kwitnienia. Eufemistycznie mo¿na stwierdziæ, ¿e wp³yw omawianych hormonów
na kwitnienie jest zró¿nicowany i zale¿y od gatunku, wieku czy stanu fizjologicznego
roœliny [65]. Jednak¿e stwierdzenie takie powinno byæ poparte dalszymi szczegó³owymi
badaniami nad rol¹ tych substancji w kwitnieniu. I chocia¿ nie nale¿y siê spodziewaæ,
¿e którykolwiek z hormonów roœlinnych jest chailakhyanowskim florigenem, to ich
oddzia³ywanie ze szlakami sygna³owymi prowadz¹cymi do zakwitania nie budzi w¹tpliwoœci. Ostatnio okaza³o siê na przyk³ad, ¿e j¹drowe bia³ko FCA odgrywaj¹ce istotn¹
rolê w regulacji ekspresji genu FLC u Arabidopsis, jest receptorem kwasu abscysynowego [57]. Bia³kowy produkt genu FLC jest represorem kwitnienia, a jego ekspresja
jest hamowana miêdzy innymi przez kompleks bia³ek FCA-FY. Selektywne wi¹zanie
ABA do bia³ka FCA zapobiega tworzeniu siê kompleksu FCA-FY. Prowadzi to do
podwy¿szenia poziomu FLC, a w konsekwencji do hamowania kwitnienia (ryc. 1).
Uzyskane wyniki badañ molekularnych s¹ zgodne z obserwacjami fizjologicznymi, w
których egzogenny ABA hamuje kwitnienie Arabidopsis thaliana, a mutanty cechuj¹ce
siê niedoborem ABA kwitn¹ wczeœniej w warunkach dnia krótkiego [44].
Chocia¿ znaczenie poszczególnych hormonów roœlinnych w procesie indukcji
kwitnienia jest jeszcze ma³o zrozumia³e, nale¿y pamiêtaæ, ¿e uczestnicz¹ one powszech-
36
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
nie w regulacji procesów morfogenezy. Udowodniono, ¿e zarówno auksyny, jak i
cytokininy i gibereliny pe³ni¹ zasadnicz¹ rolê w funkcjonowaniu merystemu wierzcho³kowego pêdu [29]. St¹d te¿ ich udzia³ w przejœciu wierzcho³ka wzrostu pêdu z rozwoju
wegetatywnego do generatywnego jest oczywisty. Wszelkiego rodzaju aplikacje hormonów mog¹ wiêc modyfikowaæ kwitnienie poprzez ich zaanga¿owanie w ewokacji lub
dyferencjacji kwiatu. Hormony roœlinne mog¹ równie¿ uczestniczyæ w powstawaniu i
transporcie bodŸca kwitnienia.
Niejasna rola poszczególnych hormonów w indukcji kwitnienia wynika równie¿ z
faktu, ¿e wchodz¹ one w liczne interakcje ze szlakami biosyntezy i szlakami sygna³owymi
innych hormonów [27, 69]. Zarówno auksyny, jak i cytokininy silnie stymuluj¹ produkcjê
etylenu [2, 70], natomiast etylen wp³ywa na transport auksyn [64]. Auksyna stymuluje
równie¿ biosyntezê giberelin [59]. Dodatkowym elementem zale¿noœci pomiêdzy ró¿nymi
czynnikami reguluj¹cymi zakwitanie jest fakt silnego zwi¹zku metabolizmu cytokinin z
metabolizmem cukrów [28].
Doœwiadczenia fizjologiczne pokazuj¹ zaanga¿owanie w proces kwitnienia równie¿
innych regulatorów wzrostu roœlin, takich jak: poliaminy, brasinosteroidy, kwas
jasmonowy czy kwas salicylowy [24]. Takie substancje jak kwas jasmonowy czy kwas
salicylowy prawdopodobnie uczestnicz¹ w indukcji kwitnienia wywo³ywanej ró¿nego
rodzaju œrodowiskowymi czynnikami stresowymi, jak np. atak patogena, susza, ekstremalne temperatury czy intensywne oœwietlenie. Nie jest wykluczone, ¿e wchodz¹ one
w tych procesach w interakcje z etylenem i kwasem abscysynowym.
Wa¿n¹ rolê w regulacji kwitnienia odgrywaj¹ równie¿ cukry. Regulacyjna rola tych
cz¹steczek w procesach wzrostu i rozwoju zosta³a szeroko opisana w literaturze, tak¿e
polskojêzycznej [33, 62]. Na znaczenie cukrów w indukcji kwitnienia wskazuj¹ zarówno
wczeœniejsze badania fizjologiczne, jak i ostatnie badania genetyczno-molekularne. U
Arabidopsis dodatek sacharozy do po¿ywki wywo³uje czêœciowe zniesienie efektu
fenotypowego wywo³anego mutacj¹ genu CONSTANS [52, 58], a tak¿e stymuluje
ekspresjê genu LFY w siewkach transgenicznych [14]. Roœliny transgeniczne charakteryzuj¹ce siê podwy¿szonym poziomem sacharozy kwitn¹ wczeœniej ni¿ odpowiednie
roœliny nietransformowane [45, 49]. Istotna rola cukrów i substancji azotowych w
indukcji kwitnienia u Sinapis alba sta³a siê podstaw¹ troficznej teorii indukcji kwitnienia
[10]. Jednak cukry, podobnie jak i poszczególne hormony roœlinne nie s¹ uniwersalnymi
induktorami kwitnienia.
4. BADANIA MOLEKULARNO-GENETYCZNE MECHANIZMÓW
INDUKCJI KWITNIENIA
Prowadzone przez wiele lat badania nad identyfikacj¹ biochemiczn¹ uniwersalnego
induktora kwitnienia nie przynios³y spodziewanych wyników. Do prac opartych na
szczepieniach oraz doœwiadczeniach fizjologicznych wprowadzono dodatkowo analizy
biochemiczne. Na pocz¹tku lat 70 ubieg³ego wieku zastosowano po raz pierwszy
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
37
dodatkowo obserwacje mutantów u grochu. Pozwoli³y one odkryæ szereg mutacji
wp³ywaj¹cych w sposób znacz¹cy na zakwitanie roœlin tego gatunku. Potwierdzi³y
one ponadto jeden z istotnych postulatów teorii Chailakhyana okreœlaj¹cy miejsce
powstawania florigenu. Geny ulegaj¹ce mutacji, kontroluj¹ce przejœcie grochu do fazy
rozwoju generatywnego funkcjonuj¹ w liœciach [50]. Dopiero zastosowanie bardziej
zaawansowanych technik biologii molekularnej pozwoli³o na dok³adniejsz¹ identyfikacjê,
charakterystykê oraz poznanie funkcji genów zwi¹zanych z indukcj¹ kwitnienia. Du¿ym
atutem prowadzonych wtedy prac by³o zastosowanie do badañ mechanizmu indukcji
kwitnienia nowego gatunku Arabidopsis thaliana, który w krótkim czasie sta³ siê
organizmem modelowym w szerokim zakresie prac nad fizjologi¹ i biologi¹ molekularn¹
roœlin. Na pocz¹tku lat 90 zidentyfikowano szereg genów, które w wyniku dalszych
analiz okaza³y siê byæ niezwykle istotne w regulacji mechanizmów indukcji kwitnienia.
Opisano mutacje zarówno przyspieszaj¹ce, jak i opóŸniaj¹ce zakwitanie rzodkiewnika
[25, 41, 55, 71, 73]. Dziêki dok³adnym analizom biochemicznym, a tak¿e badaniom
prowadzonym na mutantach genów kwitnienia zidentyfikowano cztery zasadnicze szlaki
indukcji kwitnienia: fotoperiodyczny, wernalizacyjny, autonomiczny i hormonalny
(giberelinowy) [44]. Jak pokaza³y dalsze badania, poznane geny funkcjonowa³y na
ró¿nych poziomach szlaków indukcji kwitnienia (ryc. 2). By³y wœród nich zarówno
geny zwi¹zane z zegarem biologicznym, geny bezpoœrednio zaanga¿owane w zmiany
to¿samoœci merystematycznej komórek sto¿ka wzrostu, jak równie¿ geny determinuj¹ce
rozwój kolejnych okó³ków kwiatowych.
Du¿a iloœæ zidentyfikowanych genów uczestnicz¹cych, w sposób bezpoœredni czy
te¿ poœredni, w mechanizmach indukcji kwitnienia uniemo¿liwia³a identyfikacjê jednego
uniwersalnego induktora kwitnienia. Bardziej prawdopodobn¹ sta³a siê rozpowszechniona
ju¿ wtedy wieloczynnikowa koncepcja indukcji kwitnienia [9]. Klasyczna teoria florigenu
Chailakhyana zaczê³a przechodziæ do historii, jednak obecnoœæ mobilnego sygna³u kwitnieniowego, przemieszczaj¹cego siê z liœci do wierzcho³ka wzrostu, zosta³a potwierdzona
w wyniku póŸniejszych badañ.
4.1. Elementy szlaku fotoperiodycznego
Prowadzone przez wiele lat badania pozwoli³y na identyfikacjê oraz precyzyjne
okreœlenie mechanizmów funkcjonowania poszczególnych elementów szlaku fotoperiodycznego indukcji kwitnienia. Opisano kolejne etapy odbierania i przekazywania w
komórkach liœcia bodŸców fotoperiodycznych. Wskazano na szczególn¹ rolê w tych
przemianach fitochromów i kryptochromów oraz zaprezentowano sposób dzia³ania tych
fotoreceptorów. Wykazano ponad wszelk¹ w¹tpliwoœæ, ¿e funkcjonowanie fotoperiodycznej
indukcji kwitnienia w znacznej mierze kontrolowane jest przez elementy zegara
biologicznego. Zagadnienia te by³y ju¿ omawiane w literaturze polskojêzycznej [26, 79].
Przeprowadzone badania wykaza³y, ¿e wiod¹cym w kaskadzie przemian prowadz¹cych do zakwitania w szlaku fotoperiodycznym jest gen CONSTANS. W roku 1995
zidentyfikowano kodowane przez ten gen bia³ko j¹drowe zawieraj¹ce domenê palca
cynkowego, bêd¹ce potencjalnym czynnikiem transkrypcyjnym [56]. Mutacja w obrêbie
genu CO u Arabidopsis thaliana opóŸnia kwitnienie, nadekspresja zaœ przyspiesza.
38
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
RYCINA 2. Schemat wspó³dzia³ania szlaków indukcji kwitnienia u Arabidopsis thaliana. U podstaw
funkcjonowania wszystkich szlaków indukcji kwitnienia le¿¹ modulacje aktywnoœci szeregu genów,
efektem których s¹ zmiany zachodz¹ce w ekspresji elementów kluczowych dla poszczególnych dróg
prowadz¹cych do zakwitania, tzn. CO, FLC, MYB. Najistotniejsza z punktu widzenia tych oddzia³ywañ jest kontrola transkrypcji genów integratorowych FT, SOC1 i LFY przez wspomniane powy¿ej
czynniki. Ka¿dy ze szlaków kontrolowany jest dziêki zmianom aktywnoœci genów wra¿liwych na
ró¿ne warunki œrodowiskowe lub zmiany natury endogennej. Wœród nich wyró¿niæ mo¿na geny zegara
oko³odobowego, zaanga¿owane w szlak fotoperiodyczny czy geny o aktywnoœci modulowanej nisk¹
temperatur¹. W szlaku autonomicznym i hormonalnym dzia³aj¹ jeszcze inne geny, przynajmniej
czêœciowo niezale¿nie od pozosta³ych. Sama kontrola indukcji kwitnienia regulowana mo¿e byæ
zarówno na poziomie zmian aktywnoœci transkrypcyjnej genów, jak równie¿ obróbki potranslacyjnej,
a tak¿e wspó³dzia³ania ich produktów bia³kowych (przygotowano na podstawie [25, 39, 41, 44, 51,
55, 63, 71, 73] zmodyfikowany)
O znaczeniu tego genu dla zjawiska indukcji kwitnienia œwiadcz¹ te¿ elementy docelowe,
regulowane aktywnoœci¹ kodowanego przezeñ bia³ka. S¹ nimi geny integratorowe
szlaków indukcji kwitnienia SOC1, FT oraz LFY (ryc. 2) [39, 51, 63]. Mechanizm
dzia³ania produktu bia³kowego genu CONSTANS pozostaje wci¹¿ jednak nieznany.
Pomimo wystêpowania tak charakterystycznej domeny i podobieñstwa do czynników
transkrypcyjnych z rodziny GATA1, nie potwierdzono eksperymentalnie zdolnoœci
wi¹zania siê tego bia³ka do DNA. Konsekwencj¹ tego sta³o siê za³o¿enie, i¿ do swej
aktywnoœci CO wymaga innego czynnika transkrypcyjnego [32]. Aktywnoœæ transkrypcyjna CO, a tak¿e stabilnoœæ jego produktu bia³kowego znajduje siê pod sta³¹ kontrol¹
zegara oko³odobowego [68]. Z drugiej strony CO aktywuje ekspresjê genów determinuj¹cych wzorzec ró¿nicowania komórek merystemu wierzcho³kowego. Mo¿e byæ
zatem swoistym ³¹cznikiem pomiêdzy wczesnymi elementami indukcji a kluczowymi
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
39
czynnikami procesu inicjacji (ewokacji) tworzenia kwiatu. Kolejne prace wykaza³y, ¿e
ekspresja genu CO zachodzi najefektywniej w komórkach liœcia, zaœ aktywnoœæ produktu
bia³kowego identyfikowano niemal wy³¹cznie w wi¹zkach przewodz¹cych [4]. Zgodnie
z koncepcj¹ florigenu uniwersalny induktor powstaje w liœciach czy liœcieniach, a
nastêpnie transportowany jest systemem wi¹zek przewodz¹cych do komórek wierzcho³ka. Na podstawie doœwiadczeñ ze szczepieniami oraz kontrolowan¹ ekspresj¹ genu
CO wysuniêto postulat, ¿e to w³aœnie CO mo¿e pretendowaæ do roli mitycznego florigenu
[6]. Koncepcja ta zosta³a jednak zarzucona równie szybko, jak powsta³a. Powodem
by³y dok³adne analizy funkcji genu FT w procesie indukcji kwitnienia.
Nowy sposób myœlenia o zmianach towarzysz¹cych indukcji kwitnienia pojawi³ siê
w efekcie prac prowadzonych na kukurydzy, a dotycz¹cych aktywnoœci genu ID1
[23]. Na podstawie analizy licznych mutantów wyselekcjonowano gen pozwalaj¹cy na
prawid³owy rozwój wegetatywny roœlinie, która nie zakwita. Kodowane przezeñ bia³ko
zidentyfikowano jako czynnik transkrypcyjny z domen¹ palca cynowego. Badania
aktywnoœci transkrypcyjnej pokaza³y jednoznacznie, ¿e gen ten ulega ekspresji jedynie
w niedojrza³ych liœciach. Uzyskane wyniki sugeruj¹ udzia³ ID1 w kontroli aktywnoœci
transkrypcyjnej genów odpowiedzialnych bezpoœrednio za przejœcie kukurydzy z fazy
wzrostu wegetatywnego w generatywny oraz wp³yw tego bia³ka na transport induktora
kwitnienia systemem wi¹zek przewodz¹cych do komórek merystematycznych. Podobieñstwa strukturalne, lokalizacja aktywnoœci, a tak¿e efekt wywierany na roœlinê
pozwoli³y na wysuniêcie postulatu, ¿e funkcjonalnym odpowiednikiem ID1 u roœlin
dwuliœciennych jest CO [22]. Ze wzglêdu na zdecydowanie dok³adniejsz¹ znajomoœæ
elementów szlaków indukcji kwitnienia u Arabidopsis, kwesti¹ czasu wydawa³o siê
zidentyfikowanie regulowanego przez CO czynnika determinuj¹cego zakwitanie.
Podejrzenie niemal automatycznie pad³o na regulowane przez CO geny integratorowe
szlaków indukcji kwitnienia SOC1, LFY oraz FT. Ostatnie prace pokazuj¹, ¿e
najwa¿niejszym z nich jest ten ostatni.
Pierwsze obserwacje mutanta ft poczynione zosta³y ju¿ na pocz¹tku lat 90 [40].
Sam gen wyizolowa³y niezale¿nie dwie grupy badawcze [36, 39]. Jak wykazano, FT
budow¹ przypomina inhibitor kinaz typu RAF (RKIP), bia³ko wystêpuj¹ce u zwierz¹t,
a tak¿e bia³ko wi¹¿¹ce fosfatyfyloetanoloaminê (PEBP). Badania aktywnoœci transkrypcyjnej wykaza³y obecnoœæ mRNA FT we wszystkich badanych organach, zaœ sama
rola tego bia³ka przez d³ugi czas by³a nieznana. Na podstawie analizy mutantów
stwierdzono jedynie, ¿e wspó³dzia³a ono w kontrolowaniu czasu kwitnienia z innym
genem integratorowym LFY [60]. Prze³om w postrzeganiu roli tego niewielkiego bia³ka
(32 kDa) przynios³y póŸniejsze badania. Zlokalizowano precyzyjnie miejsce pierwotnej
ekspresji genu FT. S¹ nim wi¹zki przewodz¹ce, a dok³adniej komórki floemu liœci oraz
wierzcho³ka. A wiêc miejsca, w których mo¿e dochodziæ do bezpoœredniej aktywacji
genu FT przez bia³ko CO. Powsta³o w zwi¹zku z tym pytanie, czy FT jest mobilnym
sygna³em kwitnienia. Badania wykaza³y, ¿e zlokalizowane w komórkach floemu bia³ko
CO aktywuje ekspresjê genu FT. Powstaj¹ce na bazie tego transkryptu niewielkie
bia³ko transportowane jest poprzez floem oraz systemem plazmodezm do komórek
merystematycznych sto¿ka wzrostu (ryc. 3) [24].
40
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
RYCINA 3. Schemat powstawania oraz transportu sygna³u w procesie fotoperiodycznej indukcji
kwitnienia u Arabidopsis thaliana. Wzrost aktywnoœci transkrypcyjnej genu CO w liœciach pod
wp³ywem indukcyjnego fotoperiodu powoduje wzmo¿on¹ ekspresjê genu FT. Transkrypt mRNA
FT b¹dŸ bia³ko FT, poprzez floem transportowane s¹ do komórek wierzcho³ka wzrostu. Tam bia³ko
FT wspó³dzia³aj¹c z czynnikami transkrypcyjnymi, takimi jak FD i LFY, zwiêksza ekspresjê genów
LFY oraz AP1 (przygotowano na podstawie [13 i 34] zmodyfikowany)
Odmienny pogl¹d zaprezentowano na podstawie badañ z kontrolowan¹ lokaln¹
ekspresj¹ FT. Obserwacje prowadzono na roœlinach transgenicznych, w których gen
FT znajdowa³ siê pod kontrol¹ promotora bia³ek szoku cieplnego. Zaindukowanie
ekspresji genu FT ju¿ w jednym liœciu, pojedynczym bodŸcem termicznym by³o wystarczaj¹ce do zainicjowania kwitnienia. Stwierdzono ponadto wzrost aktywnoœci transkrypcyjnej genu FT w wierzcho³ku wzrostu ju¿ 6 godzin po zadzia³aniu bodŸca skierowanego
na liœæ. Powy¿sze obserwacje w zestawieniu z danymi pochodz¹cymi z kontrolnych
roœlin zawieraj¹cych konstrukt z genem GUS wykaza³y, ¿e z liœci do komórek sto¿ka
wzrostu transportowany jest transkrypt genu FT (ryc. 3) [34].
Nale¿y jednak nadmieniæ, ¿e zaprezentowany model oddzia³ywañ dotyczy tylko
wyników prac przeprowadzonych na Arabidopsis, roœlinie dnia d³ugiego. Powstaje
zatem pytanie, na ile sytuacja u Arabidopsis ma charakter uniwersalny. Istniej¹ pewne
dane sugeruj¹ce, ¿e u roœlin o ró¿nej wra¿liwoœci fotoperiodycznej kontrola aktywnoœci
genów integratorowych odbiega od modelu opisanego u Arabidopsis. Pierwsz¹ wskazówk¹ w tym kierunku mog¹ byæ wyniki prac prowadzonych na ry¿u, roœlinie dnia
krótkiego, u której zidentyfikowano kilka genów kwitnienia homologicznych do
wystêpuj¹cych u rzodkiewnika. Najwa¿niejszymi dla kontroli kwitnienia s¹ HD1 oraz
HD3, bêd¹ce genami homologicznymi do CO i FT. Zale¿noœci w ekspresji tych genów
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
41
RYCINA 4. Porównanie kluczowych elementów szlaku kwitnienia u roœlin o ró¿nej wra¿liwoœci
fotoperiodycznej. Wzrost iloœci bia³ka CO oraz jego homologa HD1 zidentyfikowanego u ry¿u,
wywo³uj¹ przeciwstawne efekty w kontroli FT oraz HD3a. Istnienia podobnych zale¿noœci nie
potwierdzono dotychczas u roœlin neutralnych, jednak wydaje siê, ¿e mog¹ one mieæ, przynajmniej
w zarysie, przebieg podobny do opisanych u pozosta³ych grup roœlin (na podstawie [22] zmodyfikowany)
– wzrost lub spadek aktywnoœci transkrypcyjnej genów
s¹ jednak ca³kowicie przeciwstawne do obserwowanych u Arabidopsis (ryc. 4).
Podwy¿szony poziom aktywnoœci HD1 powoduje spadek aktywnoœci HD3 [30].
Udowodnienie mo¿liwoœci transportu bia³ka, wzglêdnie mRNA FT z liœci do
wierzcho³ka wzrostu jest powa¿nym argumentem dla tych, którzy chc¹ w nim widzieæ
przemieszczaj¹cy siê sygna³ kwitnienia. Jeœli sygna³em mobilnym mia³by byæ transkrypt
otwarty, pozostaje pytanie, czy nie wymaga on dodatkowych czynników, np. bia³ek
transportuj¹cych [13]. Nierozstrzygniêta pozostaje jeszcze jedna kwestia. Z prowadzonych doœwiadczeñ wynika, ¿e gen FT podlega pozytywnej autoregulacji przez bia³ko
FT. Czy taka pêtla pozytywnego sprzê¿enia zwrotnego ma miejsce tylko w komórkach
liœcia? Czy wymagane jest ci¹g³e dostarczanie sygna³u indukcji, czy po przetransportowaniu do wierzcho³ka wzrostu FT ca³kowicie uniezale¿nia siê od sygna³ów p³yn¹cych
z liœcia? Wyniki badañ pokazuj¹, ¿e w komórkach sto¿ka wzrostu tak¿e dochodzi do
uaktywnienia podobnego mechanizmu autoregulacji. Sugeruje to, ¿e wystarczaj¹cym
do zainicjowania kwitnienia powinno byæ ju¿ jednorazowe uaktywnienie genu FT oraz
przetransportowanie tego sygna³u do wierzcho³kowych komórek merystematycznych.
Docelowymi dla aktywnoœci FT s¹ geny LFY i APETALA1. Jak wykazano eksperymentalnie w tym przypadku, FT skazany jest na wspó³dzia³anie z FD, czynnikiem
transkrypcyjnym nale¿¹cym do rodziny bia³ek bZIP. Zainicjowanie ekspresji genu AP1
42
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
mo¿liwe jest tylko wtedy, gdy obydwa bia³ka obecne s¹ w komórkach sto¿ka wzrostu
[1]. Konieczne jest spe³nienie jeszcze jednego warunku, którym jest wzrost aktywnoœci
transkrypcyjnej genu LFY, równie¿ zaanga¿owanego w kontrolê ekspresji AP1. Wynika
z tego, ¿e do zainicjowania kwitnienia wymagane jest wspó³dzia³anie przynajmniej kilku
czynników aktywnych.
Jak widaæ, ostatnie dokonania zmieniaj¹ nasze pogl¹dy na proces powstawania,
transportu oraz rodzaj induktora kwitnienia. Upraszczaj¹c ca³¹ sprawê mo¿na uwa¿aæ,
¿e u podstaw indukcji kwitnienia le¿y wspó³dzia³anie niewielkiej grupy genów charakteryzuj¹cych siê najwy¿sz¹ aktywnoœci¹ w obrêbie komórek wi¹zek przewodz¹cych.
Mobilny zaœ sygna³ jest produktem jednego z tych genów czy to w formie transkryptu
mRNA czy bia³ka.
Trzeba jednak zachowaæ ostro¿noœæ, bo gdyby mechanizm kwitnienia by³ tak prosty,
to mo¿liwe by³oby ³atwe zahamowanie kwitnienia np. mutacj¹ genu FT. Takiej zale¿noœci
jednak nie sposób zaobserwowaæ nie tylko w przypadku tego genu. Nie uda³o siê
dotychczas uzyskaæ u A. thaliana mutanta, który w ogóle nie zakwita. Powodem
takiego stanu rzeczy jest mnogoœæ szlaków indukcji kwitnienia, a tak¿e wieloœæ odpowiadaj¹cych sobie funkcjonalnie czynników w tych szlakach moduluj¹cych proces indukcji
kwitnienia. Ponadto, jak pokaza³y niedawne badania, FT jest tylko jednym z cz³onków
rodziny czynników maj¹cych wp³yw na indukcjê kwitnienia. Nale¿¹ do niej m.in. takie
geny, jak TSF, MFT czy TFL1. Pierwszy z nich równie¿ ulega ekspresji w komórkach
floemu i funkcjonuje czêœciowo w sposób podobny, równolegle do FT [75]. Wzrost
aktywnoœci transkrypcyjnej drugiego z tych genów tak¿e skutkuje przyspieszeniem
zakwitania [76]. Przeciwstawne dzia³anie stwierdzono w przypadku genu TFL1,
opóŸniaj¹cego kwitnienie. Antagonistyczne dzia³anie wzglêdem FT jest jeszcze bardziej
zastanawiaj¹ce ze wzglêdu na sposób regulacji, jakiej gen ten podlega. Jak wykazano,
zarówno FT, jak i TFL1 regulowane s¹ pozytywnie przez CO, jednak ich funkcjonowanie
wydaje siê byæ niezale¿ne [36].
Ciekawy mechanizm kontroli indukcji kwitnienia funkcjonuje w szlaku wernalizacyjnym czy autonomicznym (ryc. 2). Kluczow¹ rolê odgrywa tu tak¿e gen FT lub czynniki
mu pokrewne. Z wczeœniejszych badañ wiadomo, ¿e kluczowym dla funkcjonowania
obydwu szlaków jest produkt genu FLC. Jest on w tych szlakach nadrzêdnym inhibitorem
kwitnienia. Efektem dzia³ania FLC jest zahamowanie transkrypcji, m.in. genu FT [46].
Pocz¹tkowe prace wskazywa³y na wierzcho³ek wzrostu jako g³ówne miejsce percepcji
bodŸców temperaturowych. Potwierdza³a to tak¿e aktywnoœæ transkrypcyjna genu
FLC, którego najwiêksze iloœci identyfikowano w wierzcho³ku wzrostu pêdu i korzenia
[3]. Transkrypt tego genu wykrywany jest jednak tak¿e w liœciach [31]. Gdzie wobec
tego FLC hamuje aktywnoœæ FT: w liœciach czy w komórkach wierzcho³ka wzrostu?
A mo¿e mamy do czynienia z dwoma niezale¿nymi mechanizmami, w których to szlak
autonomiczny inaktywuje transkrypcjê FLC umo¿liwiaj¹c w liœciach powstawanie FT.
Podczas gdy wernalizacja na zasadzie podobnego mechanizmu wy³¹cza ten gen w
obrêbie sto¿ka wzrostu odblokowuj¹c transkrypcjê genu FT.
Jak widaæ, pytañ dotycz¹cych modelu powstawania mobilnego induktora kwitnienia
jest wiele. Jak wiele mo¿e byæ samych induktorów, tego nie wiemy. Wydaje siê, ¿e FT
jest jednym z g³ównych, ale nie jedynym. Postulowany w teorii florigenu mobilny sygna³
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
43
kwitnienia niew¹tpliwie jednak istnieje. W tym zakresie Chailakhyan nie myli³ siê. Myli³
siê tylko co do natury florigenu.
4.2. Regulatorowe RNA jako bodziec kwitnienia
Niezwykle ciekawe by³o odkrycie kilka lat temu nowego, regulatorowego rodzaju
RNA, charakteryzuj¹cego siê wysok¹ specyficznoœci¹ dzia³ania oraz mo¿liwoœci¹
rozprzestrzeniania siê w roœlinie. Okreœlono go mianem niskocz¹steczkowego RNA
(sRNA). Dok³adniejsze badania pokaza³y, ¿e wœród tego typu cz¹steczek wyró¿niæ
mo¿emy dwie klasy, z których dla procesów rozwoju i ró¿nicowania roœlin wa¿niejsze
jest mikro RNA (miRNA). Prowadzone dotychczas prace pozwoli³y scharakteryzowaæ
u Arabidopsis thaliana kilkaset genów koduj¹cych ró¿ne miRNA [7, 15, 48, 72].
Znajduj¹ siê wœród nich tak¿e takie, które w sposób bezpoœredni lub poœredni wp³ywaj¹
na procesy ró¿nicowania generatywnego zwi¹zane z funkcjonowaniem szlaków indukcji
kwitnienia [5, 20].
Nadekspresja miR172 – jednego z miRNA – w siewkach Arabidopsis powoduje
przyspieszenie kwitnienia i zaburzenie to¿samoœci organów kwiatowych [53]. miR172
oddzia³uje z mRNA bia³ek czynników transkrypcyjnych z rodziny APETALA2, hamuj¹c
ich translacjê. Chocia¿ lokalizacja miR172 w genetycznych szlakach kontroluj¹cych
kwitnienie nie zosta³a jeszcze precyzyjnie okreœlona, wydaje siê, ¿e funkcjonuje on
powy¿ej genów SOC1 i FT [5]. W regulacjê kwitnienia zaanga¿owany jest równie¿
inny sRNA – miR159. Jego nadekspresja w siewkach Arabidopsis powoduje obni¿enie
poziomu transkryptu MYB33 i LFY. Wskutek tego nastêpuje opóŸnienie kwitnienia
roœlin uprawianych w warunkach dnia d³ugiego. Bia³ko MYB33 jest pozytywnym
czynnikiem w giberelinowej regulacji kwitnienia u Arabidopsis w warunkach dnia
krótkiego. Wykazano równie¿, ¿e poziom miR159 jest pozytywnie regulowany przez
same gibereliny, co wskazuje na z³o¿ony charakter udzia³u miR159 w regulacji
kwitnienia.
5. PODSUMOWANIE
Czy wobec przedstawionych powy¿ej faktów teoria Chailakhyana jest nadal aktualna,
czy te¿ powinna znaleŸæ siê ju¿ tylko w pamiêci historycznej. Jednoznaczna odpowiedŸ
na to pytanie jest trudna. W koncepcji Chailakhyana istniej¹ bowiem s³uszne i nies³uszne
postulaty.
Podstawowe za³o¿enie teorii Chailakhyana mówi, ¿e induktor kwitnienia powstaje
w liœciach lub liœcieniach. Z badañ nad mechanizmami dzia³ania szlaku fotoperiodycznego bezwzglêdnie wynika, ¿e zasadnicze dla indukcji zmiany maj¹ miejsce w³aœnie w
tych organach. Co wiêcej, centrum tych przemian mieœci siê w okolicach wi¹zek
przewodz¹cych, miejsc, którymi sygna³ transportowany jest z liœci do wierzcho³ka
wzrostu. Stwierdzono, ¿e co najmniej jeden z elementów szlaków indukcji kwitnienia
(FT) jest cz¹steczk¹ mobiln¹, transportowan¹ w formie transkryptu mRNA b¹dŸ
44
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
peptydu, z komórek liœci do wierzcho³ka wzrostu. Stanowi to niejako urzeczywistnienie
wizji Chailakhyana o transporcie induktora kwitnienia, sama jednak natura tego induktora
jest inna. Nie jest on drobnocz¹steczkowym hormonem, chocia¿ oczywiste jest, ¿e
Chailakhyan nie móg³ 70 lat temu przewidzieæ istnienia mRNA, czy te¿ wyobraziæ
sobie transportowanych w obrêbie ca³ego organizmu bia³ek czy peptydów. Zak³ada³ on
przemieszczanie siê substancji drobnocz¹steczkowej. Takiego specyficznego i uniwersalnego dla wszystkich roœlin florigenu nie ma. Funkcjonowanie uk³adów hormonalnych
jest oczywiœcie niezwykle istotne dla tego procesu i z ca³¹ pewnoœci¹ musz¹ one byæ
uwzglêdniane w teorii opisuj¹cej ca³oœciowo mechanizm indukcji kwitnienia, ale nie
one s¹ mobilnymi sygna³ami kwitnienia. Najwiêcej w¹tpliwoœci budzi za³o¿enie
Chailakhyana dotycz¹ce uniwersalnoœci induktora kwitnienia. Jak pokazuj¹ wyniki
badañ prowadzonych na A. thaliana, a tak¿e na innych gatunkach roœlin, czynników
kontroluj¹cych zakwitanie jest wiele. Wiele jest te¿ dróg prowadz¹cych do wytworzenia
kwiatów. Jak pokaza³y wyniki badañ kilku ostatnich lat prowadzonych g³ównie na
Arabidopsis, szlaków kontroluj¹cych kwitnienie mo¿na wyodrêbniæ przynajmniej kilka.
Wydaje siê, ¿e aktywnoœæ zdecydowanej wiêkszoœci z nich, jeœli nie wszystkich, skupia
siê na niewielkiej grupie genów integratorowych, których wzrost aktywnoœci
transkrypcyjnej jest warunkiem koniecznym inicjacji kwitnienia. Wœród genów
integratorowych szczególn¹ rolê odgrywa gen FT.
Tak wiêc teoria Chailakhyana ma ju¿ znaczenie g³ównie historyczne. Uniwersalnego
drobnocz¹steczkowego hormonu – florigenu nie ma. Jednak¿e koncepcja florigenu
przez 70 lat inspirowa³a do badañ mechanizmów kwitnienia, przez co wnios³a wielki
wk³ad do postêpu wiedzy w tej dziedzinie. Poszukiwanie zaœ mobilnych induktorów
kwitnienia jest dalej aktualne. Wyjaœnienia wymaga tak¿e mechanizm przekazywania
sygna³u kwitnienia poprzez szczepienia roœlin.
LITERATURA
[1] ABE M, KOBAYASHI Y, YAMAMOTO S, DAIMON Y, YAMAGUCHI A, IKEDA Y, ICHINOKI H,
NOTAGUCHI M, GOTO K, ARAKI T. FD, a bZIP protein mediating signals from the floral pathway
integrator FT at the shoot apex. Science 2005; 309: 1052–1056.
[2] ABEL S, NGUYEN MD, CHOW W, THEOLOGIS A. ACS4, a primary indoleacetic acid-responsive gene
encoding 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase in Arabidopsis thaliana. J Biol Chem 1995;
270: 19093–19099.
[3] AMASINO R. Vernalization, competence, and the epigenetic memory of Winter. Plant Cell 2004; 16:
2553–2559.
[4] AN H, ROUSSOT C, SUAREZ–LOPEZ P, CORBESIER L, VINCENT C, PINEIRO M, HEPWORTH S,
MOURADOV A, JUSTIN S, TURNBULL C, COUPLAND G. CONSTANS acts in the phloem to regulate
a systemic signal that induces photoperiodic flowering of Arabidopsis. Development 2004; 131: 3615–
3626.
[5] AUKERMAN MJ, SAKAI H. Regulation of flowering time and floral organ identity by a microRNA and
its APETALA2-like target genes. Plant Cell 2003; 15: 2730–2741.
[6] AYRE BG, TURGEON R. Graft transmission of a floral stimulant derived from CONSTANS. Plant
Physiol 2004; 135: 2271–2278.
[7] BARTEL DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell 2004; 116: 281–297.
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
45
[8] BERNIER G. The flowering process as an example of plastic development. W: Jennings DH, Trewavas
AJ (eds.). Plasticity in plants. The Company of Biologists, Cambridge 1986: 257–286.
[9] BERNIER G. The control of floral evocation and morphogenesis. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol
1988; 39: 175–219.
[10] BERNIER G, HAVELANGE A, HOUSSA C, PETITJEAN A, LEJEUNE P. Physiological signals that
induce flowering. Plant Cell 1993; 5: 1147–1155.
[11] BERNIER G, KINET JM, SACHS RM. The physiology of flowering 1981; Vol. I, II, CRC Press, Boca
Raton, Fl.
[12] BLÁZQUEZ MA. Flower Development Pathways. J Cell Sci 2000; 113: 3547–3548.
[13] BLÁZQUEZ MA. Plant science. The right time and place for making flowers. Science 2005; 309: 1024–
1025.
[14] BLÁZQUEZ MA, GREEN R, NILSSON O, SUSSMAN MR, WEIGEL D. Gibberellins promote flowering
of Arabidopsis by activating the LEAFY promoter. Plant Cell 1998; 10: 791–800.
[15] BURG SP, BURG EA. The interaction between auxin and ethylene and its role in plant growth. Proc Natl
Acad Sci USA 1966; 55: 262–269.
[16] CHAILAKHYAN MKH. On the hormonal theory of plant development. CR (Dokl) Aca Sci URSS 1936;
12: 443–447.
[17] CHAILAKHYAN MKH. Concerning the hormonal nature of plant development processes. CR (Dokl.)
Acad Sci URSS 1937; 16: 227–230.
[18] CHAILAKHYAN MKH. Hormonale Faktoren des Pflazenblühens. Bio Zbl 1958; 77: 641–662.
[19] CHAILAKHYAN MKH, LOZHNIKOVA V, SEIDLOVA F, KREKULE J, DUDKO N, NEGRETZKY V.
Floral and growth responses in Chenopodium rubrum L. to an extract from flowering Nicotiana tabacum L. Planta 1989; 178: 143–146.
[20] CHEN X. A microRNA as a translational repressor of APETALA2. Arabidopsis flower development.
Science 2004; 303: 2022–2025.
[21] CLELAND CF. The flowering enigma. Bioscience 1978; 28: 265–269.
[22] COLASANTI J. Decoding the floral stimulus: what’s next? Flowering Newslett 2005; 40: 24–26.
[23] COLASANTI J, YUAN Z, SUNDARESAN V. The indeterminate gene encodes a zinc finger protein and
regulates a leaf-generated signal required for the transition to flowering in maize. Cell 1998; 93: 593–
603.
[24] CORBESIER L, COUPLAND G. Photoperiodic flowering of Arabidopsis: Integrating genetic and physiological approaches to characterization of the floral stimulus. Plant Cell Environ 2005; 28: 54–66.
[25] COUPLAND G. Genetic and environmental control of flowering time in Arabidopsis. Trends Genet
1995; 11: 393–397.
[26] FRANKOWSKI K, KÊSY J, KOPCEWICZ J. Fitochrom i transdukcja sygna³u œwietlnego. Post Biochem
2001; 47: 184–191.
[27] GAZZARRINI S, MCCOURT P. Cross-talk in plant hormone signalling: what Arabidopsis mutants are
telling us. Ann Bot 2003; 91: 605–612.
[28] HAVELANGE A, LEJEUNE P, BERNIER G. Sucrose/cytokinin interaction in Sinapis alba at floral
induction: a shoot-to-root-to-shoot physiological loop. Physiol Plant 2000; 109: 343–350.
[29] HAY A, CRAFT J, TSIANTIS M. Plant hormones and homeoboxes: bridging the gap? BioEssays 2004;
26: 395–404.
[30] HAYAMA R, YOKOI S, TAMAKI S, YANO M, SHIMAMOTO K. Adaptation of photoperiodic control
pathways produces short-day flowering in rice. Nature 2003; 422: 719–722.
[31] HE Y, MICHAELS SD, AMASINO RM. Regulation of flowering time by histone acetylation in Arabidopsis. Science 2003; 302: 1751–1754.
[32] HEPWORTH SR, VALVERDE F, RAVENSCROFT D, MOURADOV A, COUPLAND G. Antagonistic
regulation of flowering-time gene SOC1 by CONSTANS and FLC via separate promoter motifs. EMBO
J 2002; 21: 4327–4337.
[33] HETMAN A, KOWALCZYK S. Mono- i disacharydy dro¿d¿owymi, roœlinnymi i zwierzêcymi cz¹steczkami sygna³owymi reguluj¹cymi ekspresjê genów. Post Biol Kom 2003; 30: 87–113.
[34] HUANG T, BOHLENIUS H, ERIKSSON S, PARCY F, NILSSON O. The mRNA of the Arabidopsis gene
FT moves from leaf to shoot apex and induces flowering. Science 2005; 309: 1694–1696.
[35] JACOBSEN SE, OLSZEWSKI NE. Mutations at the SPINDLY locus of Arabidopsis alter gibberellin signal
transduction. Plant Cell 1993; 5: 887–896.
46
W. WOJCIECHOWSKI, J. KÊSY, J. KOPCEWICZ
[36] KARDAILSKY I, SHUKLA VK, AHN JH, DAGENAIS N, CHRISTENSEN SK, NGUYEN JT, CHORY J,
HARRISON MJ, WEIGEL D. Activation tagging of the floral inducer FT. Science 1999; 286: 1962–
1965.
[37] KING RW, EVANS LT. Gibberellins and flowering of grasses and cereals: Prizing open the lid of the
“florigen” black box. Annu Rev Plant Biol 2003; 54: 307–328.
[38] KING RW, MORITZ T, EVANS LT, JUNTTILA O, HERLT AJ. Long-day induction of flowering in
Lolium temulentum involves sequential increases in specific gibberellins at the shoot apex. Plant Physiol
2001; 127: 624–632.
[39] KOBAYASHI Y, KAYA H, GOTO K, IWABUCHI M, ARAKI T. A pair of related genes with antagonistic
roles in mediating flowering signals. Science 1999; 286: 1960–1962.
[40] KOORNNEEF M, HANHART CJ, VAN DER VEEN JH. A genetic and physiological analysis of late
flowering mutants in Arabidopsis thaliana. Mol Gen Genet 1991; 229: 57–66.
[41] KOORNNEEF M, PETERS AJM. Floral transition mutants in Arabidopsis. Plant Cell Environ 1997; 20:
779–784.
[42] KOPCEWICZ J, KULIKOWSKA-GULEWSKA H, CYMERSKI M. Fotoperiodyczna indukcja kwitnienia
roœlin. Wiad Bot 1993; 37: 73–85.
[43] LANG A. Physiology of flower initiation. W: Ruhland W. (ed.) Encyclopedia of Plant Physiology,
Springer-Verlag, Berlin 1965; 15: 1380–1536.
[44] MARTINEZ-ZAPATER JM, COUPLAND G, DEAN C, KOORNNEEF M. The transition to flowering
in Arabidopsis. Cold Spring Harbor Laboratory Press, wyd. Cold Spring Harbor, NY 1994; pod red.
Mayerowitz EM, Somerville CR: 403–433.
[45] MICALLEF BJ, HASKINS KA, VANDERVEER PJ, ROH KS, SHEWMAKER CK, SHARKEY TD.
Altered photosynthesis, flowering, and fruiting in transgenic tomato plants that have an increased
capacity for sucrose synthesis. Planta 1995; 196: 327–334.
[46] MICHAELS SD, AMASINO RM. FLOWERING LOCUS C encodes a novel MADS domain protein that
acts as a repressor of flowering. Plant Cell 1999, 11: 949–956.
[47] MICHNIEWICZ M, LANG A. Effect of nine different gibberellins on stem elongation and flower
formation in cold-requiring and photoperiodic plants grown under non-inductive conditions. Planta
1962; 58: 549–563.
[48] MLOTSHWA S, VOINNET O, METTE MF, MATZKE M, VAUCHERET H, DING SW, PRUSS G,
VANCE VB. RNA silencing and the mobile silencing signal. Plant Cell 2002; 14: 289–301.
[49] MÜLLER–RÖBER B, SONNEWALD U, WILLMITZER L. Inhibition of the ADP-glucose pyrophosphorylase in transgenic potatoes leads to sugar-storing tubers and influences tuber formation and expression of tuber storage protein genes. EMBO J 1992; 11: 1229–1238.
[50] MURFET IC. Flowering in Pisum: three distinct phenotypic classes determined by the interaction of a
dominant early and a dominant late gene. Heredity 1971; 26: 243–257.
[51] NILSSON O, LEE I, BLAZQUEZ MA, WEIGEL D. Flowering-time genes modulate the response to
LEAFY activity. Genetics 1998; 150: 403–410.
[52] OHTO M, ONAI K, FURUKAWA Y, AOKI E, ARAKI T, NAKAMURA K. Effects of sugar on vegetative
development and floral transition in Arabidopsis. Plant Physiol 2001; 127: 252–261.
[53] PARK W, LI J, SONG R, MESSING J, CHEN X. CARPEL FACTORY, a Dicer homolog, and HEIN1, a
novel protein, act in microRNA metabolism in Arabidopsis thaliana. Curr Biol 2002; 12: 1484–1495.
[54] PHARIS RP, KING RW. Gibberellins and reproductive development in seed plants. Ann Rev Plant Physiol
1985; 36: 517–568.
[55] PINEIRO M, COUPLAND G. The control of flowering time and floral identity in Arabidopsis. Plant
Physiol 1998; 117: 1–8.
[56] PUTTERILL J, ROBSON F, LEE K, SIMON R, COUPLAND G. The CONSTANS gene of Arabidopsis
promotes flowering and encodes a protein showing similarities to zinc finger transcription factors. Cell
1995; 80: 847–857.
[57] RAZEM FA, EL-KEREAMY A, ABRAMS SR, HILL RD. The RNA-binding protein FCA is an abscisic
acid receptor. Nature 2006; 439: 290–294.
[58] ROLDÁN M, GÓMEZ-MENA C, RUIZ-GARCÍA L, SALINAS J, MARTÍNEZ-ZAPATER JM. Sucrose
availability on the aerial part of the plant promotes morphogenesis and flowering of Arabidopsis in the
dark. Plant J 1999; 20: 581–590.
[59] ROSS JJ, O’NEILL DP, SMITH JJ, KERCKHOFFS LHJ, ELLIOTT RC. Evidence that auxin promotes
gibberellin A1 biosynthesis in pea. Plant J 2000; 21: 547–552.
FLORIGEN РLEGENDA CZY RZECZYWISTOή?
47
[60] RUIZ–GARCIA L, MADUENO F, WILKINSON M, HAUGHN G, SALINAS J, MARTINEZ–ZAPATER
JM. Different roles of flowering-time genes in the activation of floral initiation genes in Arabidopsis.
Plant Cell 1997; 9: 1921–1934.
[61] SACHS RM, HACKETT WP. Chemical control of flowering. Acta Hort 1977; 68: 29–49.
[62] SCHROEDER JI, KUHN JM. Abscisic acid in bloom. Nature 2006; 439: 277–278.
[63] SHEEN J, ZHOU L, JANG J-C. Sugars as signaling molecules. Curr Opin Plant Biol 1999; 2: 410–418.
[64] SUAREZ–LOPEZ P, WHEATLEY K, ROBSON F, ONOUCHI H, VALVERDE F, COUPLAND G. CONSTANS mediates between the circadian clock and the control of flowering in Arabidopsis. Nature 2001;
410: 1116–1120.
[65] SUTTLE JC. Effect of ethylene treatment on polar IAA transport, netIAA uptake and specific binding
of N-1-naphthylphthalamic acid in tissues and microsomes isolated from etiolated pea epicotyls. Plant
Physiol 1988; 88: 795–799.
[66] TAKENO K. Is florigen concept still alive? Flowering Newslett 1999; 28: 54–58.
[67] TRETYN A, KOPCEWICZ J. Mechanizmy kwitnienia roœlin. I. Uwarunkowania fizjologiczno-œrodowiskowe. Post Biol Kom 1999; 26: 231–248.
[68] TRETYN A, KOPCEWICZ J. Mechanizmy kwitnienia roœlin. II. Genetyczna i molekularna kontrola
indukcji kwitnienia. Post Biol Kom 1999; 26: 249–266.
[69] VALVERDE F, MOURADOV A, SOPPE W, RAVENSCROFT D, SAMACH A, COUPLAND G. Photoreceptor regulation of CONSTANS protein in photoperiodic flowering. Science 2004; 303: 1003–1006.
[70] VANDENBUSSCHE F, VAN DER STRAETEN D. Shaping the shoot: a circuitry that integrates multiple
signals. Trends Plant Sci 2004; 9: 499–506.
[71] VOGEL JP, SCHUERMAN P, WOESTE K, BRANDSTATTER I, KIEBER JJ. Isolation and characterization of Arabidopsis mutants defective in the induction of ethylene biosynthesis by cytokinin. Genetics
1998; 149: 417–427.
[72] von ARNIM AG, OSTERLUND MT, KWOK SF, DENG XW. Genetic and developmental control of
nuclear accumulation of COP1, a repressor of photomorphogenesis in Arabidopsis. Plant Physiol 1997;
114: 779–788.
[73] WAGNER E, NORMANN J, ALBRECHTOVA JTP, WALCZYSKO P, BONZON M, GREPPIN H. Electrochemical-hydraulic signalling in photoperiodic control of flowering: Is florigen a frequency coded
electric signal? Flowering Newslett 1998; 26: 62–74.
[74] WEIGEL D. The genetics of flower development: from floral induction to ovule morphogenesis. Annu
Rev Genet 1995; 29: 19–39.
[75] WILSON RN, HECKMAN JW, SOMERVILLE CR. Gibberellin is required for flowering in Arabidopsis
thaliana under short days. Plant Physiol 1992; 100: 403–408.
[76] YAMAGUCHI A, KOBAYASHI Y, GOTO K, ABE M, ARAKI T. TWIN SISTER OF FT (TSF) acts as a
floral pathway integrator redundantly with FT. Plant Cell Physiol 2005; 46: 1175–1189.
[77] YOO SY, KARDAILSKY I, LEE JS, WEIGEL D, AHN JH. Acceleration of flowering by overexpression
of MFT (MOTHER OF FT AND TFL1). Mol Cells 2004; 17: 95–101.
[78] ZEEVAART JAD. Flower formation as studied by grafting. Mededel Landbouwhogesch Wageningen
1958; 53: 1–88.
[79] ZEEVAART JAD. Physiology of flower formation. Anu Rev Plant Physiol 1976; 27: 321–348.
[80] ZIENKIEWICZ A, TRETYN A, KOPCEWICZ J. Molekularne i fizjologiczne podstawy funkcjonowania roœlinnego zegara oko³odobowego. Post Biol Kom 2004; 31: 607–623.
Redaktor prowadz¹cy – Maria Olszewska
Otrzymano:30.08. 2006 r.
Przyjêto: 14.11. 2006 r.
ul. Gagarina 41/210, 87-100 Toruñ,
[email protected]

Podobne dokumenty