procedura snitarno-higieniczna nr 4/2006

procedura snitarno-higieniczna nr 4/2006

PROCEDURA SNITARNO-HIGIENICZNA NR 4/2006
WOJEWÓDZKI SZPITAL SPECJALISTYCZNY W LEGNICY
TEMAT: ZASADY DEZYNFEKCJI
CEL PROCEDURY: 1. Zapobieganie zakażeniom zakładowym. 2. Bezpieczeństwo pracowników
stosujących preparaty dezynfekcyjne.
ADRESAT: Personel medyczny
AUTOR OPRACOWANIA: pielęgniarka epidemiologiczna mgr Grażyna Filipowicz
LITERATURA:
1) „ Preparaty dezynfekcyjne pozytywnie zaopiniowane przez PZH przeznaczone do
stosowania w zakładach opieki zdrowotnej. Informacja VIII” PZH Zakład Zwalczania
Skażeń Biologicznych Pracownia Sterylizacji i Dezynfekcji, Warszawa 2005.
2) M. Fleischer, B. Bober- Gheek: „Podstawy pielęgniarstwa epidemiologicznego” Centrum
Kształcenia Podyplomowego Pielęgniarek i Położnych, Warszawa 2002
3) D. Sołtysiak-Pawelczuk, S. Tyski: „Antyseptyki. Preparaty do odkażania skóry i tkanek
dopuszczone do obrotu w Polsce” Abacus, Warszawa 2001
DATA OPRACOWANIA: marzec 2004, aktualizacja styczeń 2006.
DATA WPROWADZENIA DO STOSOWANIA:
ZAŁĄCZNIKI:
1. Zasady bezpiecznego stosowania preparatów dezynfekcyjnych
2. Wykaz preparatów dezynfekcyjnych stosowanych w Wojewódzkim Szpitalu
Specjalistycznym obowiązujące od dnia 01.05.2005 (załącznik systematycznie
aktualizowany zgodnie ze zmianami preparatów dezynfekcyjnych
3. Dekontaminacja sprzętu medycznego
4. Przechowywanie artykułów medycznych po sterylizacji
5. Mycie, suszenie, dezynfekcja szkła laboratoryjnego
AKCEPTACJA:
Przewodniczący Komitetu Kontroli
Zakażeń Zakładowych
Pielęgniarka
Naczelna
Dyrektor Szpitala
Załącznik nr 1 do procedury nr 4/2006
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
ZASADY BEZPIECZNEGO STOSOWANIA PREPARATÓW
DEZYNFEKCYJNYCH
Dezynfekcję chemiczną należy stosować z rozwagą i tylko tam gdzie wymaga tego
konieczność oraz nie można wykonać dezynfekcji termicznej.
Preparaty dezynfekcyjne (substancje stężone i preparaty robocze) należy
przechowywać w miejscu niedostępnym dla osób postronnych -pacjentów, osób
odwiedzających.
Roztwory dezynfekcyjne oraz substancje stężone przechowywać w oryginalnych
opakowaniach lub w specjalnie do tego celu przygotowanych pojemnikach.
Pojemnik /opakowanie musi być odpowiednio oznakowane etykietą. Napis na
etykiecie:
- nazwa preparatu,
- stężenie preparatu,
- data sporządzenia roztworu roboczego,
- imię i nazwisko osoby przygotowującej roztwór lub pieczątka Centralnej Rozlewni
Płynów.
Pracownik może być dopuszczony do przygotowywania roztworów i ich stosowania
po przeszkoleniu oraz posiadający aktualne zaświadczenie lekarskie o braku
przeciwwskazań do wykonywania prac w tym zakresie.
W trakcie przygotowywania roztworu roboczego środka dezynfekcyjnego oraz
procesu dezynfekcji:
a) zachować daleko idącą ostrożność,
b) pamiętać o skutecznej wentylacji pomieszczenia, w którym prowadzone są prace ,
c) w pomieszczeniu nie wolno jeść, pić, palić papierosów,
d) w trakcie pracy stosować odpowiednie do zagrożenia środki ochrony osobistej:
rękawice, fartuch, maskę, okulary.
Po kontakcie skóry lub błon śluzowych ze środkiem dezynfekcyjnym, preparat
staranie zmyć wodą z mydłem, śluzówki kilkakrotnie wypłukać czystą wodą, w
sytuacjach poważniejszych zgłosić się do lekarza dyżurnego izby przyjęć.
Czas przechowywania i używania roztworów roboczych środków dezynfekcyjnych:
- preparaty nadtlenowe (Oxapol, Perform, Sekusept...) najlepiej używać
bezpośrednio po sporządzeniu lub jeżeli, producent dopuszcza taką możliwość
zużywać w czasie do 24 godzin,
- preparaty chlorowe (np. 5% chloramina, 3% Savo-Prim) używać do 7 dni od dnia
sporządzenia,
- preparaty aldehydowe z aktywatorem można stosować do 14 dni, licząc od dnia
połączenia z aktywatorem,
- koncentraty i preparaty stężone używać do daty przydatności podanej przez
producenta na opakowaniu.
Roztwory robocze środków dezynfekcyjnych należy pobierać z Centralnej Rozlewni
Płynów. W uzasadnionych sytuacjach pracownicy sami przygotowują bezpośrednio
przed użyciem roztwór środka dezynfekcyjnego o odpowiednim stężeniu.
Sposób przygotowywania roztworów roboczych:
przykład 1. : Przygotuj 1 litr 5% chloraminy (weź 5 części wagowych chloraminy dopełnij do 100 czyli
dodaj 95 części wagowych wody): 50g chloraminy + 950g wody* (950 ml3) = 1000 ml3 5% chloraminy
*1 ml3 wody waży 1g
przykład 2. : Przygotuj 1 litr 28% Savo-Prim (weź 72 objętości wody i dodaj 28 objętości stężonego
Savo-Prim- wlewaj substancję stężoną do wody!): 280 ml3 Savo -Prim + 720 ml3 wody = 1000 ml3 28%
Savo-Prim
jeżeli na opakowaniu umieszczona jest instrukcja przygotowania roztworu oraz dołączona miarka to
stosujemy się ściśle do instrukcji producenta (np. „wsyp miarkę proszku do 1 litra wody”, „rozpuść 6
tabletek w litrze wody” itp...)
9. Nie wolno mieszać preparatów dezynfekcyjnych z detergentami oraz innymi
środkami dezynfekcyjnymi.
10.W obecności ludzi można prowadzić dezynfekcję powierzchni do 2 m2 , jeżeli
dezynfekowana powierzchnia jest większa to należy z pomieszczenia wyprowadzić
ludzi i pozwolić na ponowne wejście dopiero po wywietrzeniu pomieszczenia.
11. Do dezynfekcji powierzchniowej nie wolno używać preparatów z formaldehydem.
Zawartość aldehydu glutarowego w preparacie dezynfekcyjnym nie może być
większa niż 0,2%.
12.Nie zaleca się do stosowania w szpitalu preparatów dezynfekcyjnych w aerozolu.
Takie preparaty można stosować wyłącznie do powierzchni trudno dostępnych,
małych. Nie wolno stosować aerozoli do dezynfekcji powierzchni
zanieczyszczonych substancją lotną oraz prątkami gruźlicy.
13.Czas działania środka do dezynfekcji powierzchni nie może przekraczać 15 minut.
Preparatów o dłuższym czasie działania należy używać wyłącznie do dezynfekcji
przez zanurzenie.
14.Sposób dezynfekcji powierzchni skażonych materiałem biologicznym:
a) na zanieczyszczenie nanieść chlorowy preparat o szerokim spektrum działania,
dezynfekować przez 15 minut, zanieczyszczenie usunąć do spalenia,
b) powtórzyć dezynfekcję skażonej powierzchni,
c) po 15 minutach powierzchnię umyć detergentem.
Czynności wykonać z zastosowaniem jednorazowych środków ochrony osobistej:
rękawic i fartucha. Zainfekowaną stłuczkę szklaną dezynfekować jak wyżej,
zanieczyszczenie zebrać w sposób bezkontaktowy. Użyte środki ochrony osobistej
usunąć do spalenia.
15.Dezynfekcję przez zanurzenie należy prowadzić w pojemnikach pod przykryciem,
opisanych nazwą, stężeniem, datą przygotowania roztworu dezynfekcyjnego. Ściśle
przestrzegać zalecanego czasu dezynfekcji (czas dezynfekcji liczymy od chwili
włożenia do dezynfekcji ostatniego przedmiotu) oraz stężeń preparatów
dezynfekcyjnych. Dezynfekowane sprzęty muszą być całkowicie zanurzone w
preparacie a dreny i butelki wypełnione płynem. W trakcie dezynfekcji należy
wymieniać preparat dezynfekcyjny po jego widocznym zanieczyszczeniu.
16.Resztki krwi i innego płynnego materiału biologicznego przed wylaniem do toalety
należy dezynfekować preparatem o szerokim spektrum działania (B, F, V, Tbc najlepiej chlorowym) stosunku: 1 część materiału biologicznego + 3 części środka
dezynfekującego w pojemniku pod przykryciem w czasie podanym przez producenta
preparatu.
17.W preparatach dezynfekcyjnych nie wolno przechowywać żadnych sprzętów i
narzędzi (kleszczy, pęset, termometrów, przyborów do golenia, szczotek
klozetowych...).
18.Nie wolno przechowywać zużytych preparatów dezynfekcyjnych do następnego
dnia. Po zakończonej dezynfekcji zużyty preparat należy wylać do toalety, pojemnik
zdezynfekować, umyć i przechowywać suchy do kolejnego procesu dezynfekcji.
19.W razie wystąpienia problemów w zakresie zachowania bezpieczeństwa i higieny
pracy oraz prawidłowości procesów dezynfekcji należy zwrócić się do
bezpośredniego przełożonego.
Legnica, luty 2006r.
Załącznik nr 2 do procedury nr 4/2006
WYKAZ PREPARATÓW DEZYNFEKCYJNYCH STOSOWANYCH W
WOJEWÓDZKIM SZPITALU SPECJALISTYCZNYM W LEGNICY
obowiązuje od dnia 01.05.2005r
W przypadkach wątpliwych proszę kontaktować się z Działem Epidemiologii lub
kierownikiem Centralnej Sterylizacji.
DEZYNFEKCJA POWIERZCHNI
PREPARAT
STĘŻENIE
w%
CZAS
ZAKRES
DEZYNFEKCJI DZIAŁANIA
CZAS
PRZYDATNOŚCI
PREPARATU
DO UŻYCIA
CHIROSAN
0,8
15 min
B ,F, Tbc
bezpośrednio po
przygotowaniu
HEXAQUART
1,5
15 min
B, F
do 24 godzin od chwili
sporządzenia
MELISEPTOL
RAPID
stężony
15 min
B, F, Tbc
do daty ważności
podanej na opakowaniu
SAVO-PRIM
3,0
15 min
B, F, V, Tbc
7 dni od daty
sporządzenia
SEPTACID
0,5
15 min
B, F
1,0
15 min
B, F, V
do 12 godzin od chwili
sporządzenia
2,0
15 min
B, F, V, Tbc
0,25
15 min
B, F, V(HIV),
PLUS
SURFANIOS
areozol
Fresh lemon
Tbc
0,75
30 min
B, F,
V(HIV,HBV),
Tbc
do 24 godzin od chwili
sporządzenia ( nie
zmywać)
Obowiązuje od 01.05.2005r
W przypadkach wątpliwych proszę kontaktować się z Działem Epidemiologii lub
kierownikiem Centralnej Sterylizacji.
DEZYNFEKCJA NARZĘDZI
PREPARAT
STĘŻENIE
w%
CZAS
ZAKRES
DEZYNFEKCJI
DZIAŁANIA
CZAS
PRZYDATNOŚCI
PREPARATU DO
UŻYCIA
CHIROSAN
0,8
1h
B, F, V, Tbc
bezpośrednio po
przygotowaniu
HEXANIOS G+R
(preparat myjącodezynfekujący)
0,5
15 min
B, F, Tbc,
do 24 godzin od
chwili sporządzenia
PERA-SAFE
1,62
20 min
B, F, V, Tbc, S
bezpośrednio po
przygotowaniu
PRONTOCID N
2,0
30 min
B, F, V
2,0
2h
B ,F, V, Tbc
14 dni od chwili
sporządzenia
4,0
1h
B, F, V, Tbc
stężony
10 min
B, F, V, Tbc
1h
B, F, V, Tbc, S
STERANIOS 2%
V-(HIV, HBV)
14 dni od
sporządzenia
(aktywność preparatu
sprawdzać
wskaźnikiem)
Obowiązuje od 01.05.2005r
W przypadkach wątpliwych proszę kontaktować się z Działem Epidemiologii lub
kierownikiem Centralnej Sterylizacji.
DEZYNFEKCJA RĄK
REPARAT
STĘŻENIE I
CZAS
STOSOWANIE
ALKOHOL
etylowy 70%
skażony
stężony
Chlorhexidinum
Rozcieńczony:
PROMANUM N
stężony
PRZECIW -
ZAKRES
WSKAZANIA
DZIAŁANIA
1 min
Nadwrażliwość,
nie stosować w
gluconicum 20% 1:40 w 70% etanolu
obrębie OUN, w
1) higieniczne odkażanie rąk 1) 30 sek. okolicach oczu i
2)chirurgiczne odkażanie rąk 2) 2 x 2,5 kanału słuchowego
- wcierać do wyschnięcia
min
1)higieniczne odkażanie rąk
2)chirurgiczne odkażanie rąk
nadwrażliwość na
1) 30 sek składniki
2) 2 x (5
ml x 2
min do
wyschnię
cia )
B, (F)
B, F, V, Tbc
B, F, V (Rota,
HBV, HIV, wirusy
Lipofilne), Tbc
Obowiązuje od 01.05.2005r
ODKAŻANIE RAN, SLUZÓWEK I SKÓRY PACJENTÓW
PREPARAT
BRAUNOL
2000
GDZIE
PRZECIW
STOSOWAĆ
WSKAZANIA
Do odkażania skóry i
śluzówek (jama ustnogardłowa, zewnętrzne
narządy moczowopłciowe,pochwa
spojówki), antyseptyka
oparzeń, owrzodzeń,
zranień, w zakażonych
zmianach skórnych, przed
iniekcjami,przy kaniulacji
żył i tętnic, przed
punkcjami, zabiegami
chirurgicznymi ( przed, w
trakcie i po operacji, przy
zaopatrywaniu ran),
Nadwrażliwość na
jod, nie stosować u
pacjentów z
nadczynnością
tarczycy, 1-2 tyg.
przed terapią jodem
radioaktywnym, u
ciężarnych od 3-go
miesiąca ciąży i w
okresie karmienia, u
noworodków
szczególnie
wcześniaków, do
dezynfekcji jam ciała
(opłucna, otrzewna)
ZAKRES
STĘŻENIE
CZAS
DZIAŁA
NIA
Rozcieńczony:
1) małe rany i
oparzenia 1:3 z
wodą,
1) 5min
B, F, V,
Tbc, S
2)odkażanie całego
2) 15 min
ciała z małymi
ranami, płukanie
jamy ustnej 1:100 z
wodą,
3) zakażenia
pochwy, cewki
moczowej, płukanie
cewnika, płukanie
ortopedycznych ran
pooperacyjnych
1:20 z wodą,
4) otwarte złamania
1:10 z 0,9%NaCl
BRAUNODERM Do odkażania skóry przed
zabiegami operacyjnymi,
iniekcjami, punkcjami,
cewnikowaniem,
pobieraniem krwi,
szczepieniami
Nadwrażliwość na
Nierozcieńczony
składniki, u pacjentów nanieść na skórę
z nadczynnością
jałowym wacikiem,
tarczycy, 1-2 tygodnie
przed terapią jodem
radioaktywnym,
Chlorhexidinum Antyseptyka ran i oparzeń,
gluconicum 20% ropnych zakażeń skóry,
odkażanie pola
operacyjnego,skóry przed
iniekcjami, antyseptyka w
ginekologii i położnictwie,
antyseptyka cewki i
pęcherza moczowego,
cystoskopia, płukanie
otrzewnej,
opłucnej,antyseptyka jamy
ustnej,
Nadwrażliwość, nie
stosować w obrębie
OUN, w okolicach
oczu i kanału
słuchowego
Rozcieńczony:
1:40 w 70%etanolu
1)skóra przed
iniekcjami
2) skóra przed
punkcją stawów
3) pole operacyjne
1:40 w wodzie
antyseptyka ran i
oparzeń
1:400 w wodzie
ginekologia i
położnictwo,
cystoskopia,
płukanie pęcherza
moczowego
1) 15 sek
B, F, V,
2) biopsje i
punkcje – 1
min
Tbc, S
3) wirusobójczy – 2 min
B, F,
V,Tbc
1) 1min
2)2x 2,5 min
3) 2x do
wyschnięcia
Załącznik nr 3 do procedury nr 4/2006
Legnica, luty 2006 r
DEKONTAMINACJA SPRZĘTU MEDYCZNEGO
NAZWA SPRZĘTU
SPOSÓB DEKONTAMINACJI (krótki opis)
Butelki na spirytus
Sterylizacja w CS
Butelki do karmienia niemowląt
Mycie w kuchni mlecznej po stronie brudnej + sterylizacja w CS
Butle do ssaków próżniowych
Dezynfekcja wstępna + dezynfekcja właściwa + mycie + suszenie w oddziale
Butle do ssaków próżniowych i zestawy do Dezynfekcja zawartości i opróżnienie butli w oddziale + mycie w CS
drenażu z OAIIT oraz od pacjentów z „alert
patogenami”
Głowice do USG
Kieliszki szklane
dziecięcego)
Postępowanie zgodne z instrukcją producenta sprzętu/dezynfekcja w oddziale
do
leków
(z
oddziału Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS
Kieliszki szklane do leków (nie dotyczy dzieci) Dezynfekcja + mycie + suszenie w oddziale
Końcówki odprowadzeń EKG, EEG
Zgodnie z instrukcją producenta sprzętu
Kuwety, pojemniki do dezynfekcji sprzętu
Dezynfekcja + mycie + suszenie w oddziale
Laryngoskop
Zgodnie z instrukcją producenta sprzętu lub
Łyżka: dezynfekcja (B, F, V, Tbc) + płukanie jałową wodą + osuszenie
sterylnym gazikiem w oddziale; przechowywać w jałowej serwecie
Rękojeść: dezynfekcja powierzchniowa
Mankiet aparatu do pomiaru RR
Dezynfekcja powierzchniowa w oddziale
Miska nerkowata używana jako „czysta”
Dezynfekcja przez zanurzenie + mycie + suszenie w oddziale
Miska nerkowata używana jako sterylna
Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS
Narzędzia chirurgiczne z bloku operacyjnego
Sterylizacja w CS
Narzędzia chirurgiczne z oddziałów
Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS
Nożyczki „czyste” (do cięcia plastra, papieru...) Dezynfekcja 1x na dyżur i w razie potrzeby
Osprzęt (butelki, rury, maski, dreny, Sterylizacja w CS
nebulizatory) do inhalatorów i tlenoterapii z
oddziałów dziecięcych
Osprzęt do inhalatorów i tlenoterapii z oddziałów dla dorosłych:
a) butelki, dreny, maski, nebulizatory, rury
Mycie w CS
b) butelki, nebulizatory, rury od pacjentów z Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS
„alert patogenem”
c) maski, dreny od pacjentów z „alert patogen.” Utylizacja lub dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS
Osprzęt (rury, nawilżacze) do respiratorów
Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS
NAZWA SPRZĘTU
SPOSÓB DEKONTAMINACJI (krótki opis)
Reduktor do tlenu
Według instrukcji producenta lub dezynfekcja powierzchniowa w oddziale
Smoczki
Mycie w 3% roztworze sody spożywczej w oddziale + sterylizacja w CS
Słuchawki lekarskie
Dezynfekcja powierzchniowa po każdym użyciu
Staza
Dezynfekcja po każdym użyciu, zanieczyszczona krwią- sterylizacja w CS
Sprzęt endoskopowy
Postępowanie zgodnie z odrębnymi przepisami, przez przeszkolony personel
Szpatułki
Metalowe: dez. wstępna w oddziale + ster. w CS; Drewniane: ster. w CS
Termometry
Dezynfekcja + mycie + suszenie w oddziale
Zestaw do drenażu
Dezynfekcja zawartości i opróżnienie butli w oddziale +sterylizacja w CS
1) pojęcie „sterylizacja w CS” (Centralnej Sterylizatorni) - obejmuje proces mycia, dezynfekcji,
suszenia i sterylizacji; do CS odsyłać w szczelnie zamkniętych kontenerach,
2) pojęcie „mycie w CS” - obejmuje proces mycia dezynfekcyjnego + proces suszenia; do CS oddziały
przesyłają sprzęt bez wstępnej dezynfekcji w szczelnie zamkniętych kontenerach,
3) proces dezynfekcji w oddziale odbywa się zgodnie z obowiązującą w szpitalu „Instrukcją
bezpiecznego stosowania preparatów dezynfekcyjnych”,
4) zużytego sprzętu jednorazowego nie wolno poddawać ponownej sterylizacji (sprzęt podlega
utylizacji),
5) w sytuacjach wątpliwości w sprawie postępowania ze sprzętem medycznym prosimy kontaktować
się z kierownikiem CS tel. wew. 685.
Załącznik nr 4 do procedury nr 4/2006
PRZECHOWYWANIE ARTYKUŁÓW MEDYCZNYCH PO STERYLIZACJI
STERYLIZACJA – proces, w wyniku którego ulegają całkowitemu zniszczeniu
wszystkie drobnoustroje oraz ich formy przetrwalnikowe.
1) Wszystkie artykuły medyczne poddawane procesowi sterylizacji powinny być
opakowane. Dobrze wykonane i właściwie użyte opakowanie umożliwia
prawidłową sterylizację i długi okres przechowywania jałowych materiałów.
Najlepsze opakowania to materiały papierowo-foliowe.
2) Okres przechowywania, nie jest zależny od rodzaju sterylizacji, ale od rodzaju
opakowania, a także transportu, przechowywania i wyjmowania materiału z
opakowania.
3) Możliwość zanieczyszczenia materiału przy wyjmowaniu z opakowania jest
dużo większa niż przeniknięcie bakterii przez właściwie zamknięte
opakowanie.
4) Sterylne przedmioty muszą być właściwie przechowywane – ma to wpływ na
jałowość zawartości pakietu. Zaleca się stosowanie dodatkowych ochronnych
opakowań osłonowych (np. w czasie transportu) oraz przechowywanie w
pyłoszczelnych szafach. Nie należy układać zbyt wielu pakietów jeden na
drugim, nie związywać gumkami, a przy przechowywaniu pakietów w
szufladach, dążyć do utrzymania opakowań w całości (bez zagnieceń i
załamań).
5) Należy ograniczyć do niezbędnego minimum dotykanie i przenoszenie
pakietów sterylnych.
PRAWIDŁOWE WARUNKI PRZECHOWYWANIA ARTYKUŁÓW
MEDYCZNYCH:
•
•
•
•
stała temperatura pomiędzy 10-20° C
wilgotność względna - pomiędzy 30-50% (niska wilgotność przedłuża okres
przechowywania)
brak bezpośredniego oddziaływania urządzeń grzewczych, promieniowania
słonecznego i źródeł szkodliwego promieniowania
brak w otoczeniu kurzu i organizmów patogennych
CZAS STERYLNOŚCI ARTYKUŁÓW MEDYCZNYCH W PRAWIDŁOWO
ZAMKNIĘTYCH OPAKOWANIACH:
RODZAJ MATERIAŁU OPAKOWANIOWEGO
OKRES STERYLNOŚCI
2 warstwy papieru
4 tygodnie
Torebka papierowo-foliowa
3 miesiące – oddziały szpitalne
6 miesięcy – blok operacyjny
Kontener do sterylizacji z wewnętrznym opakowaniem
6 miesięcy
Szczotki w podajnikach
7 dni
Kontener z ręcznikami bez wewnętrznej warstwy 1 miesiąc
opakowania
Legnica, luty 2006
Załącznik nr 5 do procedury nr 4/2006
MYCIE, SUSZENIE, DEZYNFEKCJA SZKŁA LABORATORYJNEGO
1) Nałóż odzież ochronną (fartuch foliowy jednorazowy, rękawice ochronne),
2) Wylej resztki płynów ustrojowych do pojemnika z zawartością środka
dezynfekcyjnego o szerokim spektrum działania (B, F, V, Tbc), stosunek
środka dezynfekcyjnego do płynów ustrojowych - 3:1 (3 części środka + 1
część płynów ustrojowych), dezynfekuj w czasie zgodnym z instrukcją
podaną przez producenta preparatu.
3) Szkło laboratoryjne zanurz w roztworze dezynfekcyjnym o szerokim spektrum
działania (B, F, V, Tbc), dezynfekuj w czasie zgodnym z instrukcją podaną
przez producenta preparatu.
4) Po dezynfekcji szkło umyj w roztworze detergentu, wypłucz i wysusz w
suszarce. Suszarkę ustaw na 180° C, po uzyskaniu pożądanej temperatury
ustaw czas suszenia na 60 minut.
5) Po wyjęciu szkło traktuj jako czyste.
PAMIĘTAJ O MYCIU I DEZYNFEKCJI RĄK!!!
POSTĘPOWANIE ZE SZKŁEM LABORATORYJNYM USZKODZONYM W
TRAKCIE BADAŃ
W sytuacji uszkodzenia probówki lub innego pojemnika z materiałem biologicznym
z materiałem potencjalnie zakaźnym wykonaj następujące czynności:
1. Załóż foliowy fartuch jednorazowy oraz rękawice ochronne,
2. Miejsce skażenia obłóż materiałem chłonnym (lignina, papier ręcznikowy),
3. Na skażone miejsce nanieś preparat dezynfekcyjny do powierzchni o szerokim
spektrum działania (B, F, V, Tbc), czas działania preparatu 15 minut,
4. Zbierz zanieczyszczenie metodą bez kontaktową (przy użyciu pęsety, zmiotki
...), usuń do pojemnika o trudnych do przebicia ściankach umieszczonego w
dwuwarstwowym czerwonym worku z przeznaczeniem do utylizacji,
5. Skażone miejsce ponownie pokryj preparatem dezynfekcyjnym – czas
działania preparatu - 15 minut
6. Po zakończeniu neutralizacji skażenia umyj powierzchnię detergentem i traktuj
jako czystą
7. Zużyte rękawice i fartuch usuń do utylizacji jako materiał skażony.
Pamiętaj: UMYJ I ZDEZYNFEKUJ RĘCE!!!
Legnica, luty 2006r.