Czarna nóżka i mokra zgnilizna ziemniaka
Transkrypt
Czarna nóżka i mokra zgnilizna ziemniaka
Czarna nóżka i mokra zgnilizna ziemniaka Zagrożenia, profilaktyka oraz metoda identyfikacji Pectobacterium atrosepticum (Erwinia atroseptica) Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum (Erwinia carotovora) Dickeya dianthicola, Dickeya solani (Erwinia chrysanthemi) Opracowali: prof. dr hab. Ewa Łojkowska, mgr Marta Potrykus, dr Wojciech Śledź, dr Robert Czajkowski, mgr Agata Motyka, Sabina Żołędowska. ZOBR MWB, UG i GUMed This work was supported by grants: • • NCN 7322/B/P01/2011/40 Pol-Nor/202448/28/2013 Czarna nóżka i mokra zgnilizna choroby powodowane przez bakterie pektynolityczne Wśród patogenów bakteryjnych powodujących straty plonów ziemniaka kluczowe znaczenie mają bakterie pektynolityczne uprzednio klasyfikowane do rodzaju Erwinia, a obecnie zaliczane do rodzajów Dickeya i Pectobacterium. Bakterie pektynolityczne wywołują na ziemniaku choroby zwane czarną nóżką i mokrą zgnilizną a na warzywach i roślinach ozdobnych tylko mokrą zgniliznę. Za sprawcę choroby zwanej czarną nóżką uważane są obecnie bakterie z gatunku Pectobacterium atrosepticum, Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum, Dickeya dianthicola i Dickeya solani. W związku z zagrożeniem jakie stanowią bakterie z rodzaju Dickeya dla plantacji nasiennych ziemniaka w Szkocji w roku 2010 ustanowiono zero tolerancji na bakterie z tego rodzaju. Także w krajach Afryki Północnej postulowane jest wprowadzenie podobnej wykładni. W Polsce bakterie z rodzaju Dickeya wykryto na plantacjach ziemniaka po raz pierwszy w roku 2005. Badanie to zostało przeprowadzone w ZOBR MWB UG i GUMed. Od roku 2009 bakterie z rodzaju Dickeya wykrywa się na plantacjach ziemniaka sadzeniaka w Polsce corocznie, ale z różną częstotliwością, w dużym stopniu zależną od średnich temperatur powietrza w okresie letnim. Strategia ochrony ziemniaka, warzyw i roślin ozdobnych przed bakteriami pektynolitycznymi polega przede wszystkim na wczesnym wykrywaniu bakterii, eliminacji zainfekowanego materiału nasiennego oraz dezynfekcji narzędzi i maszyn stosowanych w trakcie uprawy, transportu i przechowywania. Bakterie pektynolityczne stanowią zagrożenie w trakcie wegetacji roślin oraz w czasie przechowywania plonów ze względu na: zdolność bakterii do przeżywania w materiale nasiennym – sadzeniakach ziemniaka, łatwość rozprzestrzeniania się w obrębie uprawy i powodowanie znacznych strat, zdolność przeżywania na resztkach roślinnych, narzędziach, workach, kontenerach, możliwość infekcji latentnej, bezobjawowej, utrzymującej się w tej formie do czasu pojawienia się warunków zewnętrznych sprzyjających rozwojowi infekcji, brak odpornych na bakterie z rodzaju Dickeya i Pectobacterium odmian ziemniaka, brak efektywnych chemicznych i/lub biologicznych metod zwalczania tych bakterii, ograniczonej wiedzy na temat mechanizmów warunkujących wysoką wirulencje tych bakterii. Jak rozpoznać choroby wywoływane przez bakterie pektynolityczne? Na obecność bakterii z rodzajów Dickeya i/lub Pectobacterium na roślinach mogą wskazywać opisane poniżej a występujące w różnych fazach rozwoju roślin objawy. Przed wschodami - brak kiełkowania i w efekcie brak wschodów. Po wschodach - obserwuje się infekcje pierwotne, dla których charakterystyczne są: żółknące liście, zwijające się wzdłuż głównego nerwu, czernienie i gnicie podstawy łodygi oraz więdnięcie liści. Chore rośliny są mniejsze, na ogół słabo ukorzenione i dają się łatwo wyciągnąć z gleby. Rośliny chore stanowią źródło bakterii na plantacji. W trakcie wegetacji - obserwuje się infekcje wtórne, których objawy są podobne jak w przypadku infekcji pierwotnych. Objawy mokrego gnicia mogą być obserwowane na roślinach i bulwach. Źródłem infekcji są chore rośliny, bakterie przenoszone przez wiatr, deszcz i owady. Objawy chorobowe o większym nasileniu występują w latach o większej ilości opadów, na glebach cięższych. W trakcie przechowywania - mokra zgnilizna bulw, czyli na ich powierzchni tworzą się ciemnobrunatne plamy, miąższ ulega rozkładowi. Po uszkodzeniu mechanicznym skórki bulwa ulega rozpadowi, a na zewnątrz wydostaje się masa rozłożonego miąższu. Rozprzestrzenianiu infekcji sprzyjają uszkodzenia mechaniczne bulw w czasie zbioru, a także obecność innych patogenów wywołujących takie choroby jak np. zaraza ziemniaka, sucha zgnilizna, parch zwykły. Profilaktyka Stosowanie wyłącznie zdrowych, wolnych od bakterii pektynolitycznych sadzeniaków ziemniaka. Prowadzenie zabiegów pielęgnacyjnych przy użyciu zdezynfekowanych narzędzi i maszyn. Prowadzenie inspekcji pól uprawnych w trakcie całego sezonu wegetacyjnego. Zbiór ziemniaków powinien odbywać się przy korzystnych warunkach pogodowych: bez deszczu, słonecznych; w przypadku zbioru w warunkach wysokiej wilgotności powietrza zalecane jest dosuszanie bulw ziemniaka przed umieszczeniem w przechowalni. Wykrywanie i identyfikacja bakterii metodami biologii molekularnej Efektywne wykrywanie i identyfikacja bakterii z rodzaju Dickeya i Pectobacterium jest prowadzona metodami biologii molekularnej, opartymi na reakcji łańcuchowej polimerazy DNA (PCR). Testy molekularne pozwalające na wykrycie bakterii z rodzaju Dickeya i Pectobacterium są wykonywane rutynowo na zlecenie firm produkujących sadzeniaki ziemniaka w Holandii, Fot. 1. Wycinanie oczek Szkocji a także krajach skandynawskich. z bulw ziemniaka W Polsce badania diagnostyczne pod kątem obecności bakterii z rodzaju Dickeya i Pectobacterium można zlecić w ZOBR. W trakcie badania tkanka roślinna jest pobierana (Fot. 1), homogenizowana a następnie izolowany jest materiał genetyczny (DNA). Wykrywanie i identyfikacja bakterii prowadzone są metodą Multipleks PCR; pojedynczy test pozwala na wykrycie obecności bakterii z gatunku Pectobacterium atrosepticum, Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum oraz rodzaju Dickeya (Fot. 2). Test PCR-RFLP pozwala na potwierdzenie/wykluczenie obecności w materiale roślinnym bakterii z gatunku Dickeya solani. Opisana metoda wykrywania i identyfikacji została zarejestrowana jako zgłoszenie patentowe. W celu zlecenia wykonania testów diagnostycznych prosimy kontaktować się z ZOBR MWB UG i GUMed w Gdańsku Fot. 2. Elektoforeza agarozowa Multipleks PCR. Pcc - Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum, Pca - Pectobacterium atrosepticum, Dsp – Dickeya sp. Zakład Ochrony i Biotechnologii Roślin MWB UG i GUMed ul. Kładki 24, 80-822 Gdańsk tel. +48 58 523 6360, fax +48 58 5236426 [email protected] [email protected]