sprawozdanie za rok ii - zakład mikrobiologii stosowanej

Transkrypt

sprawozdanie za rok ii - zakład mikrobiologii stosowanej
Program LIDER – IV konkurs RAPORT ROCZNY ZA ROK …2... z realizacji Projektu w ramach Programu „LIDER” ZA OKRES OD 01. 01. 2015 ​
R. DO 31. 12. 2015 ​
R. Podać
numer roku sprawozdawczego 1.DANE O PROJEKCIE Tytuł projektu Nowy algorytm identyfikacji zakażeń ​
Mycobacterium kansasii Nr umowy LIDER/044/457/L­4/12/NCBR/2013 Data rozpoczę
cia realizacji Projektu (zgodnie z umową
) czenia realizacji Projektu 01.​
​
04.​
​
2014 ​
r. Data zakoń
Sł
owa kluczowe Mycobacterium kansasii​
; typowanie genetyczne; molekularna diagnostyka bakteriologiczna; algorytm identyfikacji; epidemiologia Klasyfikacja wg OECD Nauki medyczne i nauki o zdrowiu – Biotechnologia medyczna (zgodnie z umową
) 31.​
​
03.​
​
2017 r. 2. DANE KONTAKTOWE KIEROWNIKA PROJEKTU I JEDNOSTKI Imię
i nazwisko Kierownika Projektu Dr n. med. Tomasz JAGIELSKI (1) 22 55 41 312 Telefon e­mail [email protected] Nazwa Jednostki Uniwersytet Warszawski Adres 00­927 Warszawa; Krakowskie Przedmieście 26/28 Dane osoby odpowiedzialnej ze strony Jednostki za kontakty z NCBR /podać
imię
i nazwisko osoby, stanowisko sł
uż
bowe i nazwa komórki organizacyjnej/ (1) 22 55 41 312 Telefon e­mail Dr n. med. Tomasz JAGIELSKI Fax (1) 22 55 41 402 [email protected] Strona 1​
z 15 Program LIDER – IV konkurs 3. ZADANIA BADAWCZE – ZAAWANSOWANIE PRAC /od począ
tku realizacji projektu/ N
r z
a
d
a
n
i
a
* Status zadania (nie rozpoczę
te/trwa/
zakoń
czone) Planowana realizacja zadania ­ wg harmonogramu umowy * Nazwa zadania* 1 2 3 Przygotowanie materiał
u badawczego; wybór szczepów M. kansasii​
i ich rewitalizacja na pożywkach hodowlanych; zebranie i opracowanie wywiadu epidemiologicznego, w tym zebranie wywiadu o chorych, od których izolowano szczepy; analiza dokumentacji medycznej i laboratoryjnej; izolacja DNA chromosomowego ze szczepów ​
M. kansasii​
; typowanie genetyczne szczepów M. kansasii​
(analiza sekwencyjna – czę
ść I.) Identyfikacja gatunkowa; weryfikacja przynależnoś
ci szczepów do gatunku ​
M. kansasii​
(testy biochemiczne, HPLC, analiza PCR­RFLP); typowanie genetyczne szczepów M. kansasii​
(analiza sekwencyjna – czę
ść II); analiza profilów lekooporności (metoda mikrorozcieńczeń
) Typowanie genetyczne szczepów M. kansasii​
(m. in. analiza PFGE, AFLP, MST, PCR­RFLP, analiza sekwencyjna – czę
ść III); opracowanie nowej metody genotypowania (analiza bioinformatyczna); analizy komparatystyczne i filogenetyczne; określenie pokrewień
stw genetycznych między szczepami ​
M. kansasii​
; wykreślenie struktury genetycznej badanej populacji M. kansasii ZAKOŃ
CZONE ZAKOŃ
CZONE TRWA Termin rozpoczę
cia realizacji zadania Termin zakoń
czenia realizacji zadania 2014­04­01 2014­09­30 148 800 2016­09­30
200 400 2014­10­01
493 200 2015­04­01 Strona 2​
z 15 2014­04­01 2015­03­31
2015­04­01
Data rozpoczęcia realizacji zadania 2014­10­01
Planowany koszt zadania (w zł
) Program LIDER – IV konkurs 4 5 Analiza profilów lekoopornoś
ci (metoda pasków E­test); poszukiwanie genów zwią
zanych z wirulencją ​
M. kansasii​
(analiza bioinformatyczna) i identyfikacja takich genów wśród szczepów M. kansasii​
(PCR sequencing) Integracja i opracowanie danych; analiza statystyczna; propozycja algorytmu identyfikacji szczepów ​
M. kansasii​
o szczególnym znaczeniu epidemiologiczny i klinicznym jako zasady nowego testu diagnostycznego TRWA 2015­12­01
2016­11­30
2016­12­01
NIE ROZPOCZĘ
TE 2017­03­31
236 400 2015­09­01 121 200 NIE DOTYCZY Razem 1 200 000,00 zł
Razem Wypeł
nić
dla wszystkich zadań
od począ
tku realizacji Projektu. *
Wypeł
nić
zgodnie z harmonogramem stanowią
cym zał
ą
cznik nr 2 do umowy. **
Koszt poniesiony – suma kosztów kwalifikowanych w poprzednich latach budż
etowych oraz wydatków poniesionych w bież
ą
cym okresie sprawozdawczym. Strona 3​
z 15 Program LIDER – IV konkurs 4. ZESTAWIENIE KOSZTÓW – STOPIEŃ WYKORZYSTANIA BUDŻETU W bież
ą
cym roku sprawozdawczym Od po
Koszty Planowane ​
* (wg kosztorysu) (w zł
) Koszty Poniesione ​
** (w zł
) Koszty Planowane ​
* (w zł
) 439 800 90 000 470 200 200 000 139 016,55 115 726,29 240 484,48 99 045,47 439 800 90 000 470 200 200 000 1 200 000 594 272,79 1 200 000 1.
Wynagrodzenia z pochodnymi 2. Aparatura 3. Inne koszty bezpoś
rednie 4. Koszty ogólne Cał
kowity koszt realizacji Projektu = suma poz. 1 ­ 4 zgodnie z kosztorysem stanowią
cym zał
ą
cznik nr 3 do umowy Suma wydatków poniesionych w bież
ą
cym okresie sprawozdawczym ***
Suma kosztów kwalifikowanych w poprzednich latach budż
etowych oraz wydatków poniesionych w bież
ą
cym okresie sprawozdawczym *
**
Strona 4​
z 15 Program LIDER – IV konkurs 5. OPIS PRAC REALIZOWANYCH W BIEŻĄCYM OKRESIE SPRAWOZDAWCZYM Zadanie*: nr ​
2 Nazwa zadania: ​
Identyfikacja gatunkowa; weryfikacja przynależ
noś
ci szczepów do gatunku ​
M. kansasii (testy biochemiczne, HPLC, analiza PCR­RFLP); typowanie genetyczne szczepów ​
M. kansasii (analiza sekwencyjna – czę
ś
ć II); analiza profilów lekooporności (metoda mikrorozcień
czeń
) Wykonawcy zadania (imię i nazwisko, pełniona funkcja osób w zespole badawczym biorą
cych udział
w realizacji zadania)​
: 1.
Dr Tomasz Jagielski – a). Analiza sekwencyjna fragmentu 16S rDNA w szczepach ​
Mycobacterium kansasii​
; b). Nadzór merytoryczny nad wszystkimi etapami eksperymentalnymi projektu uruchomionymi i realizowanymi w ramach zadania nr 2; c). Organizacja i prowadzenie spotkań roboczych czł
onków zespoł
u badawczego; d). Współ
autorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych 2.
Mgr Zofia Bakuła – a). ​
Analiza sekwencyjna regionu ITS w szczepach ​
Mycobacterium kansasii​
; b). Współautorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych Mgr Izabela Szulc – a). Typowanie genetyczne szczepów ​
Mycobacterium kansasii w oparciu o sekwencje repetytywne MKAN­MIRU1­18 i MKAN­MIRU23; b). Współ
autorstwo doniesień
zjazdowych Mgr Małgorzata Proboszcz – a). Oznaczanie wraż
liwoś
ci szczepów ​
Mycobacterium kansasii na wybrane leki p/prą
tkowe; b). Współ
autorstwo doniesień
zjazdowych Dr Aleksandra Safianowska – a). Konsultacja przy oznaczaniu lekowraż
liwoś
ci szczepów ​
Mycobacterium kansasii​
; b). Współautorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych 3.
4.
5.
Opis realizowanych prac**​
: W ramach zadania nr 2, zgodnie z Harmonogramem projektu, rozpoczę
tego dn. 1. 10. 2014 r. i zakoń
czonego dn. 31. 03. 2015 r. przeprowadzono typowanie genetyczne szczepów ​
M. kansasii​
, w oparciu o dwa markery, tj. fragment genu 16S rRNA oraz niekodują
cy region ITS (ang. ​
internal transcribed spacer​
) w obrę
bie operonu rRNA. Na podstawie wytypowanych wcześniej (patrz ​
Raport roczny za rok I​
) sekwencji repetytywnych w genomie ​
M. kansasii (MKAN­MIRU1­18 i MKAN­MIRU23) przeprowadzono typowanie genetyczne wybranej kolekcji szczepów ​
M. kansasii​
. Ponadto, w ramach zadania nr 2, zgodnie z Harmonogramem projektu, rozpoczę
to oznaczanie profilów lekowraż
liwości szczepów ​
M. kansasii​
, wg metody mikrorozcieńczeń
. Zadanie*: nr ​
3 Nazwa zadania: ​
Typowanie genetyczne szczepów ​
M. kansasii (m. in. analiza PFGE, AFLP, MST, PCR­RFLP, analiza sekwencyjna – czę
ść III); opracowanie nowej metody genotypowania (analiza bioinformatyczna); analizy komparatystyczne i filogenetyczne; określenie pokrewień
stw genetycznych mię
dzy szczepami ​
M. kansasii​
; wykreś
lenie struktury genetycznej badanej populacji ​
M. kansasii Wykonawcy zadania (imię i nazwisko, pełniona funkcja osób w zespole badawczym biorą
cych udział
w realizacji zadania)​
: 1.
Dr Tomasz Jagielski – a). Analiza sekwencyjna fragmentu genu ​
tuf w wybranych szczepach ​
Mycobacterium kansasii​
; b). Optymalizacja typowania genetycznego prą
tków ​
Mycobacterium kansasii metodąPFGE;
c). Nadzór merytoryczny nad wszystkimi etapami eksperymentalnymi projektu uruchomionymi i realizowanymi w ramach zadania nr 3; d). Organizacja i prowadzenie spotkańroboczych
czł
onków zespoł
u badawczego; d). Współautorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych 2.
Mgr Zofia Bakuł
a – a). ​
Typowanie testem GenoType Mycobacterium CM/AS szczepów klinicznych Mycobacterium kansasii izolowanych od polskich chorych; b). Współautorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych Mgr Izabela Szulc – a). Typowanie genetyczne szczepów ​
Mycobacterium kansasii w oparciu o nowo zaprojektowane sekwencje starterowe MKAN­MIRU1­18 i MKAN­MIRU23; b). analizy bioinformatyczne sekwencji typu „shotgun”; c). Współ
autorstwo doniesień
zjazdowych Mgr Katarzyna Roeske – a). Typowanie testem GenoType Mycobacterium CM/AS szczepów klinicznych Mycobacterium kansasii otrzymanych z zagranicznych kolekcji kultur; b). Wykrywanie plazmid pMK12478 w szczepach ​
Mycobacterium kansasii Mgr Małgorzata Proboszcz – a). Oznaczanie wraż
liwoś
ci szczepów ​
Mycobacterium kansasii na wybrane leki p/prą
tkowe; b). Współ
autorstwo doniesień
zjazdowych Dr Aleksandra Safianowska – a). Konsultacja przy oznaczaniu lekowraż
liwoś
ci szczepów ​
Mycobacterium kansasii​
; b). Współautorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych 3.
4.
5.
6.
Strona 5​
z 15 Program LIDER – IV konkurs Opis realizowanych prac**​
: W ramach zadania nr 3, zgodnie z Harmonogramem projektu, rozpoczę
tego dn. 1. 04. 2015 r. i realizowanego do chwili obecnej, wykonano uzupełniają
ce i koń
cowe typowanie genetyczne szczepów ​
M. kansasii przy uż
yciu komercyjnego zestawu GenoType Mycobacterium CM/AS (Hain Lifescience). Kontynuowano też próby róż
nicowania w obrę
bie typów genetycznych ​
M. kansasii za pomocąlokalizowania
sekwencji repetytywnych MKAN­MIRU1­18 i MKAN­MIRU23. Ponadto, przeprowadzono analizę
sekwencyjną fragmentu genu ​
tuf dla wybranych szczepów ​
M. kansasii i na podstawie otrzymanych wyników zaprojektowano nową metodę (PCR­RFLP) identyfikacji typów genetycznych w obrę
bie gatunku. Podjęto teżbadania
w zakresie pozyskania sekwencji typu „shotgun” wybranych szczepów ​
M. kansasii z uż
yciem metody sekwencjonowania nowej generacji (platforma Illumina). Uzyskano sekwencje dla 18 szczepów ​
M. kansasii​
, reprezentujących róż
ne typy genetyczne i na podstawie tych sekwencji wykonano analizęzmiennoś
ci genów konserwowanych w celu wykrycia potencjalnych markerów zróż
nicowania w obrę
bie typów genetycznych ​
M. kansasii​
. Poszukując determinantów zmienności w szczepach klinicznych ​
M. kansasii​
, przeprowadzono teżanalizęobecnoś
ci plazmidu pMK12478. W trakcie realizacji zadania nr 3, ukoń
czono takż
e oznaczenie profilów lekowrażliwoś
ci szczepów ​
M. kansasii​
, wg metody mikrorozcień
czeń. W koń
cu, w ramach omawianego zadania rozpoczę
to typowanie genetyczne szczepów ​
M. kansasii​
metodą
PFGE (przy użyciu nowo zakupionego zestawu do PFGE ­ Mapper XA Chiller System, 240V (Bio­Rad)). Zadanie*: nr ​
4 Nazwa zadania: ​
Analiza profilów lekooporności (metoda pasków E­test); poszukiwanie genów zwią
zanych z wirulencją
M. kansasii ​
(analiza bioinformatyczna) i identyfikacja takich genów wś
ród szczepów ​
M. kansasii​
(PCR sequencing) Wykonawcy zadania (imię i nazwisko, pełniona funkcja osób w zespole badawczym biorą
cych udział
w realizacji zadania)​
: 1.
Dr Tomasz Jagielski – a). Nadzór merytoryczny nad wszystkimi etapami eksperymentalnymi projektu uruchomionymi i realizowanymi w ramach zadania nr 4; b). Organizacja i prowadzenie spotkańroboczych
czł
onków zespoł
u badawczego; c). Współ
autorstwo publikacji i doniesień zjazdowych 2.
Mgr Zofia Bakuła – a). ​
Określanie wartoś
ci MIC wybranych leków p/prą
tkowych dla szczepów ​
Mycobacterium kansasii​
metodą E­test; b). Współautorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych Dr Aleksandra Safianowska – a). Konsultacja przy oznaczaniu lekowraż
liwoś
ci szczepów ​
Mycobacterium kansasii​
; b). Współautorstwo publikacji i doniesień
zjazdowych 3.
Opis realizowanych prac**​
: W ramach zadania nr 4, rozpoczętego dn. 01. 09. 2015 r., tj. z 3­miesię
cznym wyprzedzeniem w stosunku do Harmonogramu projektu (1. 12. 2015 r.) i realizowanego do chwili obecnej, wykonano pierwsze oznaczenia profilów lekowraż
liwości szczepów ​
M. kansasii​
, wg metody gradientowo­dyfuzyjnej (paski E­test). W ostatnich dniach sprawozdawanego okresu uruchomiono też
analizy bioinformatycznej w celu wykrycia genów zwią
zanych z wirulencją prą
tków ​
M. kansasii​
. Podsumowując, zadanie nr 2 został
o zakoń
czone zgodnie z Harmonogramem projektu. Podobnie, zgodnie z Harmonogramem projektu, przebiega realizacja prac badawczych uję
tych w zadaniach nr 3 i 4. Przy tym, zadanie nr 4 rozpoczę
to 3 miesiące wcześniej niż
pierwotnie zakł
adał
to Harmonogram projektu. Poza tym, niewielkim odstę
pstwem od przyję
tego na począ
tku planu realizacji projektu jest zamknię
cie identyfikacji gatunkowej przy uż
yciu komercyjnego zestawu GenoType Mycobacterium CM/AS (Hain Lifescience), a takż
e oznaczeń profilów lekowraż
liwoś
ci M. kansasii​
, wg metody mikrorozcień
czeń, w ramach zadania nr 3 (a nie – zadnia nr 2, jak na to wskazuje Harmonogram projektu). Na chwilę
obecną nie ma zagrożenia dla terminowego ukoń
czenia projektu (tj. do dn. 31. 03. 2017 r.). Tabelę należy wypełnić tylko dla zadań wykonywanych w bieżącym okresie sprawozdawczym. *Nr i nazwa zadania zgodne z harmonogramem stanowiącym załącznik nr 2 do umowy. ** Opis rezultatów osiągniętych w okresie sprawozdawczym lub działań wykonanych w tym okresie – w przypadku zadań, które nie zostały jeszcze zakończone. 6. SPRAWOZDANIE MERYTORYCZNE​
– PODSUMOWANIE OSIĄGNIĘTYCH WYNIKÓW Strona 6​
z 15 Program LIDER – IV konkurs (nie więcej niż 10 str. A4) 6.1 Sumaryczny opis rezultatów osią
gnię
tych w Projekcie (w podziale na zadania) – od począ
tku realizacji Projektu ZADANIE NR 2 Nazwa zadania: ​
Identyfikacja gatunkowa; weryfikacja przynależ
noś
ci szczepów do gatunku ​
M. kansasii (testy biochemiczne, HPLC, analiza PCR­RFLP); typowanie genetyczne szczepów ​
M. kansasii (analiza sekwencyjna – czę
ś
ć II); analiza profilów lekooporności (metoda mikrorozcieńczeń) Status zadania: ​
zakończone​
/​
w trakcie realizacji​
(wybrać
wł
aś
ciwe) Opis rezultatów: 1.
TYPOWANIE GENETYCZNE SZCZEPÓW ​
M. KANSASII​
(ANALIZA SEKWENCYJNA – CZĘŚĆ II) W poprzednim okresie sprawozdawczym (1. 04. – 31. 12. 2014 r.) przeprowadzono analizę sekwencyjną
fragmentu genu ​
hsp65 (644 pz), fragmentu genu ​
rpoB (342 pz) oraz niekodują
cego regionu ITS (ang. ​
internal transcribed spacer​
), w obrę
bie operonu rRNA (436 pz) dla wybranych 15 szczepów ​
M. kansasii reprezentują
cych róż
ne typy genetyczne i pochodzą
cych z kolekcji Radboud University Nijmegen Medical Centre (patrz ​
Raport roczny za rok I – Sprawozdanie merytoryczne – Zadanie nr 2 pkt 2 Tabela IV​
). W okresie podlegają
cym niniejszemu sprawozdaniu analiząsekwencyjnąw/w
genetycznych loci postanowiono obją
ćpozostał
e szczepy ​
M. kansasii​
, pochodzące od pojedynczych pacjentów (104). Wyniki analizy regionu ITS dla takich szczepów przedstawiono w Tab. I. Tabela I. Wyniki analizy sekwencyjnej regionu ITS dla 104 szczepów ​
M. kansasii​
izolowanych od pojedynczych pacjentów. Liczba szczepów Podobieństwo [%] * sekwencji​
97 100% ** 1​
95% 3 3 <50% brak produktu Oceniane względem sekwencji regionu ITS szczepu ATCC 12478 (szczep referencyjny ​
M. kansasii​
genotyp I); **​
Szczep reprezentujący genotyp II; wszystkie pozostałe szczepy (103) zostały wcześniej oznaczone jako genotyp I. *​
Wszystkie szczepy ​
M. kansasii genotypu I, dla których otrzymano produkt PCR (97/104; 93,3%), miał
y identyczną
sekwencję
ITS. Wyją
tek stanowił
y 3 szczepy, dla których analiza sekwencyjna regionu ITS wykluczył
a przynależ
noś
ćdo
gatunku ​
M. kansasii (wynik ten wskazuje na kontaminację
próbek). Nie zidentyfikowano wystę
powania typów poś
rednich ​
M. kansasii (moż
liwoś
ć
taką
daje wł
aś
nie analiza sekwencyjna regionu ITS [1]). Dla 15 szczepów ​
M. kansasii genotypu I wykonano analizęsekwencyjnąfragmentu
genu ​
rpoB i fragmentu genu 16S rRNA. Podobnie jak w wypadku regionu ITS, nie zaobserwowano ż
adnej zmiennoś
ci sekwencyjnej w obu badanych loci. Na tej podstawie uznano, że nie będą one miały zastosowania jako markery zróż
nicowania genetycznego w obrę
bie typów ​
M. kansasii i zaniechano dalszej analizy (dla pozostałych 89 szczepów). Wysokie (99%) podobień
stwo sekwencji fragmentu genu 16S rRNA między poszczególnymi genotypami ​
M. kansasii​
, wykluczył
o uż
ycie tego regionu równieżjako
markera do identyfikacji do poziomu genotypów. Róż
nice w sekwencjach regionu ITS mię
dzy róż
nymi genotypami ​
M. kansasii starano się
wykorzystać dla zaproponowania nowej metody wykrywania genotypów, podobnej do PCR­RFLP dla genów ​
hsp65 i ​
rpoB​
. W tym celu, korzystają
c z oprogramowania insilico.ehu.es (​
http://insilico.ehu.es/restriction/compare_seq/​
; [2]) poszukiwano w sekwencjach ITS miejsc restrykcyjnych charakterystycznych dla poszczególnych typów genetycznych. Bez powodzenia. Strategia ta okazał
a sięskuteczna
dopiero w wypadku fragmentu genu ​
tuf​
(patrz Zadanie nr 3 pkt 1). 2.
ANALIZA PROFILÓW LEKOOPORNOŚCI (METODA MIKROROZCIEŃCZEŃ) Oznaczenia lekowrażliwości przeprowadzono dla 66 (37,9%) spoś
ród 174 szczepów ​
M. kansasii wytypowanych do badań, gdyż tylko taką liczbę (66) szczepów udało się rewitalizować
. Szczepy te pochodził
y od 47 (45,2%) pacjentów obję
tych badaniem (por. Raport roczny za rok I – Sprawozdanie merytoryczne – Zadanie nr 1 pkt 1​
). Wyniki oznaczeńlekowraż
liwoś
ci, wg metody mikrorozcień
czeń
, omówiono razem z wynikami lekowraż
liwoś
ci, wg metody gradientowo­dyfuzyjnej (paski E­test) (patrz Zadanie nr 4 pkt 1). Strona 7​
z 15 Program LIDER – IV konkurs ZADANIE NR 3 Nazwa zadania: ​
Typowanie genetyczne szczepów ​
M. kansasii (m. in. analiza PFGE, AFLP, MST, PCR­RFLP, analiza sekwencyjna – częś
ćIII);
opracowanie nowej metody genotypowania (analiza bioinformatyczna); analizy komparatystyczne i filogenetyczne; okreś
lenie pokrewieństw genetycznych między szczepami ​
M. kansasii​
; wykreś
lenie struktury genetycznej badanej populacji M. kansasii Status zadania: ​
zakoń
czone​
/​
w trakcie realizacji​
(wybrać
wł
aś
ciwe) Opis rezultatów: 1.
TYPOWANIE GENETYCZNE SZCZEPÓW ​
M. KANSASII​
(ANALIZA SEKWENCYJNA – CZĘŚĆ III) Poszukując nowych markerów zróżnicowania genetycznego ​
M. kansasii​
, wytypowano, w toku analiz bioinformatycznych i przeglą
du piś
miennictwa gen ​
tuf​
, kodują
cy czynnik elongacji translacji EF­Tu. Badania innych autorów wskazywał
y na przydatnoś
ćanalizy
sekwencyjnej tego genu w identyfikacji róż
nych gatunków prą
tków [3]. Do amplifikacji fragmentu genu ​
tuf (740 pz) wykorzystano startery T1/T2 i protokółPCR
wcześ
niej opisane [3]. W pierwszej kolejnoś
ci, analizie sekwencyjnej poddano 15 szczepów ​
M. kansasii prezentujących róż
ne typy genetyczne (por. ​
Zadanie nr 2 pkt 1). Analizy bioinformatyczne wykazał
y istotnązmiennoś
ćsekwencji
fragmentu genu ​
tuf mię
dzy róż
nymi typami genetycznymi, przy jednoczesnej pełnej homologii w obrębie tych samych typów genetycznych. Liczba róż
nic mię
dzy sekwencjami genu ​
tuf dla róż
nych typów genetycznych wahała sięod
14 (typ II ​
versus typ IV) do 46 (typ III ​
versus typ VI) zmian nukleotydowych, przekł
adają
c się
, odpowiednio, na 98% i 93% podobień
stwa sekwencji. Odległości genetyczne mię
dzy poszczególnymi typami genetycznymi ​
M. kansasii (I­VI), na podstawie analizy sekwencyjnej fragmentu genu ​
tuf​
zilustrowano na drzewie filogenetycznym (Ryc. 1). Ryc. 1. Dendrogram ilustrujący odległoś
ci genetyczne mię
dzy badanymi szczepami ​
M. kansasii należ
ą
cymi do różnych typów genetycznych (I­VI), wyprowadzony na podstawie sekwencji fragmentu genu ​
tuf​
. Na podstawie wyników analizy sekwencyjnej fragmentu genu ​
tuf​
, zaprojektowano nowąmetodętypowania
genetycznego M. kansasii​
. W metodzie tej, produkt amplifikacji (PCR) poddaje się analizie restrykcyjnej przy uż
yciu pojedynczego enzymu MvaI. Enzym ten został
wybrany spośród kilkuset innych, w toku symulowanych ​
in silico restrykcji fragmentu genu ​
tuf od róż
nych typów genetycznych ​
M. kansasii​
. Użycie enzymu MvaI dawał
o najbardziej dyskryminatywne (charakterystyczne i ł
atwo identyfikowane dla poszczególnych typów genetycznych ​
M. kansasii​
) wzory restrykcyjne (Tab. II). Tabela II. Profile restrykcyjne dla genotypów I­VI ​
M. kansasii​
, na podstawie PCR­RFLP dla fragmentu genu ​
tuf​
(MvaI). Ty
p Długość
fragmentów restrykcyjnych (MvaI)​
​
[pz] generowanych w analizie​
in silico oczekiwanych w ż
elu agarozowym I II 321, 87, 84, 70, 69, 59, 51 321, 121, 87, 84, 69, 58 320, 90, 70, 60, 50 320, 120, 90, 70, 60 III 321, 171, 71, 69, 58, 51 320, 170, 70, 60, 50 IV 492, 72, 63, 58, 51, 6 490, 70, 60, 50 V VI 390, 171, 71, 57, 51 408, 120, 84, 72, 59 390, 170, 70, 60, 50 410, 120, 80, 70, 60 Strona 8​
z 15 Program LIDER – IV konkurs ZaprojektowanąreakcjęPCR­RFLP
przeprowadzono dla pojedynczych szczepów ​
M. kansasii reprezentują
cych poszczególne genotypy (I­VI) (Ryc. 2), a dalej także dla 80 szczepów klinicznych, wyizolowanych od pojedynczych pacjentów. Wyniki genotypowania był
y całkowicie zbież
ne z wynikami typowania metodą
PCR­RFLP dla genów ​
hsp65 i ​
rpoB oraz metodą
analizy sekwencyjnej regionu ITS uzyskanymi wcześniej (Tabela III). Ryc. 2. Wyniki restrykcji enzymem MvaI sekwencji fragmentu genu ​
tuf otrzymanych w wyniku amplifikacji (PCR) ze szczepów M. kansasii typu: I (ATCC12478), II (B11073207), III (1010001468), IV (1010001458), V (1010001454), VI (NLA001001166); wzorzec wielkości – GeneRuler LowRange DNA Ladder. Tabela III. Porównanie metod dotychczas stosowanych w genotypowaniu ​
M. kansasii i nowo zaprojektowanej metody PCR­RFLP dla genu ​
tuf​
. Oznaczenie szczepu Liczba * szczepów​
Typ genetyczny ustalony metodą
: sekwencjonowani
PCR­RFLP e hsp6
5 rpo
B tu
f ITS ATCC12478; ATCC25221; NLA001000927; NLA001000449; NLA00100521; 1010001495; POL1­9; POL11­80 85 I I I I B11063838; B11073207 NLA0010011128; 1010001469; POL10 5 II II II II 1010001468 1 III III III III 1010001458 1 IV IV IV IV 1010001454; 1010001493 2 V V V V NLA001001166 1 VI VI VI VI Ogółem 95 szczepów; w puli tej – 15 szczepów udostępnionych przez Radboud University Nijmegen Medical Centre i 80 szczepów wyizolowanych od pacjentów z Polski . *
2.
TYPOWANIE GENETYCZNE SZCZEPÓW ​
M. KANSASII​
(ANALIZA SEKWENCYJNA – CZĘŚĆ III) – NEXT GENERATION SEQUENCING (NGS) W ramach zadania nr 3 rozpoczę
to badania w zakresie pozyskania sekwencji typu „shotgun” dla wybranych szczepów ​
M. kansasii przy uż
yciu metody sekwencjonowania nowej generacji (platforma Illumina). Uzyskano sekwencje 18 szczepów ​
M. kansasii​
, reprezentujących różne typy genetyczne (I­VI). W oparciu o zebrane dane sekwencyjne wykonano analizęzmiennoś
ci genów konserwowanych (​
AroC, ArgH, cya, dnaN, thrA, sucA, rpoB, purH, purE, pta, murC, hisD, hemD​
). Przeprowadzono analizę drzew filogenetycznych z wykorzystaniem algorytmu Neighbor Joining. Wytypowano szczególnie interesują
ce geny (np. ​
ArgH​
) do dalszych analiz, mogą
ce spełniać
funkcję markerów zróżnicowania genetycznego w obrę
bie poszczególnych genotypów ​
M. kansasii​
. 3.
TYPOWANIE GENETYCZNE SZCZEPÓW ​
M. KANSASII​
(ANALIZA SEKWENCYJNA – CZĘŚĆ III) – DETEKCJA PLAZMIDU pMK12478 Strona 9​
z 15 Program LIDER – IV konkurs W zwią
zku z doniesieniami o zwią
zku obecnoś
ci plazmidu pMK12478 w szczepach ​
M. kansasii z ich wirulencją
[4,5], korzystając z wcześ
niej opracowanego protokoł
u [5], zbadano wystę
powanie tego plazmidu we wszystkich szczepach obję
tych badaniem (174), a takż
e 15 szczepów pochodzących z kolekcji Radboud University Nijmegen Medical Centre. Wyniki pokazano w Tabeli IV. Spośród 174 badanych szczepów, plazmid pMK12478 wykryto w 34 (19,5%) szczepach, wyizolowanych od 25 (24%) pacjentów. Tabela IV. Obecnoś
ć
plazmidu ​
pMK12478 w szczepach ​
M. kansasii. Nr szczepu Genoty
p ATCC12478 I pMK1247
8 + NLA00100521 I ATCC25221 I NLA001000927 I NLA001000449 Genoty
p 1010001469 II pMK1247
8 + ­ 1010001468 III + ­ 1010001458 IV ­ ­ ­ 1010001454 V I 1010001493 V ­ + 1010001495 I ­ NLA001001166 VI ­ B11073207 II + POL1,8­10,20­6,31,40­3,46,51­2,60­3,130,145,155,160­2,164­5,170,172­3 I + I ­ II ­ Oznaczenie szczepu B11063838 II ­ POL2­7,11­9,27­30,32­9,44­5,47­50,53­9,64­129,131­44,146­54,156­9,16
3,166­9,171,174 NLA001001112
8 II + POL10 4.
TYPOWANIE GENETYCZNE SZCZEPÓW ​
M. KANSASII​
– ANALIZA W OPARCIU O SEKWENCJE REPETYTYWNE MKAN­MIRU Na podstawie opracowanych uprzednio warunków amplifikacji krótkich tandemowych sekwencji powtórzonych zidentyfikowanych w genomie ​
M. kansasii (MKAN­MIRU1­18, MKAN­MIRU23), zbadano ich obecnoś
ćwś
ród wybranych 12 szczepów ​
M. kansasii (w tej liczbie – 7 szczepów genotypu I oraz 5 szczepów genotypu II). Wyniki typowania w oparciu o sekwencje MKAN­MIRU1­18,23 dla 7 szczepów ​
M. kansasii​
genotypu I przedstawiono w Tab. V. Tabela V. Wyniki amplifikacji sekwencji MKAN­MIRU1­18 i MKAN­MIRU23 dla 7 szczepów ​
M. kansasii​
(genotyp I). MKA
N­MI
RU Wielkość produktu dla szczepu wzorc. [pz] Jednostka powtórzon
a [pz] Liczba powtórze
ń
Sekwencj
a flankując
a [pz] 1 2 3 4 5 6 7 8 9 1216 987 1127 771 997 760 822 921 1126 56 68 62 77 57 56 55 57 54 11,9 6,7 6,7 4,5 5,9 6,3 5,8 5,1 5 10 11 12 893 871 934 54 55 57 13 650 14 15 AT
CC 124
78 092
7 77
44 044
9 772
8 62
00 101
000
149
5 550 531 712 425 661 418 573 630 856 1272 987 1189 771 1100 760 822 921 ca​
. 850 1328 987 1189 771 1000 760 877 921 ca.​
850 1328 987 1189 771 1000 760 767 921 ca. ​
850 1328 987 1189 771 1000 760 767 921 ca. ​
850 434 492 632 400 871 brak 400 871 brak 400 871 brak 52 5 390 400 871 ca​
. 550 1328 987 1189 771 1000 760 767 921 ca. 850 400 871 brak 1328 987 1189 771 brak 760 767 921 ca. ​
850 8,5 6,9 5,3 1328 987 1189 771 1000 760 767 921 ca. 850 400 871 brak 680 680 500 560 680 680 ca. 450 613 87 4,6 213 613 613 613 613 613 613 613 524 56 5,8 199 524 524 524 524 524 524 524 16 597 54 4,6 350 400 1200 1200 1200 1200 1200 1200 17 697 62 5 387 689 689 689 689 689 689 689 18 390 53 5,3 109 390 390 390 390 390 390 390 23 634 40 5,1 430 634 634 634 634 634 634 634 400 871 brak Ogólnie, wykazano niewielki potencjałróż
nicują
cy sekwencji MKAN­MIRU1, 5, 7, 12, 13 i 16 pomię
dzy szczepami ​
M. kansasii należ
ącymi do I typu genetycznego i podobnie nieznacznązdolnoś
ćdyskryminatywnąsekwencji
MKAN­MIRU2, 7, 11, 13 i 16 wobec szczepów ​
M. kansasii reprezentujących II typ genetyczny. Obecnie trwają
poszukiwania kolejnych sekwencji repetytywnych, o wię
kszej sile różnicującej w obrę
bie poszczególnych genotypów ​
M. kansasii​
. Strona 10​
z 15 Program LIDER – IV konkurs 5.
TYPOWANIE GENETYCZNE SZCZEPÓW ​
M. KANSASII​
– ANALIZA PFGE Waż
nym etapem badawczym podjętym w ramach zadania nr 3 był
o wł
ą
czenie analizy PFGE (elektroforeza pulsacyjna w zmiennym polu elektrycznym; ang. ​
pulsed­field gel electrophoresis​
) dla oceny zróż
nicowania wewną
trzgatunkowego (na poziomie genotypów i szczepów) ​
M. kansasii​
. Jak dowiedziono wcześ
niej, metoda ta pozwala róż
nicować
szczepy ​
M. kansasii w obrębie poszczególnych typów genetycznych [6,7]. Dotychczas udał
o sięopracowaći
wdroż
yćprotokółanalizy
PFGE, a takż
e zoptymalizować
większość warunków eksperymentalnych (m.in. otrzymanie hodowli szczepów ​
M. kansasii o wł
aś
ciwej gę
stoś
ci optycznej, izolacja DNA w bloczkach agarozowych). Obecnie, procedura PFGE testowana jest dla róż
nych grup szczepów ​
M. kansasii​
. Istotnym elementem bę
dzie zapewnienie powtarzalnoś
ci wyników analizy. 6.
TYPOWANIE GENETYCZNE SZCZEPÓW ​
M. KANSASII​
– ANALIZA AFLP Z uwagi na znaczą
co wyż
szy, wobec pierwotnej oferty handlowej, koszt aparatury do PFGE i podroż
enie odczynników, postanowiono wycofać z zadań badawczych analizę
AFLP, której koszty odczynnikowe są takż
e wysokie (optymalizacja i wdrożenie tej metody zwykle są czasochłonne, przez co koszty materiał
owe mogł
yby istotnie nadwyrę
ż
yć
budż
et projektu). ZADANIE NR 4 Nazwa zadania: ​
Analiza profilów lekooporności (metoda pasków E­test); poszukiwanie genów zwią
zanych z wirulencją
​
M. kansasii (analiza bioinformatyczna) i identyfikacja takich genów wś
ród szczepów ​
M. kansasii​
(PCR sequencing) Status zadania: ​
zakoń
czone​
/​
w trakcie realizacji​
(wybrać
wł
aś
ciwe) Opis rezultatów: 1.
ANALIZA PROFILÓW LEKOOPORNOŚ
CI (METODA PASKÓW E­TEST) Kolejnym zadaniem badawczym projektu realizowanym w sprawozdawanym okresie był
o oznaczenie profilów wraż
liwoś
ci szczepów ​
M. kansasii na leki stosowane w terapii zakaż
eńprą
tkowych, w tym zakaż
eńwywoł
anych prą
tkami ​
M. kansasii​
. Ustalenie profilów lekowrażliwości ​
M. kansasii prowadzono dwiema metodami – metodąrozcień
czeniową(tzw.
metodą
proporcji), a takż
e metodągradientowo­dyfuzyjną
, przy uż
yciu komercyjnie dostępnych, tzw. pasków E­test (Biomérieux). Plan doś
wiadczalny projektu zakładałuż
ycie nastę
pują
cych leków: ryfampicyny (RMP), izoniazydu (INH), etambutolu (EMB), streptomycyny (SM) – tzw. leki I. rzutu, a także etionamidu (ETH), amikacyny (AMK), klarytromycyny (CLR), ryfabutyny (RFB), ciprofloksacyny (CFX), klofazyminy (CFZ) i cykloseryny (CS) – tzw. leki II. rzutu. Z uwagi na wysokie koszty i ograniczoną
dostę
pność niektórych leków, a teżchcą
c zapewnićmaksymalnąpowtarzalnoś
ćwyników
oznaczeńi
ujednolicenie metodyki oznaczeń zdecydowano się
wykonać je przede wszystkim przy uż
yciu komercyjnie dostę
pnych pasków E­test (Biomérieux). (Zaletą pasków E­test jest także możliwośćustalenia
wartości minimalnego stę
ż
enia hamują
cego (MIC, ang. ​
minimal inhibitory concentration​
) leku w trakcie jednego pasaż
u, bez koniecznoś
ci nastawiania szeregu stę
ż
eń
, jak w metodzie rozcień
czeń
). Uż
ycie metody rozcień
czeniowej (proporcji) ograniczono jedynie do zbadania wraż
liwoś
ci na dwa gł
ówne leki p/prą
tkowe, tj. RMP i INH. Ponadto, ze względu na utrudnionądostę
pnośćRFB,
CFX, CFZ i CS postanowiono pominą
ć
je w oznaczeniach, a w ich miejsce włą
czyć
moksyfloksacynę (MFX) i preparat złoż
ony, tj. trimetoprim/sulfametoksazol (TMP/SMX). Ogółem, do badania lekowrażliwości ​
M. kansasii​
, wł
ą
czono 66 szczepów (z ogólnej puli 174 szczepów), bo tyle zachował
o ż
ywotnoś
ć po procesie rewitalizacji (por. ​
Raport roczny za rok I – Sprawozdanie merytoryczne – Zadanie nr 1 pkt 1​
). Badanie lekowrażliwości metodąrozcień
czeń
(proporcji) wykonywano wg wytycznych Clinical and Laboratory Stadards Institute (CLSI) [8], zaś
stosując metodę
pasków E­test, postę
powano ś
ciś
le wg zaleceń producenta. Jako szczepów kontrolnych używano szczepu ​
M. tuberculosis​
H37Rv (metoda rozcień
czeń
) i szczepu ​
M. kansasii​
ATCC12478 (metoda E­test). W sprawozdawanym okresie wykonano oznaczenia wraż
liwoś
ci 66 szczepów ​
M. kansasii na INH i RMP metodą rozcieńczeń
oraz oznaczenia wrażliwości 42 szczepów ​
M. kansasii na 5 leków (RMP, SM, CLM, MOX, TMP/SMX) metodą
pasków E­test. Wyniki zestawiono w Tabeli VI. Tabela VI. Wrażliwość szczepów ​
M. kansasii​
na wybrane leki p/prą
tkowe w metodzie rozcień
czeń
i pasków E­test. Lek Wartoś
ć * krytyczna [mg/L]​
Liczba szczepów opornych (%) Liczba szczepów wraż
liwych (%) Ś
rednia wartoś
ć MIC MIC​
50 MIC​
90 0,008 1,5 0,064 0,023 4 0,094 <0,002 <0,002 E­test RMP SM CLM 1 10 16 0 (0%) 0 (0%) 0 (0%) 42 (100%) 42 (100%) 42 (100%) MOX 2 0 (0%) 42 (100%) 0,011 ± 0,009 2,095 ± 1,5 0,075 ± 0,08 <0,002 ± 0,00015 Strona 11​
z 15 Program LIDER – IV konkurs TMP/SMX 2/38 INH RMP 1 40 43 (100%) 0 (0%) >32/608 >32/60
8 >32/60
8 Metoda rozcień
czeń
(proporcji) 66 (100%) 0 (0%) 0 (0%) 66 (100%) nie dotyczy nie dotyczy Stężenia krytyczne leków w metodzie pasków E­test określone zostały wg wytycznych CLSI lub danych literaturowych [8­10]; stężenia krytyczne leków w metodzie proporcji były zgodne z wytycznymi CLSI [8]. *
Wszystkie szczepy ​
M. kansasii (66) były wraż
liwe na RMP i oporne na INH w metodzie rozcień
czeń (proporcji). W metodzie E­test, wszystkie badane szczepy (43) były wraż
liwe na cztery leki (RMP, SM, CLM, MOX), przy jednoczesnej opornoś
ci na TMP/SMX. Postę
p przy realizacji projektu przedstawiono graficznie na Ryc. 3. RYC. 3. SCHEMAT ILUSTRUJĄ
CY KLUCZOWE ETAPY PROJEKTU – POSTĘ
P PRAC Strona 12​
z 15 Program LIDER – IV konkurs PIŚ
MIENNICTWO: Strona 13​
z 15 Program LIDER – IV konkurs Iwamoto T., Saito H. Comparative study of two typing methods ​
hsp65 PRA and ITS sequencing revealed a possible evolutionary link between ​
Mycobacterium kansasii​
type I and II isolates. FEMS Microbiol. Lett. 254, 129­133 (2005) 2. San Millán RM, et al. Online exercise for the design and simulation of PCR and PCR­RFLP experiments. BMC Res. Notes 6, 513 (2003) 3. Mignard S, Flandrois JP. Identification of ​
Mycobacterium using the EF­Tu encoding (​
tuf​
) gene and the tmRNA encoding (​
ssrA​
) gene. J. Med. Microbiol. 56, 1033­1041 (2007) 4. Wang J, et al. Insights on the emergence of ​
Mycobacterium tuberculosis from the analysis of ​
Mycobacterium kansasii​
. Genome Biol. Evol. 7, 856­870 (2015) 5. Ummels R, et al. Identification of a novel conjugative plasmid in mycobacteria that requires both type IV and type VII secretion. MBio. 5, 01744­01714 (2014) 6. Wallace RJ, et al. DNA large restriction fragment pattern of sporadic and epidemic nosocomial strains of ​
Mycobacterium chelonae​
and ​
Mycobacterium abscessus​
. J. Clin. Microbiol. 31, 2697­2701 (1993) 7. Kwenda G, et al. Molecular characterization of clinical and environmental isolates of ​
Mycobacterium kansasii isolates from South African gold mines. J. Water Health. 3, 190­202 (2015) 8. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Susceptibility testing of Mycobacteria, Nocardiae, and other aerobic Actinomycetes: Approved Standard – Second Edition. M24­2A (2011) 9. Gitti Z, et al. Clinical significance and antibiotic susceptibilities of nontuberculous mycobacteria from patients in Crete, Greece. Future Microbiol. 6, 1099­1109 (2011) 10. Nie W, et al. Species identification and clarithromycin susceptibility testing of 278 clinical nontuberculosis mycobacteria isolates. Biomed Res. Int. 2015, 506598 (2015) 1.
6.2 Spis publikacji powstał
ych w ramach Projektu (tytuł
, autorzy, wydawnictwo – nazwa, tom , rok) Prace oryginalne​
: 1.
2.
Bakuł
a, Z., Modrzejewska, M., Safianowska, A., van Ingen, J., Proboszcz, M., Bielecki, J., Jagielski, T. Proposal of a new method for subtyping of ​
Mycobacterium kansasii based upon PCR­restriction enzyme analysis of the ​
tuf gene. Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 2015. ​
doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2015.12.009. /Impact Factor​
= 2,457/. 2014​
Bakuł
a, Z., Safianowska, A., Nowacka­Mazurek, M., Bielecki, J., Jagielski, T. Subtyping of ​
Mycobacterium kansasii by PCR­Restriction Enzyme Analysis of the ​
hsp65​
gene. Biomed Res. Int., 2013, 2013:178725.​
/Impact Factor​
= 1,579/. 2014​
Prace poglądowe​
: Jagielski, T., Minias, A., van Ingen, J., Rastogi, N., Brzostek, A., Ż
aczek, A., Dziadek, J. Molecular epidemiology of Mycobacterium tuberculosis and other mycobacteria: methodological and clinical aspects. Clin. Microbiol. Rev., 2016, 29(2), 239­290. ​
/Impact Factor​
= 17,406/. – Manuskrypt publikacji przyjęty do pisma dn. 29. 12. 2015 r. 2014​
1.
6.3 Inne formy upowszechniania wyników badań
(np. udział
w konferencjach, sympozjach, wdroż
enia), rok Udział w konferencjach​
: 1.
2.
3.
Bakuł
a, Z., Modrzejewska, M., Safianowska, A., Bielecki, J., Jagielski, T. Proposal of a new method for subtyping of Mycobacterium kansasii based upon PCR­restriction enzyme analysis of the ​
tuf gene. Materiał
y XVI. Konferencji pt.: «Molecular biology in diagnostics of infectious diseases and biotechnology – in memory of Professor Wł
adysł
aw J.H. Kunicki­Goldfinger», Warszawa, S.G.G.W., 2015, str. 35. Żaczek, A., Parniewski, P., Brzostek, A., Szulc­Kieł
bik, I., Struś
, K., Pociask, A., Jagielski, T., Dziadek, J. MIRU­VNTR typing in epidemiological study of ​
Mycobacterium kansasii​
. VII.P.18. Materiał
y VI. Konferencji Weigl’a, Uniwersytet Gdański, Gdań
sk, 2015, str. 157. Bakuł
a, Z., Safianowska, A., Proboszcz, M., Nowacka­Mazurek, M., Bielecki, J., Jagielski, T. Comparison of three PCR­based methods with high­pressure liquid chromatography (HPLC) analysis for the identification of ​
Mycobacterium kansasii clinical isolates. Proceedings of the 25th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, Copenhagen, 2015, P1204. 6.4 Informacja o patentach, zgł
oszeniach patentowych, licencjach, czy wdroż
eniach bę
dą
cych wynikiem projektu, rok Brak 6.5 Informacja o dział
aniach promocyjnych zgodnie z umową
na wykonanie projektu (dotyczy: informowania opinii publicznej o tym, ż
e realizacja Projektu został
a sfinansowana przez Centrum – podać
datę
i miejsce zamieszczenia informacji, sposób informowania) Strona 14​
z 15 Program LIDER – IV konkurs Informacja na stronie Zakładu Mikrobiologii Stosowanej, Wydział
Biologii, Uniwersytet Warszawski: http://zms.biol.uw.edu.pl/projekty­badawcze/ Witryna internetowa dedykowana projektowi: http://zms.biol.uw.edu.pl/LIDER/ 7. ZGODNOŚĆ POSTĘPÓW W REALIZACJI PROJEKTU Z OPISEM PROJEKTU, HARMONOGRAMEM I KOSZTORYSEM PRAC, STANOWIĄCYMI ZAŁĄCZNIKI DO UMOWY ☒ TAK ☐ NIE ​
Czy postę
p i zakres prac są
zgodne z umową
? Jeś
li zaznaczono ​
NIE​
, tzn. w cią
gu okresu sprawozdawczego nastą
pił
y odstę
pstwa od ustaleń rzeczowych/czasowych/finansowych zawartych w umowie, należ
y poniż
ej wskazać
, jakie są
to odstę
pstwa (i jakich zadań
dotyczą
), podać ich przyczyny, wymienić
podję
te lub planowane dział
ania naprawcze, okreś
lić wpł
yw na dalsze prowadzenie projektu i osią
gnię
cie planowanych rezultatów. Zadanie nr … Nazwa zadania …. Odstępstwo: …. Przyczyna: …. Działania naprawcze:…….. Wpływ na rezultaty Projektu:……. Zadanie nr …….. …………. 8. CZY DALSZE PROWADZENIE PRAC PROWADZI DO OSIĄGNIĘCIA ZAKŁADANYCH WYNIKÓW? ☒ Tak ☐ Nie 9. PODPISY I PIECZĘCIE Data i podpis Kierownika Projektu Podpis i pieczę
ć
sł
uż
bowa osoby odpowiedzialnej ze strony Jednostki za czę
ś
ć
finansową
raportu Pieczę
ć
Jednostki 10. POTWIERDZENIE ZŁOŻENIA RAPORTU ​
­ wypełnia NCBR Data zł
oż
enia raportu Imię
i nazwisko pracownika NCBR Podpis Strona 15​
z 15