Ćwiczenie laboratoryjne Wytwarzanie mikrosfer polimerowych
Transkrypt
Ćwiczenie laboratoryjne Wytwarzanie mikrosfer polimerowych
http://mt.ch.pw.edu.pl/page/38.htm Ćwiczenie laboratoryjne Wytwarzanie mikrosfer polimerowych Mikrosfery to małe kulki polimerowe o rozmiarach poniżej 1 mm, natomiast nanosfery charakteryzują się średnicą poniżej 0,1µm. Zarówno mikrocząstki jak i nanocząstki stanowią potencjalne nośniki leku promujące wchłanianie leku przez nabłonek jelit lub błonę śluzową nosa. Rys. 1 Mikrosfery polimerowe Mikrosfery i nanosfery najczęściej otrzymuje się metodą emulsyjną. Matrycą mikro- i nanosfer jest na przykład kopolimer kwasu mlekowego z kwasem glikolowym (PLGA). Polimer ten rozpuszcza się w roztworze dichlorometanu, a substancję leczniczą wprowadza w postaci zemulgowanego roztworu wodnego. Następnie utworzoną w ten sposób emulsję w/o wprowadza się do wodnego roztworu polialkoholu winylowego, co powoduje powstanie emulsji wielokrotnej w/o/w. Podczas mieszania następuje odparowanie dichlorometanu stanowiącego rozpuszczalnik PLGA. Odparowanie rozpuszczalnika powoduje wytrącanie PLGA, w który wnikają cząsteczki substancji leczniczej. 1 Powyższa metoda może byd modyfikowana na wiele sposobów. Jeżeli substancja lecznicza rozpuszcza się w tym samym rozpuszczalniku co polimer wtedy nie jest konieczne tworzenie emulsji wielokrotnej. Można wtedy zastosowad emulsję o/w. Do otrzymywania mikrosfer często wykorzystuje się metodę suszenia rozpyłowego. Ma ona zastosowanie do otrzymywania stosowanych w lecznictwie mikrosfer z bromokryptyną. Roztwór substancji leczniczej i polimeru w dichlorometanie jest poddawany rozpylaniu. Jeśli substancja lecznicza nie jest rozpuszczalna w dichlorometanie wówczas emulguje się roztwór wodny w roztworze polimeru i poddaje się suszeniu emulsję w/o. Zarówno metoda emulsyjna jak i suszenie rozpyłowe pozwala na prowadzenie procesu w temperaturze poniżej 50 °C, co ma znaczenie przy przygotowywaniu mikrosfer z termolabilnymi lekami peptydowymi. W metodzie suszenia rozpyłowego otrzymuje się cząstki mniejsze niż w metodzie emulsyjnej (poniżej 10 µm). Ponadto otrzymane cząstki w metodzie rozpyłowej charakteryzują się znaczną porowatością, szczególnie gdy suszeniu rozpyłowemu była poddana emulsja. Biodegradowalne poliestrowe nanosfery można otrzymad w wyniku dyspersyjnej polimeryzacji laktydów w mieszaninie heksan/dioksan inicjowanej 2,2-dibutylo-2-stanna-1,3dioksepanem. Istotne jest żeby medium polimeryzacji było dobrane w taki sposób aby było rozpuszczalnikiem dla monomeru i nierozpuszczalnikiem dla polimerui,ii. Powyższa metoda pozwala na kontrolę wielkości i mas cząsteczkowych polimeru oraz na wyeliminowanie powstawania ubocznych produktów (oligomerów cyklicznych). Mikrocząstki można także otrzymad wykorzystując ditlenek węgla w stanie ciekłymiii. Jeżeli polimer rozpuszcza się w ditlenku węgla w stanie nadkrytycznym, to można uzyskad mikrosfery w wyniku zlikwidowania nadciśnienia iv . Rozprężający się gaz przestaje byd rozpuszczalnikiem dla polimeru, który wytrąca się. Największą zaletą tej metody jest brak jakichkolwiek pozostałości rozpuszczalnika. Mikrosfery można otrzymad skomplikowaną i ciekawą technologicznie metodą z użyciem ciekłego azotu i etanoluv,vi. Jest ona opatentowana pod nazwą Prolease. Pod warstwą ciekłego azotu znajduje się zamrożony etanol. Do ciekłego azotu natryskuje się zawiesinę substancji leczniczej w roztworze polimeru w dichlorometanie. Wprowadzane cząstki nie mieszają się z ciekłym azotem, ulegają w nim zestaleniu i osadzają się na warstwie zamrożonego etanolu. Następnie w trakcie podwyższania temperatury ciekły azot przechodzi w postad gazową, etanol staje się ciekły i ekstrahuje dichlorometan z cząstek, co prowadzi do wytrącenia się polimeru i utworzenia mikrosfer. Tą metodą otrzymuje się nanosfery z hormonem wzrostu. 2 Mikrosfery można również otrzymad prostą metodą ekstrakcyjną w której stosuje się rozpuszczalniki mieszające się z wodą. Najlepszym rozpuszczalnikiem jest alkohol benzylowy ponieważ jest nietoksyczny i może byd stosowany w lekach pozajelitowychvii. Metoda ta nie wymaga tworzenia trwałego układu emulsyjnego. Polimer jest rozpuszczony w alkoholu wraz z substancją leczniczą. Podczas wkraplania mieszaniny do fazy wodnej stosuje się intensywne mieszanie. Następuje wówczas szybka ekstrakcja alkoholu benzylowego do wody co powoduje wytrącanie się cząstek polimeru. W zależności od szybkości mieszania, obecności związków powierzchniowo czynnych można uzyskiwad nano- lub mikrosfery. Nanocząsteczki można otrzymad dzięki micelizacji molekuł zbudowanych z kopolimerów blokowych, w odpowiednio dobranych rozpuszczalnikach viii . Do syntezy wykorzystad można kopolimery blokowe kwasu mlekowego i poli(tlenku etylenu). polimeryzowane według mechanizmu anionowego. Zaletą tej metody jest łatwy sposób kontrolowania ciężarów cząsteczkowych, wadą natomiast nietrwałośd powstałych cząstek. Każda zmiana stężenia może spowodowad ich rozpad. Podczas przechowywania mikrosfer zawieszonych w roztworze może dochodzid do ich aglomeracji oraz uwalniania substancji czynnej. Z tego powodu mikrosfery przechowuje się w formie suchej. Mikrosfery pozbawione rozpuszczalnika otrzymuje się w wyniku suszenia liofilizacyjnego dyspersji wodnej. Wykonanie ćwiczenia Do dyspozycji studentów będzie poli(ɛ-kaprolakton) oraz zestaw do otrzymywania sfer polimerowych. Zadanie polegało będzie na: 1. Otrzymaniu sfer polimerowych. 2. Pomiarze wielkości ziarna metodą dynamicznego rozpraszania światła Literatura i F. C. Schwab, J. G. Murray, Ind. Eng. Chem. Prod. Res. Dev., 1982, 21, 93. ii S. Penczek, J. Fejgin, W. Sadowska, M. Tomaszewicz, Makromol. Chem., 1968, 116, 203. iii A. Breitenbach, D. Mohr, T. Kissel, J. Control. Release, 2000, 63, 53. iv M. Kiyoshi, M. Kenji, U. Hirotoshi, Y. Shohachiro Environ. Sci. Technol., 2001, 35, 4149. v W. R. Gombotz, M. S. Healy, L. R. Brown, U.S. Patent, 5,019,400, 1991. vi M. Callewaert, D. Laurent-Maquin, F. Edwards-Lévy, Int. J. Pharm., 2007, 344, 161. vii M. Sivakumar, R. K. Panduranga, J. Appl. Polym. Sci., 2002, 83, 3045. viii S. Sosnowski, M. Gadzinowski, S. Słomkowski, Macromolecules, 1996, 29, 4556. 3