W 1884 roku duński lekarz Hans Christian Gram odkrył różnicującą
Transkrypt
W 1884 roku duński lekarz Hans Christian Gram odkrył różnicującą
Instrukcja do ćwiczeń „Biotechnologia żywności ” Technologia Żywności i Żywienie Człowieka r II Kod przedmiotu WNOZIR/TZIZ/S1/D4tiz s. III Ćwiczenie 1. Izolacja DNA z drobnoustrojów gram dodatnich prowadzący dr inż. Wojciech Sawicki W 1884 roku duński lekarz Hans Christian Gram odkrył różnicującą metodę barwienia, która stała się odtąd podstawą podziału bakterii na dwa typy: Gram dodatnie (G+) – budująca ich ściany mureina (peptydoglikan, mukopeptyd) tworzy wielowarstwową błonę. Można ją usunąć działając odpowiednim enzymem – lizozymem. Gram ujemne (G-) – odporne na działanie lizozymu. Ich mureina jest jednowarstwowa i otoczona dodatkową błoną zewnętrzną zbudowaną z białek, fosfolipidów i lipopolisacharydu (LPS) składającego się z części rdzeniowej (lipidu A) oraz wielocukrowego łańcucha (antygenu O) nadającego bakteriom swoistość antygenową. Izolacja DNA jest wstępnym i podstawowym etapem w wielu procedurach stosowanych w biologii molekularnej, mającym zawsze krytyczne znaczenie dla ich dalszego przebiegu. Podstawowym celem jest uzyskanie preparatu DNA o wysokiej czystości i niskim stopniu degradacji. Etap izolacji DNA: fizyczne zniszczenie struktury komórkowej materiału biologicznego liza komórek usunięcie zdegradowanych wcześniej elementów komórkowych (białka, lipidy, polisacharydy polifenole, RNA). oddzielenie DNA od związków użytych w poprzednich działaniach(detergenty, sole, inhibitory). przygotowanie wyekstrahowanego DNA do przechowywania. Zastosowana na ćwiczeniach technika: Technologia AX opiera się na wykorzystaniu unikalnych membran jono-wymiennych wiążących niezwykle efektywnie ujemnie naładowane cząsteczki DNA. Membrany są umieszczone w kolumienkach formatu probówek 15 ml. Przepływ roztworów przez kolumienkę zachodzi pod wpływem sił grawitacji. Zastosowane membrany jonowymienne w określonych warunkach buforowych wiążą DNA z wydajnością blisko 99,0%, podczas gdy większość zanieczyszczeń przechodzi nie wiąże się i jest w ten sposób usuwana. Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie al. Piastów 17, 70-310 Szczecin tel. Centrala +48 91 449 41 11 NIP: 852-254-50-56; REGON: 320588161 rachunek bankowy: 02 1090 1492 0000 0000 4903 0242 www.zut.edu.pl; www.wnozir.zut.edu.pl Stosowany na ćwiczeniach zestaw do izolacji DNA: Genomic Mini AX Bacteria specyfikacja: - materiał: membrana jono-wymienna, - wielkość próbki do izolacji: 0.2 - 1.0 ml 24 godzinnej hodowli komórkowej, - pojemność złoża: 20 μg DNA, - roztwory do elucji DNA ze złoża: bufor o wysokiej sile jonowej, - zastosowania: PCR Wykonanie: 1. Zwirować 0.2 - 1 ml hodowli bakteryjnej i zawiesić w 100 μl buforu do zawieszania bakterii BS. Dodać 10 μl lizozymu (stężenie 10 mg/ml) i inkubować 15 min w 37 °C. Następnie dodać 0.9 ml zawiesiny lizującej LS (uwaga: zawiesinę należy wymieszać przez kilkukrotne odwracanie butelki) oraz 20 μl roztworu Proteazy. 2. Całość wymieszać i inkubować w 50 °C przez 30 min. Probówkę należy mieszać od czasu do czasu przez odwracanie. 3. Po inkubacji próbkę intensywnie worteksować przez 15 sek. a następnie wirować 5 min. przy 10 000 - 14 000 obr./min. 4. W trakcie wirowania przygotować kolumnę umieszczoną w probówce 15 ml i nanieść 0.8 ml roztworu równoważącego K1. Poczekać aż roztwór wypłynie z kolumny. 5. Po wirowaniu pobrać supernatant (na dnie powinien znajdować się zwarty osad stanowiący mieszaninę niezlizowanego materiału oraz drobinek pochodzących z mieszaniny lizującej) i nanieść go na zrównoważoną uprzednio kolumnę. Poczekać aż lizat przejdzie przez kolumnę. 6. Płukać kolumnę przez dodanie 3 ml roztworu płuczącego K2. Poczekać aż roztwór wypłynie z kolumny. 7. Dodać do kolumny 0.25 ml roztworu elucyjnego K3 i poczekać aż wypłynie z kolumny. 8. Przenieść kolumnę do nowej probówki 2 ml, która znajduje się w zestawie (kolumna posiada odpowiednie żeberka pozwalające na łatwe umieszczenie w probówce) i eluować DNA przez dodanie do kolumny 1 ml roztworu elucyjnego K3 9. Do eluatu zawierającego DNA dodać 0.8 ml mieszaniny precypitacyjnej PM. Całość wymieszać i wirować 10 min. przy 12 000 obr./min. 10. Po odwirowaniu zlać supernatant (na dnie powinien być widoczny jasnoniebieski osad DNA) i dodać do probówki 0.5 ml 70% etanolu. Próbkę wymieszać i wirować 3 min. przy 12 000 obr./min. 11. Po wirowaniu zlać supernatant i trzymając probówkę w pozycji odwróconej, przytknąć samą końcówkę pipety (tips bez pipety) do dna i ścianek probówki celem kapilarnego usunięcia resztek alkoholu. Następnie suszyć odwróconą do góry dnem probówkę przez 5 min. w temp. pok. 12. Osad zawiesić w odpowiedniej ilości jałowej wody destylowanej, buforu TE lub buforu 10 mM TRIS pH 8.0 (niebieska barwa osadu pozwala kontrolować proces rozpuszczania DNA). Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie al. Piastów 17, 70-310 Szczecin tel. Centrala +48 91 449 41 11 NIP: 852-254-50-56; REGON: 320588161 rachunek bankowy: 02 1090 1492 0000 0000 4903 0242 www.zut.edu.pl; www.wnozir.zut.edu.pl