Oznaczanie aldehydów w olejkach eterycznych za pomocą TLC
Transkrypt
Oznaczanie aldehydów w olejkach eterycznych za pomocą TLC
Wybrane techniki separacyjne - pracownia Kierunek: Chemia kosmetyczna studia II stopnia, I rok, 2 semestr, rok akademcki 2012/2013 Oznaczanie aldehydów w olejkach eterycznych za pomocą TLC opracowanie: dr hab. Robert Zakrzewski, prof. UŁ; dr Andrzej Leniart; mgr Żaneta Rembisz I. Wstęp Olejki eteryczne stanowią mieszaninę różnorodnych związków organicznych pozyskiwanych z roślin. Głównymi składnikami olejków eterycznych są związki terpenowe i ich pochodne. Ponadto w ich skład wchodzić mogą takie związki jak np.: alkohole, ketony, estry, aldehydy, fenole, etery, kumaryny, kwasy organiczne i inne. Skład olejku uzależniony jest od tego z jakiej rośliny się go pozyskuje, jak i z jakiej części rośliny (np: z liści, kory, kwiatów czy nasion). Na przykład w przypadku olejku cynamonowego pozyskiwanego z drzewa cynamonowego, głównym składnikiem olejku eterycznego pozyskiwanego z kory jest aldehyd cynamonowy, natomiast w przypadku olejku otrzymanego z liści dominuje eugenol. Olejki eteryczne są lotne, łatwo rozpuszczają się w alkoholu etylowym, eterze, tłuszczach, woskach. W temperaturze pokojowej są zazwyczaj oleistymi cieczami. W niższej temperaturze mogą się zestalać tworząc związki stałe tzw. stearopteny. Olejki są optycznie czynne prawo- i lewoskrętne. Charakteryzują się wysokimi temperaturami wrzenia w zakresie 150 °C do 300 °C. Wszystkie są palne. Można pozyskiwać je na drodze ekstrakcji, destylacji z parą wodną czy wytłaczania. Najczęściej są bezbarwne, ale również występują olejki o barwie zielonej, brunatnej czy niebieskiej. Jedną z prostych metod oznaczania jakościowego i ilościowego związków chemicznych jest chromatografia cienkowarstwowa TLC. W metodzie tej wykorzystywanie jest różne powinowactwo substancji do powierzchni adsorbera naniesionego w postaci cienkiej warstwy na płytkę wykonaną np. z aluminium czy szkła. Analizę jakościową w TLC przeprowadza na podstawie położenia plamek na płytce chromatograficznej, natomiast analizę ilościową na podstawie wielkości (powierzchni) plamek oraz ich intensywności. II. Cel Celem ćwiczenia jest oznaczenie ilościowej zawartości aldehydu cynamonowego w handlowym olejku aromatycznym - olejku cynamonowy techniką chromatografii cienkowarstwowej TLC wykorzystując metodę krzywej kalibracyjnej. III. Wykonanie Ćwiczenia Aparatura i sprzęt laboratoryjny aplikator TLC LINOMAT 5 (CAMAG) komora chromatograficzna suszarka kolby miarowe o pojemności 10 ml zlewki o pojemności 25 ml naczynko wagowe probówki plastikowe o pojemności 1,5 ml płytka chromatograficzna TLC Sol-Gel 60 RP18 (Milipore) o wymiarach 7 cm x 5 cm mikropipeta automatyczna nastawna o pojemności 1000 l mikropipeta automatyczna nastawna o pojemności 100 l 1/4 Producer 2013 Andrzej Leniart 1 szt 1 szt 1 szt 7 szt 1 szt 1 szt 8 szt 1 szt 1 szt 1 szt Wybrane techniki separacyjne - pracownia Kierunek: Chemia kosmetyczna studia II stopnia, I rok, 2 semestr, rok akademcki 2012/2013 Odczynniki aldehyd trans-cynamonowy (aldrich) olejek cynamonowy (P.P.H.U. KEJ S. C.) purpald (C2H6N6S) (aldrich) acetonitryl etanol propan-2-ol (izopropanol) roztwór wodorotlenku sodu o stężeniu 1 mol∙dm-3 roztwór aldehydu cynamonowego w acetonitrylu o stężeniu 0,1 mol∙dm-3 roztwór purpaldu o stężeniu 0,1 mol∙dm-3 w 1 mol∙dm-3 NaOH woda destylowana Procedura postąpowania Ćwiczenie składa się z kilku czynności, które należy wykonać kolejno zgodnie z poniższymi poleceniami: 1. Przygotowanie roztworu wyjściowego próbki badanej (olejku eterycznego w tym przypadku olejku cynamonowego) Pobrać mikropipetą 500 l olejku cynamonowego i przenieść do kolbki miarowej o pojemności 10 ml, następnie uzupełnić acetonitrylem i wymieszać. 2. Przygotowanie roztworów wzorcowych zawierających aldehyd cynamonowy Do 5 kolbek miarowych o pojemności 10 ml dodać kolejno roztwór NaOH o stężeniu 1 mol∙dm-3, roztwór purpaldu o stężeniu 0,1 mol∙dm-3 w 1 mol∙dm-3 NaOH i roztwór aldehydu cynamonowego w acetonitrylu o stężeniu 0,1 mol∙dm-3 w objętościach podanych w tabeli poniżej. Wymieszać i odstawić na 45 minut. Po tym czasie uzupełnić kolbkę miarową etanolem. numer kolbki miarowej odczynnik 1 mol∙dm-3 NaOH -3 0,1 mol∙dm aldehydu cynamonowego w acetonitrylu 0,1 mol∙dm-3 purpaldu w 1 mol∙dm-3 NaOH etanol 1 2 3 4 5 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml 200 l 400 l 600 l 800 l 1000 l 300 l 600 l 900 l 1200 l 1500 l po 45 minutach kolbki miarowe uzupełnić należy etanolem 3. Przygotowanie roztworu próbki badanej (olejku cynamonowego) Do kolbki miarowej o pojemności 10 ml dodać 2 ml roztworu NaOH o stężeniu 1 mol∙dm-3, następnie dodać od 200 l do 600 l (konkretną objętość poda prowadzący zajęcia) roztworu wyjściowego próbki badanej (olejku cynamonowego) i 1,5 razy objętości roztworu wyjściowego próbki badanej roztworu purpaldu o stężeniu 0,1 mol∙dm-3 w 1 mol∙dm-3 NaOH. Wymieszać i odstawić na 45 minut. Po tym czasie uzupełnić kolbkę miarową etanolem. 2/4 Producer 2013 Andrzej Leniart Wybrane techniki separacyjne - pracownia Kierunek: Chemia kosmetyczna studia II stopnia, I rok, 2 semestr, rok akademcki 2012/2013 4. Przygotowanie płytki chromatograficznej TLC Sol-Gel 60 RP18 Z aluminiowego arkusza należy wyciąć płytkę o wymiarach 7 cm x 5 cm. 5. Przygotowanie fazy ruchomej i komory chromatograficznej W zlewce o pojemności 25 ml przygotować fazę ruchomą o następującym składzie: faza ruchoma odczynnik objętość propan-2-ol 4 cm woda destylowana 3 2 cm 3 acetonitryl 2 cm3 Przygotowaną fazę ruchomą ostrożnie wlać do komory chromatograficznej i przykryć szklaną płytką. 6. Naniesienie próbek na płytkę chromatograficzną TLC Sol-Gel 60 RP18 Po przygotowaniu wszystkich próbek (zgodnie z punktem 4 i 5) nanieść na przygotowaną płytkę chromatograficzną TLC Sol-Gel 60 RP18 (zgodnie z punktem 6) wszystkie próbki (wzorce + próbka badana) przy użyciu automatycznego aplikatora TLC LINOMAT 5. Parametry nanoszenia: objętość nastrzyku 4 l z szybkością 100 l/s 7. Rozwinięcie chromatogramu Po naniesieniu próbek umieścić płytkę chromatograficzną w komorze chromatograficznej zawierającej fazę ruchomą. Rozwinąć chromatogram. Po rozwinięciu chromatogramu wyjąć płytkę chromatograficzną z komory chromatograficznej i wysuszyć suszarką. 8. Skanowanie płytki chromatograficznej z rozwiniętym chromatogramem - osuszoną płytkę chromatograficzną z rozwiniętym chromatogramem włożyć do skanera HP, - uruchomić program obsługi skanera Centrum obsługi HP (ikona na Pulpicie), - wcisnąć przycisk Skanuj obraz. Skaner uruchomi się automatycznie i na monitorze pojawi się najpierw okno z ustawieniami: typ pliku (powinien być jpg), podstawową nazwę pliku (powinna być grupa, automatycznie będzie dodawany numer obrazu) i lokalizację zapisu (powinna być D:/2013_05_22 TLC) i wcisnąć ok. Skaner wykona szybki podgląd skanowania, przedstawiony na ekranie monitora, - na przedstawionym podglądzie zaznaczamy skanowany obszar (płytkę chromatograficzną) i wciskamy przycisk Akceptuj. Skaner przejdzie automatycznie do skanowania i zapisania obrazu z podanymi ustawieniami. 9. Przeprowadzenie analizy uzyskanego chromatogramu przy użyciu programu TLSee. - uruchomić program TLSee i wczytać zeskanowany obraz płytki chromatograficznej z rozwiniętym chromatogramem: pasek Menu polecenie File → New experiment → without calibration. Odnaleźć lokalizację swojego pliku, zaznaczyć go i wykonać polecenie open, - w oknie Experiment przełączyć się na zakładkę Plate (na dole okna), 3/4 Producer 2013 Andrzej Leniart Wybrane techniki separacyjne - pracownia Kierunek: Chemia kosmetyczna studia II stopnia, I rok, 2 semestr, rok akademcki 2012/2013 - wybrać odpowiednią szerokość obszarów za pomocą których należy zaznaczyć plamki chromatograficzne: pasek Menu polecenie Plate → Fixed Selection → 30+30 3+3, - zaznaczyć każdą plamkę chromatograficzną tak, aby znalazła się cała wewnątrz zaznaczanego obszaru, - przekonwertować chromatogram plamkowy na dane XY przedstawione w postaci wykresów: pasek Menu polecenie Plate → Show Profiles. Po prawej stronie okna pojawią się wykresy odpowiadające poszczególnym plamkom chromatograficznym, - wyznaczyć pole powierzchni po pikami: automatycznie pasek Menu polecenie Chromatography trace → Automatic integration lub ręcznie pasek Menu polecenie Chromatography trace → Integration → Band integration, - spisać wartości współczynnika Rf (Peak Rf) i pole powierzchni pod pikiem S (Area) numer kolbki miarowej (próbki) 1 2 3 4 5 6 współczynnik Rf (Peak Rf) pole powierzchni S (Area) IV. Opracowanie wyników 1. Uzupełnić poniższą tabelę wyliczając ilość aldehydu cynamonowego w [mol] i [nmol] dla każdej próbki roztworu wzorcowego. ilość aldehydu cynamonowego nr próbki pole powierzchni [mol] [nmol] 1 2 3 4 5 2. Wykonać wykres typu Punktowy XY tylko ze znacznikami przedstawiający zależność pola powierzchni od ilości aldehydu cynamonowego w [nmol]. 3. Na wykresie nanieść linię trendu typu liniowego (regresja linowa), nanieść równanie na wykresie i wartość kwadratu współczynnika korelacji R2. 4. Wykonany wykres odpowiednio sformatować tzn. dostosować wielkość wykresu i obszar kreślenia, dobrać skale osi X i Y, rozmiar i style czcionek na wykresie, kolor linii, itp. 5. Na podstawie znanego równania prostej y=ax+b obliczyć ilość aldehydu cynamonowego w próbce badanej (olejku cynamonowego) w [mol] i [nmol]. 4/4 Producer 2013 Andrzej Leniart