procedura snitarno-higieniczna nr 4/2006
Transkrypt
procedura snitarno-higieniczna nr 4/2006
PROCEDURA SNITARNO-HIGIENICZNA NR 4/2006 WOJEWÓDZKI SZPITAL SPECJALISTYCZNY W LEGNICY TEMAT: ZASADY DEZYNFEKCJI CEL PROCEDURY: 1. Zapobieganie zakażeniom zakładowym. 2. Bezpieczeństwo pracowników stosujących preparaty dezynfekcyjne. ADRESAT: Personel medyczny AUTOR OPRACOWANIA: pielęgniarka epidemiologiczna mgr Grażyna Filipowicz LITERATURA: 1) „ Preparaty dezynfekcyjne pozytywnie zaopiniowane przez PZH przeznaczone do stosowania w zakładach opieki zdrowotnej. Informacja VIII” PZH Zakład Zwalczania Skażeń Biologicznych Pracownia Sterylizacji i Dezynfekcji, Warszawa 2005. 2) M. Fleischer, B. Bober- Gheek: „Podstawy pielęgniarstwa epidemiologicznego” Centrum Kształcenia Podyplomowego Pielęgniarek i Położnych, Warszawa 2002 3) D. Sołtysiak-Pawelczuk, S. Tyski: „Antyseptyki. Preparaty do odkażania skóry i tkanek dopuszczone do obrotu w Polsce” Abacus, Warszawa 2001 DATA OPRACOWANIA: marzec 2004, aktualizacja styczeń 2006. DATA WPROWADZENIA DO STOSOWANIA: ZAŁĄCZNIKI: 1. Zasady bezpiecznego stosowania preparatów dezynfekcyjnych 2. Wykaz preparatów dezynfekcyjnych stosowanych w Wojewódzkim Szpitalu Specjalistycznym obowiązujące od dnia 01.05.2005 (załącznik systematycznie aktualizowany zgodnie ze zmianami preparatów dezynfekcyjnych 3. Dekontaminacja sprzętu medycznego 4. Przechowywanie artykułów medycznych po sterylizacji 5. Mycie, suszenie, dezynfekcja szkła laboratoryjnego AKCEPTACJA: Przewodniczący Komitetu Kontroli Zakażeń Zakładowych Pielęgniarka Naczelna Dyrektor Szpitala Załącznik nr 1 do procedury nr 4/2006 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. ZASADY BEZPIECZNEGO STOSOWANIA PREPARATÓW DEZYNFEKCYJNYCH Dezynfekcję chemiczną należy stosować z rozwagą i tylko tam gdzie wymaga tego konieczność oraz nie można wykonać dezynfekcji termicznej. Preparaty dezynfekcyjne (substancje stężone i preparaty robocze) należy przechowywać w miejscu niedostępnym dla osób postronnych -pacjentów, osób odwiedzających. Roztwory dezynfekcyjne oraz substancje stężone przechowywać w oryginalnych opakowaniach lub w specjalnie do tego celu przygotowanych pojemnikach. Pojemnik /opakowanie musi być odpowiednio oznakowane etykietą. Napis na etykiecie: - nazwa preparatu, - stężenie preparatu, - data sporządzenia roztworu roboczego, - imię i nazwisko osoby przygotowującej roztwór lub pieczątka Centralnej Rozlewni Płynów. Pracownik może być dopuszczony do przygotowywania roztworów i ich stosowania po przeszkoleniu oraz posiadający aktualne zaświadczenie lekarskie o braku przeciwwskazań do wykonywania prac w tym zakresie. W trakcie przygotowywania roztworu roboczego środka dezynfekcyjnego oraz procesu dezynfekcji: a) zachować daleko idącą ostrożność, b) pamiętać o skutecznej wentylacji pomieszczenia, w którym prowadzone są prace , c) w pomieszczeniu nie wolno jeść, pić, palić papierosów, d) w trakcie pracy stosować odpowiednie do zagrożenia środki ochrony osobistej: rękawice, fartuch, maskę, okulary. Po kontakcie skóry lub błon śluzowych ze środkiem dezynfekcyjnym, preparat staranie zmyć wodą z mydłem, śluzówki kilkakrotnie wypłukać czystą wodą, w sytuacjach poważniejszych zgłosić się do lekarza dyżurnego izby przyjęć. Czas przechowywania i używania roztworów roboczych środków dezynfekcyjnych: - preparaty nadtlenowe (Oxapol, Perform, Sekusept...) najlepiej używać bezpośrednio po sporządzeniu lub jeżeli, producent dopuszcza taką możliwość zużywać w czasie do 24 godzin, - preparaty chlorowe (np. 5% chloramina, 3% Savo-Prim) używać do 7 dni od dnia sporządzenia, - preparaty aldehydowe z aktywatorem można stosować do 14 dni, licząc od dnia połączenia z aktywatorem, - koncentraty i preparaty stężone używać do daty przydatności podanej przez producenta na opakowaniu. Roztwory robocze środków dezynfekcyjnych należy pobierać z Centralnej Rozlewni Płynów. W uzasadnionych sytuacjach pracownicy sami przygotowują bezpośrednio przed użyciem roztwór środka dezynfekcyjnego o odpowiednim stężeniu. Sposób przygotowywania roztworów roboczych: przykład 1. : Przygotuj 1 litr 5% chloraminy (weź 5 części wagowych chloraminy dopełnij do 100 czyli dodaj 95 części wagowych wody): 50g chloraminy + 950g wody* (950 ml3) = 1000 ml3 5% chloraminy *1 ml3 wody waży 1g przykład 2. : Przygotuj 1 litr 28% Savo-Prim (weź 72 objętości wody i dodaj 28 objętości stężonego Savo-Prim- wlewaj substancję stężoną do wody!): 280 ml3 Savo -Prim + 720 ml3 wody = 1000 ml3 28% Savo-Prim jeżeli na opakowaniu umieszczona jest instrukcja przygotowania roztworu oraz dołączona miarka to stosujemy się ściśle do instrukcji producenta (np. „wsyp miarkę proszku do 1 litra wody”, „rozpuść 6 tabletek w litrze wody” itp...) 9. Nie wolno mieszać preparatów dezynfekcyjnych z detergentami oraz innymi środkami dezynfekcyjnymi. 10.W obecności ludzi można prowadzić dezynfekcję powierzchni do 2 m2 , jeżeli dezynfekowana powierzchnia jest większa to należy z pomieszczenia wyprowadzić ludzi i pozwolić na ponowne wejście dopiero po wywietrzeniu pomieszczenia. 11. Do dezynfekcji powierzchniowej nie wolno używać preparatów z formaldehydem. Zawartość aldehydu glutarowego w preparacie dezynfekcyjnym nie może być większa niż 0,2%. 12.Nie zaleca się do stosowania w szpitalu preparatów dezynfekcyjnych w aerozolu. Takie preparaty można stosować wyłącznie do powierzchni trudno dostępnych, małych. Nie wolno stosować aerozoli do dezynfekcji powierzchni zanieczyszczonych substancją lotną oraz prątkami gruźlicy. 13.Czas działania środka do dezynfekcji powierzchni nie może przekraczać 15 minut. Preparatów o dłuższym czasie działania należy używać wyłącznie do dezynfekcji przez zanurzenie. 14.Sposób dezynfekcji powierzchni skażonych materiałem biologicznym: a) na zanieczyszczenie nanieść chlorowy preparat o szerokim spektrum działania, dezynfekować przez 15 minut, zanieczyszczenie usunąć do spalenia, b) powtórzyć dezynfekcję skażonej powierzchni, c) po 15 minutach powierzchnię umyć detergentem. Czynności wykonać z zastosowaniem jednorazowych środków ochrony osobistej: rękawic i fartucha. Zainfekowaną stłuczkę szklaną dezynfekować jak wyżej, zanieczyszczenie zebrać w sposób bezkontaktowy. Użyte środki ochrony osobistej usunąć do spalenia. 15.Dezynfekcję przez zanurzenie należy prowadzić w pojemnikach pod przykryciem, opisanych nazwą, stężeniem, datą przygotowania roztworu dezynfekcyjnego. Ściśle przestrzegać zalecanego czasu dezynfekcji (czas dezynfekcji liczymy od chwili włożenia do dezynfekcji ostatniego przedmiotu) oraz stężeń preparatów dezynfekcyjnych. Dezynfekowane sprzęty muszą być całkowicie zanurzone w preparacie a dreny i butelki wypełnione płynem. W trakcie dezynfekcji należy wymieniać preparat dezynfekcyjny po jego widocznym zanieczyszczeniu. 16.Resztki krwi i innego płynnego materiału biologicznego przed wylaniem do toalety należy dezynfekować preparatem o szerokim spektrum działania (B, F, V, Tbc najlepiej chlorowym) stosunku: 1 część materiału biologicznego + 3 części środka dezynfekującego w pojemniku pod przykryciem w czasie podanym przez producenta preparatu. 17.W preparatach dezynfekcyjnych nie wolno przechowywać żadnych sprzętów i narzędzi (kleszczy, pęset, termometrów, przyborów do golenia, szczotek klozetowych...). 18.Nie wolno przechowywać zużytych preparatów dezynfekcyjnych do następnego dnia. Po zakończonej dezynfekcji zużyty preparat należy wylać do toalety, pojemnik zdezynfekować, umyć i przechowywać suchy do kolejnego procesu dezynfekcji. 19.W razie wystąpienia problemów w zakresie zachowania bezpieczeństwa i higieny pracy oraz prawidłowości procesów dezynfekcji należy zwrócić się do bezpośredniego przełożonego. Legnica, luty 2006r. Załącznik nr 2 do procedury nr 4/2006 WYKAZ PREPARATÓW DEZYNFEKCYJNYCH STOSOWANYCH W WOJEWÓDZKIM SZPITALU SPECJALISTYCZNYM W LEGNICY obowiązuje od dnia 01.05.2005r W przypadkach wątpliwych proszę kontaktować się z Działem Epidemiologii lub kierownikiem Centralnej Sterylizacji. DEZYNFEKCJA POWIERZCHNI PREPARAT STĘŻENIE w% CZAS ZAKRES DEZYNFEKCJI DZIAŁANIA CZAS PRZYDATNOŚCI PREPARATU DO UŻYCIA CHIROSAN 0,8 15 min B ,F, Tbc bezpośrednio po przygotowaniu HEXAQUART 1,5 15 min B, F do 24 godzin od chwili sporządzenia MELISEPTOL RAPID stężony 15 min B, F, Tbc do daty ważności podanej na opakowaniu SAVO-PRIM 3,0 15 min B, F, V, Tbc 7 dni od daty sporządzenia SEPTACID 0,5 15 min B, F 1,0 15 min B, F, V do 12 godzin od chwili sporządzenia 2,0 15 min B, F, V, Tbc 0,25 15 min B, F, V(HIV), PLUS SURFANIOS areozol Fresh lemon Tbc 0,75 30 min B, F, V(HIV,HBV), Tbc do 24 godzin od chwili sporządzenia ( nie zmywać) Obowiązuje od 01.05.2005r W przypadkach wątpliwych proszę kontaktować się z Działem Epidemiologii lub kierownikiem Centralnej Sterylizacji. DEZYNFEKCJA NARZĘDZI PREPARAT STĘŻENIE w% CZAS ZAKRES DEZYNFEKCJI DZIAŁANIA CZAS PRZYDATNOŚCI PREPARATU DO UŻYCIA CHIROSAN 0,8 1h B, F, V, Tbc bezpośrednio po przygotowaniu HEXANIOS G+R (preparat myjącodezynfekujący) 0,5 15 min B, F, Tbc, do 24 godzin od chwili sporządzenia PERA-SAFE 1,62 20 min B, F, V, Tbc, S bezpośrednio po przygotowaniu PRONTOCID N 2,0 30 min B, F, V 2,0 2h B ,F, V, Tbc 14 dni od chwili sporządzenia 4,0 1h B, F, V, Tbc stężony 10 min B, F, V, Tbc 1h B, F, V, Tbc, S STERANIOS 2% V-(HIV, HBV) 14 dni od sporządzenia (aktywność preparatu sprawdzać wskaźnikiem) Obowiązuje od 01.05.2005r W przypadkach wątpliwych proszę kontaktować się z Działem Epidemiologii lub kierownikiem Centralnej Sterylizacji. DEZYNFEKCJA RĄK REPARAT STĘŻENIE I CZAS STOSOWANIE ALKOHOL etylowy 70% skażony stężony Chlorhexidinum Rozcieńczony: PROMANUM N stężony PRZECIW - ZAKRES WSKAZANIA DZIAŁANIA 1 min Nadwrażliwość, nie stosować w gluconicum 20% 1:40 w 70% etanolu obrębie OUN, w 1) higieniczne odkażanie rąk 1) 30 sek. okolicach oczu i 2)chirurgiczne odkażanie rąk 2) 2 x 2,5 kanału słuchowego - wcierać do wyschnięcia min 1)higieniczne odkażanie rąk 2)chirurgiczne odkażanie rąk nadwrażliwość na 1) 30 sek składniki 2) 2 x (5 ml x 2 min do wyschnię cia ) B, (F) B, F, V, Tbc B, F, V (Rota, HBV, HIV, wirusy Lipofilne), Tbc Obowiązuje od 01.05.2005r ODKAŻANIE RAN, SLUZÓWEK I SKÓRY PACJENTÓW PREPARAT BRAUNOL 2000 GDZIE PRZECIW STOSOWAĆ WSKAZANIA Do odkażania skóry i śluzówek (jama ustnogardłowa, zewnętrzne narządy moczowopłciowe,pochwa spojówki), antyseptyka oparzeń, owrzodzeń, zranień, w zakażonych zmianach skórnych, przed iniekcjami,przy kaniulacji żył i tętnic, przed punkcjami, zabiegami chirurgicznymi ( przed, w trakcie i po operacji, przy zaopatrywaniu ran), Nadwrażliwość na jod, nie stosować u pacjentów z nadczynnością tarczycy, 1-2 tyg. przed terapią jodem radioaktywnym, u ciężarnych od 3-go miesiąca ciąży i w okresie karmienia, u noworodków szczególnie wcześniaków, do dezynfekcji jam ciała (opłucna, otrzewna) ZAKRES STĘŻENIE CZAS DZIAŁA NIA Rozcieńczony: 1) małe rany i oparzenia 1:3 z wodą, 1) 5min B, F, V, Tbc, S 2)odkażanie całego 2) 15 min ciała z małymi ranami, płukanie jamy ustnej 1:100 z wodą, 3) zakażenia pochwy, cewki moczowej, płukanie cewnika, płukanie ortopedycznych ran pooperacyjnych 1:20 z wodą, 4) otwarte złamania 1:10 z 0,9%NaCl BRAUNODERM Do odkażania skóry przed zabiegami operacyjnymi, iniekcjami, punkcjami, cewnikowaniem, pobieraniem krwi, szczepieniami Nadwrażliwość na Nierozcieńczony składniki, u pacjentów nanieść na skórę z nadczynnością jałowym wacikiem, tarczycy, 1-2 tygodnie przed terapią jodem radioaktywnym, Chlorhexidinum Antyseptyka ran i oparzeń, gluconicum 20% ropnych zakażeń skóry, odkażanie pola operacyjnego,skóry przed iniekcjami, antyseptyka w ginekologii i położnictwie, antyseptyka cewki i pęcherza moczowego, cystoskopia, płukanie otrzewnej, opłucnej,antyseptyka jamy ustnej, Nadwrażliwość, nie stosować w obrębie OUN, w okolicach oczu i kanału słuchowego Rozcieńczony: 1:40 w 70%etanolu 1)skóra przed iniekcjami 2) skóra przed punkcją stawów 3) pole operacyjne 1:40 w wodzie antyseptyka ran i oparzeń 1:400 w wodzie ginekologia i położnictwo, cystoskopia, płukanie pęcherza moczowego 1) 15 sek B, F, V, 2) biopsje i punkcje – 1 min Tbc, S 3) wirusobójczy – 2 min B, F, V,Tbc 1) 1min 2)2x 2,5 min 3) 2x do wyschnięcia Załącznik nr 3 do procedury nr 4/2006 Legnica, luty 2006 r DEKONTAMINACJA SPRZĘTU MEDYCZNEGO NAZWA SPRZĘTU SPOSÓB DEKONTAMINACJI (krótki opis) Butelki na spirytus Sterylizacja w CS Butelki do karmienia niemowląt Mycie w kuchni mlecznej po stronie brudnej + sterylizacja w CS Butle do ssaków próżniowych Dezynfekcja wstępna + dezynfekcja właściwa + mycie + suszenie w oddziale Butle do ssaków próżniowych i zestawy do Dezynfekcja zawartości i opróżnienie butli w oddziale + mycie w CS drenażu z OAIIT oraz od pacjentów z „alert patogenami” Głowice do USG Kieliszki szklane dziecięcego) Postępowanie zgodne z instrukcją producenta sprzętu/dezynfekcja w oddziale do leków (z oddziału Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS Kieliszki szklane do leków (nie dotyczy dzieci) Dezynfekcja + mycie + suszenie w oddziale Końcówki odprowadzeń EKG, EEG Zgodnie z instrukcją producenta sprzętu Kuwety, pojemniki do dezynfekcji sprzętu Dezynfekcja + mycie + suszenie w oddziale Laryngoskop Zgodnie z instrukcją producenta sprzętu lub Łyżka: dezynfekcja (B, F, V, Tbc) + płukanie jałową wodą + osuszenie sterylnym gazikiem w oddziale; przechowywać w jałowej serwecie Rękojeść: dezynfekcja powierzchniowa Mankiet aparatu do pomiaru RR Dezynfekcja powierzchniowa w oddziale Miska nerkowata używana jako „czysta” Dezynfekcja przez zanurzenie + mycie + suszenie w oddziale Miska nerkowata używana jako sterylna Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS Narzędzia chirurgiczne z bloku operacyjnego Sterylizacja w CS Narzędzia chirurgiczne z oddziałów Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS Nożyczki „czyste” (do cięcia plastra, papieru...) Dezynfekcja 1x na dyżur i w razie potrzeby Osprzęt (butelki, rury, maski, dreny, Sterylizacja w CS nebulizatory) do inhalatorów i tlenoterapii z oddziałów dziecięcych Osprzęt do inhalatorów i tlenoterapii z oddziałów dla dorosłych: a) butelki, dreny, maski, nebulizatory, rury Mycie w CS b) butelki, nebulizatory, rury od pacjentów z Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS „alert patogenem” c) maski, dreny od pacjentów z „alert patogen.” Utylizacja lub dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS Osprzęt (rury, nawilżacze) do respiratorów Dezynfekcja wstępna w oddziale + sterylizacja w CS NAZWA SPRZĘTU SPOSÓB DEKONTAMINACJI (krótki opis) Reduktor do tlenu Według instrukcji producenta lub dezynfekcja powierzchniowa w oddziale Smoczki Mycie w 3% roztworze sody spożywczej w oddziale + sterylizacja w CS Słuchawki lekarskie Dezynfekcja powierzchniowa po każdym użyciu Staza Dezynfekcja po każdym użyciu, zanieczyszczona krwią- sterylizacja w CS Sprzęt endoskopowy Postępowanie zgodnie z odrębnymi przepisami, przez przeszkolony personel Szpatułki Metalowe: dez. wstępna w oddziale + ster. w CS; Drewniane: ster. w CS Termometry Dezynfekcja + mycie + suszenie w oddziale Zestaw do drenażu Dezynfekcja zawartości i opróżnienie butli w oddziale +sterylizacja w CS 1) pojęcie „sterylizacja w CS” (Centralnej Sterylizatorni) - obejmuje proces mycia, dezynfekcji, suszenia i sterylizacji; do CS odsyłać w szczelnie zamkniętych kontenerach, 2) pojęcie „mycie w CS” - obejmuje proces mycia dezynfekcyjnego + proces suszenia; do CS oddziały przesyłają sprzęt bez wstępnej dezynfekcji w szczelnie zamkniętych kontenerach, 3) proces dezynfekcji w oddziale odbywa się zgodnie z obowiązującą w szpitalu „Instrukcją bezpiecznego stosowania preparatów dezynfekcyjnych”, 4) zużytego sprzętu jednorazowego nie wolno poddawać ponownej sterylizacji (sprzęt podlega utylizacji), 5) w sytuacjach wątpliwości w sprawie postępowania ze sprzętem medycznym prosimy kontaktować się z kierownikiem CS tel. wew. 685. Załącznik nr 4 do procedury nr 4/2006 PRZECHOWYWANIE ARTYKUŁÓW MEDYCZNYCH PO STERYLIZACJI STERYLIZACJA – proces, w wyniku którego ulegają całkowitemu zniszczeniu wszystkie drobnoustroje oraz ich formy przetrwalnikowe. 1) Wszystkie artykuły medyczne poddawane procesowi sterylizacji powinny być opakowane. Dobrze wykonane i właściwie użyte opakowanie umożliwia prawidłową sterylizację i długi okres przechowywania jałowych materiałów. Najlepsze opakowania to materiały papierowo-foliowe. 2) Okres przechowywania, nie jest zależny od rodzaju sterylizacji, ale od rodzaju opakowania, a także transportu, przechowywania i wyjmowania materiału z opakowania. 3) Możliwość zanieczyszczenia materiału przy wyjmowaniu z opakowania jest dużo większa niż przeniknięcie bakterii przez właściwie zamknięte opakowanie. 4) Sterylne przedmioty muszą być właściwie przechowywane – ma to wpływ na jałowość zawartości pakietu. Zaleca się stosowanie dodatkowych ochronnych opakowań osłonowych (np. w czasie transportu) oraz przechowywanie w pyłoszczelnych szafach. Nie należy układać zbyt wielu pakietów jeden na drugim, nie związywać gumkami, a przy przechowywaniu pakietów w szufladach, dążyć do utrzymania opakowań w całości (bez zagnieceń i załamań). 5) Należy ograniczyć do niezbędnego minimum dotykanie i przenoszenie pakietów sterylnych. PRAWIDŁOWE WARUNKI PRZECHOWYWANIA ARTYKUŁÓW MEDYCZNYCH: • • • • stała temperatura pomiędzy 10-20° C wilgotność względna - pomiędzy 30-50% (niska wilgotność przedłuża okres przechowywania) brak bezpośredniego oddziaływania urządzeń grzewczych, promieniowania słonecznego i źródeł szkodliwego promieniowania brak w otoczeniu kurzu i organizmów patogennych CZAS STERYLNOŚCI ARTYKUŁÓW MEDYCZNYCH W PRAWIDŁOWO ZAMKNIĘTYCH OPAKOWANIACH: RODZAJ MATERIAŁU OPAKOWANIOWEGO OKRES STERYLNOŚCI 2 warstwy papieru 4 tygodnie Torebka papierowo-foliowa 3 miesiące – oddziały szpitalne 6 miesięcy – blok operacyjny Kontener do sterylizacji z wewnętrznym opakowaniem 6 miesięcy Szczotki w podajnikach 7 dni Kontener z ręcznikami bez wewnętrznej warstwy 1 miesiąc opakowania Legnica, luty 2006 Załącznik nr 5 do procedury nr 4/2006 MYCIE, SUSZENIE, DEZYNFEKCJA SZKŁA LABORATORYJNEGO 1) Nałóż odzież ochronną (fartuch foliowy jednorazowy, rękawice ochronne), 2) Wylej resztki płynów ustrojowych do pojemnika z zawartością środka dezynfekcyjnego o szerokim spektrum działania (B, F, V, Tbc), stosunek środka dezynfekcyjnego do płynów ustrojowych - 3:1 (3 części środka + 1 część płynów ustrojowych), dezynfekuj w czasie zgodnym z instrukcją podaną przez producenta preparatu. 3) Szkło laboratoryjne zanurz w roztworze dezynfekcyjnym o szerokim spektrum działania (B, F, V, Tbc), dezynfekuj w czasie zgodnym z instrukcją podaną przez producenta preparatu. 4) Po dezynfekcji szkło umyj w roztworze detergentu, wypłucz i wysusz w suszarce. Suszarkę ustaw na 180° C, po uzyskaniu pożądanej temperatury ustaw czas suszenia na 60 minut. 5) Po wyjęciu szkło traktuj jako czyste. PAMIĘTAJ O MYCIU I DEZYNFEKCJI RĄK!!! POSTĘPOWANIE ZE SZKŁEM LABORATORYJNYM USZKODZONYM W TRAKCIE BADAŃ W sytuacji uszkodzenia probówki lub innego pojemnika z materiałem biologicznym z materiałem potencjalnie zakaźnym wykonaj następujące czynności: 1. Załóż foliowy fartuch jednorazowy oraz rękawice ochronne, 2. Miejsce skażenia obłóż materiałem chłonnym (lignina, papier ręcznikowy), 3. Na skażone miejsce nanieś preparat dezynfekcyjny do powierzchni o szerokim spektrum działania (B, F, V, Tbc), czas działania preparatu 15 minut, 4. Zbierz zanieczyszczenie metodą bez kontaktową (przy użyciu pęsety, zmiotki ...), usuń do pojemnika o trudnych do przebicia ściankach umieszczonego w dwuwarstwowym czerwonym worku z przeznaczeniem do utylizacji, 5. Skażone miejsce ponownie pokryj preparatem dezynfekcyjnym – czas działania preparatu - 15 minut 6. Po zakończeniu neutralizacji skażenia umyj powierzchnię detergentem i traktuj jako czystą 7. Zużyte rękawice i fartuch usuń do utylizacji jako materiał skażony. Pamiętaj: UMYJ I ZDEZYNFEKUJ RĘCE!!! Legnica, luty 2006r.