Pierścienie lustrzane XV MASTRING ID

Pierścienie lustrzane XV MASTRING ID™
161602. Do różnicowania Haemophilus spp.
TYLKO DO DIAGNOSTYKI IN VITRO
ZAWARTOŚĆ
50 pierścieni lustrzanych XV MASTRING ID™
SKŁAD
Pierścienie bibułowe z 6 wypustkami z nadrukowaną odpowiednią literą lub literami,
nasączone dokładnie kontrolowanym stężeniem czynnika X, V lub XV. Wypustki
zaprojektowano w formacie lustrzanym, aby pozwolić na badanie 2 szczepów na jednej
płytce.
PRZECHOWYWANIE I TERMIN WAŻNOŚCI
Przechowywać w temp. 2 - 8°C w dostarczonych pojemnikach do daty ważności podanej na etykiecie
na opakowaniu. Pozwolić na osiągnięcie temperatury pokojowej przed otwarciem.
ŚRODKI OSTROŻNOŚCI
Tylko do diagnostyki in vitro. Stosować zatwierdzone środki ostrożności w stosunku do materiału
szkodliwego biologicznie oraz techniki aseptyczne. Test może używać jedynie odpowiednio
przeszkolony i wykwalifikowany personel laboratoryjny. Sterylizować wszystkie odpady szkodliwe
biologicznie przed wyrzuceniem, zgodnie z formularzem Product Safety Data.
DODATKOWE MATERIAŁY WYMAGANE, ALE NIE DOSTARCZONE
Standardowe mikrobiologiczne wyposażenie i sprzęt, takie jak ezy, podłoża do hodowli,
wymazy, patyczki, palniki i inkubatory itp., a także odczynniki serologiczne i biochemiczne
oraz dodatki takie, jak krew.
WYKONANIE TESTU
1. Sporządzć z czystej, świeżej hodowli badanego organizmu zawiesinę o gęstości
równej 0,5 standardu McFarlanda
2. Używając jałową wymazówkę, równomiernie posiać zawiesinę badanego szczepu na
powierzchnę podłoża agarowego nie zawierającego czynnika X ani V, np. Peptone
Agar. Płytkę można podzielić na dwie połowy i na każdą posiać inny szczep.
3. Używając jałową igłę lub pęsetę, umieścić pierścień lustrzany XV na powierzchni
posianego podłoża. Jeżeli posiane są dwa szczepy, upewnić się, że każdy typ wypustki
kontaktuje się z każdym szczepem.
4. Inkubować w warunkach tlenowych w 37°C przez 18 – 24 godz.
5. Zmierzyć i zapisać średnicę każdej obserwowanej strefy wzrostu.
INERPRETACJA WYNIKÓW
Jasno odgraniczone strefy wzrostu, których nie trzeba obserwować pod lupą, dokoła jednego
lub więcej krążków pozwalają na identyfikację Haemophilus zgodnie z tabelą. H. influenzae
daje nieciągłą strefę, rozmiaru ok. 20 mm, a H. parainfluenzae daje bardziej
rozprzestrzenione strefy o ogólnie większej średnicy.
Gatunek
H. influenzae
H. aegyptius
H. parainfluenzae
H. haemolyticus
H. para-haemolyticus
H. ducreyi
Wzrost dookoła krążka zawierającego:
Czynnik X
Czynnik V
Czynnik XV
െ
െ
+
െ
െ
+
െ
+
+
െ
െ
+
െ
+
+
+
െ
+
Alternatywna metoda interpretacji wymaganych czynników wzrostowych to test
porfirynowy, który potwierdza zależność od heminy pewnych Haemophilus spp. Zaleca się
przeprowadzanie tego testu w połączeniu z testem na satelitarny wzrost wokół krążków
X & V, z użyciem krążków ALA MAST ID™ (171049).
KONTROLA JAKOŚCI
Sprawdzić, czy nie ma oznak uszkodzenia opakowania. Kontrolę jakości należy przeprowadzić
z co najmniej jednym szczepem wykazującym reakcję dodatnią i co najmniej jednym
szczepem wykazującym reakcję ujemną. Nie używać testu, jeżeli reakcje dla szczepów
kontrolnych będą nieprawidłowe. W poniższej tabelce umieszczono szczepy kontrolne, które
użytkownik może łatwo zdobyć.
Szczep wzorcowy
Haemophilus influenzae
ATCC 49766
Haemophilus parainfluenzae
ATCC 7901
Wynik
Wzrost i odpowiedni
wynik dla czynnika X i V
Wzrost i odpowiedni
wynik dla czynnika X i V
OGRANICZENIA TESTU
Zaleca się wykonanie testów biochemicznych i/lub serologicznych z czystej hodowli w celu
potwierdzenia identyfikacji.
LITERATURA
Literatura dostępna na życzenie.