QMS® Zonisamide (ZNS) - Thermo Fisher Scientific
Transkrypt
QMS® Zonisamide (ZNS) - Thermo Fisher Scientific
QMS® Zonisamide (ZNS) Wyłącznie do stosowania w diagnostyce in vitro 0373571 10017230 Przed użyciem należy uważnie przeczytać niniejszą ulotkę informacyjną dołączoną do opakowania systemu mikrosfer do oznaczania ilościowego (Quantitative Microsphere System, QMS). Należy przestrzegać instrukcji zawartych w ulotce. W przypadku nieprzestrzegania instrukcji zawartych w niniejszej ulotce dołączonej do opakowania nie można zagwarantować wiarygodności wyników testów. Przeznaczenie Test QMS Zonisamide służy do ilościowego oznaczania stężenia zonisamidu w surowicy lub osoczu krwi ludzkiej przy użyciu automatycznych analizatorów do chemii klinicznej. Stężenia zonisamidu mogą stanowić pomoc w postępowaniu z pacjentami leczonymi zonisamidem. Podstawowe informacje i wyjaśnienie działania testu Zonisamid (1,2-benzizoksazolo-3-metanosulfonamid) to lek przeciwdrgawkowy dopuszczony do stosowania jako środek wspomagający leczenie napadów częściowych u osób dorosłych w wieku powyżej 16 lat chorych na padaczkę.1–4 Wykazano skuteczność zonisamidu w leczeniu wielu pacjentów, u których bez tego leku stwierdzono oporność na inne terapie przeciwdrgawkowe.2,3 Zasady postępowania QMS Zonisamide to test immunologiczny wykorzystujący homogeniczną metodę immunoturbidymetryczną (particle-enhanced turbidimetric immunoassay, PETIA). Działanie testu jest oparte na współzawodnictwie pomiędzy lekiem obecnym w próbce a lekiem naniesionym na mikrocząstkę o miejsca wiążące przeciwciał w odczynniku zawierającym przeciwciała przeciwko zonisamidowi. Przy braku współzawodniczącego leku w próbce odczynnik zawierający mikrocząstki pokryte zonisamidem ulega szybkiej aglutynacji w obecności odczynnika zawierającego przeciwciała przeciwko zonisamidowi. Szybkość zmiany absorbancji jest mierzona metodą fotometryczną i jest wprost proporcjonalna do szybkości aglutynacji cząstek. Po dodaniu próbki zawierającej zonisamid następuje częściowe zahamowanie aglutynacji, zmniejszające szybkość zmian absorbancji. Klasyczną krzywą inhibicji aglutynacji w zależności od stężenia można wyznaczyć na podstawie maksymalnej szybkości aglutynacji przy najniższym stężeniu zonisamidu oraz najniższej szybkości aglutynacji przy najwyższym stężeniu zonisamidu. Odczynniki Zestaw odczynników Test QMS Zonisamide, odczynników zawierający: 0373571, 10017230, jest dostarczany w postaci płynnej jako gotowy do użycia zestaw dwóch 0373571 Odczynnik 1 2 × 22 ml Odczynnik 2 2 × 8 ml 10017230 Odczynnik 1 1 × 19 ml Odczynnik 2 1 × 8 ml Składniki biorące udział w reakcji Składnik Przeciwciało poliklonalne skierowane przeciwko zonisamidowi (królicze) Azydek sodu Mikrocząstki pokryte zonisamidem Azydek sodu Stężenie < 5,0% ≤ 0,05% < 0,5% ≤ 0,05% Postępowanie z odczynnikami i warunki ich przechowywania • • • • • • i — gotowe do użycia. Przed użyciem kilkakrotnie odwrócić, nie dopuszczając do wytworzenia się pęcherzyków powietrza. Jeśli we wkładzie zawierającym odczynnik znajdują się pęcherzyki powietrza, należy je usunąć, używając nowego aplikatora. Ewentualnie można pozostawić odczynnik w zalecanej temperaturze i odczekać aż pęcherzyki znikną. Aby ograniczyć do minimum ilość utraconego płynu, do usuwania pęcherzyków powietrza nie należy używać pipety jednomiarowej. W przypadku opróżnienia wkładu zawierającego odczynnik lub należy wymienić oba wkłady, a następnie sprawdzić kalibrację, używając co najmniej dwóch poziomów materiałów kontrolnych zgodnie z obowiązującymi w laboratorium wymaganiami dotyczącymi kontroli jakości. Jeśli uzyskane wyniki nie mieszczą się w akceptowalnych zakresach, konieczne może być przeprowadzenie ponownej kalibracji. W razie przypadkowego rozlania należy posprzątać i zutylizować materiał zgodnie ze standardową procedurą operacyjną obowiązującą w danym laboratorium oraz przepisami lokalnymi i krajowymi, z uwzględnieniem faktu, że materiał zawiera czynniki potencjalnie zakaźne. W przypadku otrzymania uszkodzonego opakowania należy skontaktować się z lokalnym przedstawicielem pomocy technicznej (szczegółowe dane kontaktowe można znaleźć na końcu niniejszej ulotki dołączonej do opakowania). PRZESTROGA: Obecne w odczynniku pęcherzyki powietrza mogą zakłócać prawidłowe wykrywanie poziomu odczynnika znajdującego się we wkładzie, powodując pobieranie niewystarczającej objętości odczynnika, co z kolei może przekładać się na wyniki testu. Odczynniki w nieotwartych fiolkach zachowują stabilność do daty ważności określonej na opakowaniu, jeśli są przechowywane w temperaturze od 2°C do 8°C. Nie wolno zamrażać odczynników ani wystawiać ich na działanie temperatur przekraczających 32°C. Ostrzeżenia i środki ostrożności Środki ostrożności dla użytkowników • Do stosowania w diagnostyce in vitro. • Nie należy mieszać materiałów o różnych numerach partii. NIEBEZPIECZEŃSTWO: QMS Zonisamide (ZNS) zawiera ≤5,0% przeciwciał swoistych dla leku oraz ≤2,0% albuminy surowicy ludzkiej (HSA). H317 – Może powodować reakcję alergiczną skóry. H334 – Może powodować objawy alergii lub astmy lub trudności w oddychaniu w następstwie wdychania. Unikać wdychania mgły lub par. Zanieczyszczonej odzieży ochronnej nie wynosić poza miejsce pracy. Stosować rękawice ochronne/ochronę oczu/ochronę twarzy. W przypadku niedostatecznej wentylacji stosować indywidualne środki ochrony dróg oddechowych. W przypadku kontaktu ze skórą: Umyć dużą ilością wody z mydłem. W PRZYPADKU DOSTANIA SIĘ DO DRÓG ODDECHOWYCH: W przypadku trudności z oddychaniem, wyprowadzić lub wynieść poszkodowanego na świeże powietrze i zapewnić warunki do odpoczynku w pozycji umożliwiającej swobodne oddychanie. W przypadku wystąpienia podrażnienia skóry lub wysypki: Zasięgnąć porady/zgłosić się pod opiekę lekarza. W przypadku wystąpienia objawów ze strony układu oddechowego: Skontaktować się z OŚRODKIEM ZATRUĆ lub lekarzem. Wyprać zanieczyszczoną odzież przed ponownym użyciem. Zawartość/pojemnik usuwać zgodnie z przepisami lokalnymi/regionalnymi/krajowymi/międzynarodowymi. PRZESTROGA: Niniejszy produkt zawiera składniki uzyskane z materiału ludzkiego i/lub potencjalnie zakaźne. Składniki pozyskiwane z ludzkiej krwi zostały przebadane. Wykazano brak reaktywności dla antygenu HBsAg oraz przeciwciał przeciwko wirusom HIV 1/2 i HCV. Żadna znana metoda badawcza nie może dać całkowitej pewności, że produkty uzyskane z materiału ludzkiego lub nieaktywnych mikroorganizmów nie spowodują przeniesienia zakażenia. Dlatego zaleca się traktować wszystkie produkty uzyskane z materiału ludzkiego jako potencjalnie zakaźne. Podczas ich stosowania należy przestrzegać odpowiednich praktyk w zakresie zapewniania bezpieczeństwa biologicznego. Pobieranie próbek i postępowanie z nimi Do pobierania próbek na potrzeby przeprowadzenia testu QMS Zonisamide można używać następujących probówek: Surowica Osocze Szklane Plastikowe • Bez dodatków • Probówka do oddzielania surowicy z aktywatorami krzepnięcia • Z heparyną litową • Z heparyną sodową • Z EDTA • Nie przebadano • Z EDTA Użyteczność innych probówek do pobierania próbek na potrzeby testu QMS Zonisamide nie została potwierdzona. W przypadku probówek do pobierania surowicy lub osocza należy przestrzegać instrukcji dostarczonych przez producenta. • Niewłaściwe odwirowanie próbki może być przyczyną uzyskania błędnych wyników. • Należy zapewnić, aby w próbkach nie było fibryny, czerwonych krwinek ani innych substancji nierozpuszczonych. • Osocze lub surowicę należy jak najszybciej po pobraniu oddzielić od komórek, skrzepu lub żelu. Niektóre probówki z separatorem żelowym mogą nie być odpowiednie do stosowania w testach monitorujących terapeutyczne stężenia leków. Należy sprawdzić informacje podane przez producenta probówki.5 • Próbki oddzielone od komórek, skrzepu i żelu mogą być przechowywane w temperaturze 2–8°C przez okres do jednego tygodnia. Jeśli test ma być przeprowadzony po upływie tygodnia, próbki przed badaniem należy przechowywać w stanie zamrożonym (≤ -10°C). Próbki zamrożone na okres do 4 tygodni nie wykazują żadnych różnic we właściwościach w porównaniu z próbkami świeżymi. Należy zadbać o to, by ograniczyć liczbę cykli zamrażania i rozmrażania. • Zaleca się, by próbki przeznaczone do przeprowadzenia testu QMS Zonisamide pobrać bezpośrednio przed podaniem dawki (poziom minimalny). Najniższe stężenie pozwala uzyskać najbardziej odpowiednie informacje na temat terapeutycznego poziomu zonisamidu.6,7 Procedura Materiały dostarczone • Odczynniki QMS Zonisamide, 0373571, 10017230 Materiały wymagane, ale niedostarczone • Kalibratory QMS Zonisamide, 0373381 CAL A–F: A (1 × 2,5 ml); B–F (po 1 × 1,0 ml) • Materiały kontrolne QMS Zonisamide, 0373373 Poziom 1–3: po 1 × 2,5 ml Procedura wykonania testu Szczegółowy opis przeprowadzania i kalibrowania testu zamieszczono w podręczniku obsługi danego urządzenia. Procedury rozcieńczania próbek Użyć kalibratora QMS Zonisamide CAL A (0,0 µg/ml) do ręcznego rozcieńczenia próbek wykraczających poza zakres pomiarowy testu. Protokół ręcznego rozcieńczania Ręczne rozcieńczanie można przeprowadzić w przypadku próbek, w których stwierdzono stężenie zonisamidu powyżej 50,0 µg/ml. W tym celu należy rozcieńczyć próbkę kalibratorem QMS Zonisamide CAL A (0,0 µg/ml) przed jej przeniesieniem pipetą do pojemnika na próbkę. Rozcieńczenie musi być tak przeprowadzone, aby uzyskane wyniki były większe niż funkcjonalna czułość testu (3,0 µg/ml). Aby otrzymać ostateczną wartość stężenia, uzyskaną wartość stężenia należy pomnożyć przez współczynnik rozcieńczenia ręcznego. ostateczne stężenie w próbce = wykazane stężenie x współczynnik ręcznego rozcieńczenia współczynnik ręcznego rozcieńczenia = (objętość próbki + objętość kalibratora CAL A) objętość próbki Kalibracja Test QMS Zonisamide należy kalibrować, używając pełnej (sześciopunktowej) procedury kalibracji. Aby przeprowadzić pełną kalibrację, należy wykonać test z użyciem kalibratorów QMS Zonisamide A, B, C, D, E i F w dwóch powtórzeniach. Kalibracja jest konieczna w przypadku każdego nowego numeru partii. Należy zweryfikować krzywą kalibracji, używając co najmniej dwóch poziomów materiałów kontrolnych zgodnie z obowiązującymi w danym laboratorium wymaganiami dotyczącymi kontroli jakości. Jeśli uzyskane wyniki nie mieszczą się w akceptowalnych zakresach, konieczne może być przeprowadzenie ponownej kalibracji. Uwaga: Zonisamide CAL A jest kalibratorem próby ślepej dla omawianego testu. Kontrola jakości Jeśli ma to zastosowanie, należy sprawdzić dodatkowe wymagania dotyczące kontroli jakości i opis ewentualnych działań korygujących w standardowych procedurach operacyjnych i/lub planach zapewnienia jakości sporządzonych dla danego laboratorium. Wszystkie wymagania z zakresu kontroli jakości należy spełnić zgodnie z wytycznymi lokalnymi i/lub krajowymi oraz z wymogami akredytacyjnymi. Zalecane wymagania dotyczące kontroli dla testu QMS Zonisamide: • Przy każdym przebiegu należy zastosować co najmniej dwa poziomy materiałów kontrolnych obejmujące zakres zalecanego stężenia. • Jeśli konieczne jest częstsze monitorowanie materiałów kontrolnych, należy przestrzegać procedur kontroli jakości obowiązujących w danym laboratorium. • Jeśli wyniki przeprowadzonej kontroli jakości nie mieszczą się w zakresie akceptowalnym w danym laboratorium, można podejrzewać uzyskanie nieprawidłowych wyników pacjentów. W takiej sytuacji należy podjąć działania korygujące. Stężenie teoretyczne (µg/ml) Średnie stężenie odzyskane (µg/ml) Odzysk (%) 2,5 2,87 115 4 4,41 110 8 7,86 98 16 15,30 96 32 30,25 95 48 45,49 95 Wyniki Wyniki testu QMS Zonisamide mogą być podawane w µg/ml lub w µmol/l. Aby przeliczyć wyniki oznaczenia zonisamidu podane w µg/ml na µmol/l, należy pomnożyć wartość wyrażoną w µg/ml przez 4,71.4 Średni procent odzysku: 102 Podobnie jak ma to miejsce w przypadku oznaczania wszystkich analitów, wartość dla zonisamidu należy rozpatrywać w połączeniu z wynikami przeprowadzonej oceny klinicznej i innych procedur diagnostycznych. Dane wraz z wartością docelową umieszczono na osi X wykresu, natomiast stwierdzony odzysk — na osi Y. Wyznaczono równania regresji dla wielomianu stopnia pierwszego i drugiego oraz wygenerowano wartości przewidywane, podstawiając odzyskane stężenia jako wartość y w każdym wzorze. Liniowość dla wybranych rozcieńczeń uznawano za akceptowalną, jeśli procentowe odchylenie między przewidywanymi wartościami dla równań I i II stopnia wynosiło ±10%. Wyniki — kody błędów Niektóre wyniki mogą zawierać kody błędów. Opisy kodów można znaleźć w podręczniku obsługi określonego urządzenia. Ograniczenia przeprowadzanej procedury Porównanie metod W populacji ogólnej występuje niewielka ilość przeciwciał heterofilnych wpływających na wynik testu. Mogą one powodować samoistną aglutynację odczynnika zawierającego mikrocząstki, dając błędnie niskie wyniki, które nie są wykrywane. Badania korelacji przeprowadzono z zastosowaniem jako wytycznych protokołu EP9-A wg NCCLS.20 Wyniki uzyskane w teście QMS Zonisamide porównano z walidowaną referencyjną metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC) w trzech osobnych badaniach. W każdym badaniu próbki surowicy lub osocza pochodzące od pacjentów leczonych zonisamidem oznaczano w teście QMS Zonisamide oraz metodą HPLC. Badanie 1 przeprowadzono w zewnętrznej placówce. W badaniach 2 i 3 oznaczenia metodą HPLC przeprowadzono w zewnętrznej placówce, natomiast testy QMS wykonano wewnątrz firmy. Na potrzeby diagnostyki wyniki testów należy zawsze analizować w połączeniu z wywiadem chorobowym pacjenta, wynikami badań klinicznych oraz innymi posiadanymi informacjami. Więcej informacji można znaleźć w częściach POBIERANIE PRÓBEK I POSTĘPOWANIE Z NIMI oraz SZCZEGÓŁOWA CHARAKTERYSTYKA DZIAŁANIA w niniejszej ulotce informacyjnej. Badanie 1 W pierwszym badaniu zakres stężeń zonisamidu w przypadku testu QMS Zonisamide wyniósł 2,71–43,60 µg/ml przy stężeniu średnim równym 20,50 µg/ml. Zakres stężeń zonisamidu w przypadku metody HPLC wyniósł 2,30–44,70 µg/ml przy stężeniu średnim równym 21,42 µg/ml. Zakres wartości oczekiwanych Surowica/osocze Zakres terapeutycznych stężeń zonisamidu nie został odpowiednio ustalony. Okres połowicznej eliminacji zonisamidu wynosi 63 godziny. Czas od osiągnięcia stabilnej dawki do stanu stacjonarnego wynosi 14 dni.1 Zgłaszane stężenia w stanie stacjonarnym wynosiły od 20 do 30 µg/ml.8–12 W niektórych badaniach zgłaszano stężenia w stanie stacjonarnym u pacjentów z kontrolowanymi napadami na poziomie 10–20 µg/ml3 oraz 10–30 µg/ml.13 Zgłaszano też terapeutyczne zakresy stężeń od 7 do 40 µg/ml8,14,15 i od 17 do 50 µg/ml.16 Poniżej przedstawiono wyniki analizy regresji metodą Passinga-Babloka dla tego badania. Nie ma wyraźnej zależności między stężeniem zonisamidu w surowicy a odpowiedzią kliniczną.1–4 Ze względu na różnice między poszczególnymi pacjentami obserwowano znaczne nakładanie się zakresów stężeń zonisamidu między grupami osób z widoczną odpowiedzią w surowicy a grupami osób bez takiej odpowiedzi, jak również między grupami z poziomami leku w surowicy związanymi z kontrolowanymi napadami i działaniami niepożądanymi.8,9,12,17,18 Działania niepożądane o nasileniu łagodnym do umiarkowanego częściej występują przy stężeniach zonisamidu powyżej 30 µg/ml.3,9,10,17 Nachylenie krzywej (95% przedział ufności) 0,92 (0,81–0,99) Punkt przecięcia z osią Y (95% przedział ufności) 1,67 (0,33–2,72) Współczynnik korelacji (r) 0,91 Błąd standardowy estymaty 4,17 Liczba próbek 83 Stężenia zonisamidu nie powinny być jedynym wyznacznikiem podczas określania postępowania w odniesieniu do leku w ramach terapii. Klinicyści powinni skrupulatnie monitorować pacjentów na etapie rozpoczynania leczenia oraz dostosowywania dawkowania. Konieczne może być pobranie wielu próbek, aby określić oczekiwane zróżnicowanie optymalnych stężeń (tj. w stanie stacjonarnym) u poszczególnych pacjentów. Szczegółowa charakterystyka działania Poniżej przedstawiono reprezentatywne wyniki działania uzyskane w dostępnym na rynku automatycznym analizatorze chemicznym na potrzeby kliniczne wykorzystującym turbidymetryczną analizę ilościową. Czułość Granica oznaczalności (Limit of Quantitation, LOQ) Granicę oznaczalności (LOQ) dla testu QMS Zonisamide zdefiniowano jako najniższe stężenie leku, dla którego stwierdzono akceptowalne poziomy precyzji pomiędzy testami oraz odzysku (często przyjmuje się współczynnik zmienności (CV) < 20% przy odzysku ±15%). Próbkę surowicy o znanym stężeniu zonisamidu rozcieńczono i oznaczono w 10 powtórzeniach. Następnie przeanalizowano teoretyczne stężenia zonisamidu. Badanie 2 W drugim badaniu zakres stężeń zonisamidu w przypadku testu QMS Zonisamide wyniósł 5,39–49,63 µg/ml przy stężeniu średnim równym 21,53 µg/ml. Zakres stężeń zonisamidu w przypadku metody HPLC wyniósł 5–58 µg/ml przy stężeniu średnim równym 22,29 µg/ml. Pacjenci byli w wieku od 2 do 80 lat, przy czym średni wiek wyniósł 41 lat. Mężczyźni stanowili 43% badanych, natomiast kobiety — 53%. Poniżej przedstawiono podsumowanie uzyskanych danych. Wartość docelowa testu (µg/ml) 1,0 2,0 3,0 4,0 Wartość średnia 1,01 2,00 3,20 4,25 n 60 60 59 60 SD 0,22 0,42 0,54 0,37 CV (%) 22 21 17 9 Odzysk (%) 101 100 107 106 Poniżej przedstawiono wyniki analizy regresji metodą Passinga-Babloka dla tego badania. Wyznaczona wartość LOQ to 3,0 µg/ml. 0,93 (0,88–0,98) Punkt przecięcia z osią Y (95% przedział ufności) 1,29 (0,43–2,24) Współczynnik korelacji (r) 0,93 (0,91*) Błąd standardowy estymaty 3,49 (4,70*) Liczba próbek 145 (148*) * W analizie uwzględniono wartości odstające Zakres wyników uzyskiwanych przy użyciu testu Zakres wyników uzyskiwanych przy użyciu testu wynosi od 3,0 do 50,0 µg/ml. Wyniki poniżej tego zakresu należy zgłaszać jako < 3,0 µg/ml. Dokładność i liniowość Dokładność i liniowość oznaczano metodą rozcieńczeń z zastosowaniem wskazówek ujętych w wytycznych EP6-A opracowanych przez National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS; Państwowa Komisja ds. Standardów Laboratoriów Klinicznych).19 Pula surowicy o stężeniu zonisamidu ok. 80,0 µg/ml została rozcieńczona ludzką surowicą niezawierającą zonisamidu, tak by uzyskać kilka stężeń. Rozcieńczone próbki surowicy analizowano w 5 powtórzeniach za pomocą testu QMS Zonisamide. Wyznaczono średnią wartość dla powtórzeń każdej z próbek. Procentowy odzysk dla każdego poziomu obliczono z następującego wzoru: Nachylenie krzywej (95% przedział ufności) odzysk (%) = średnie stężenie odzyskane x 100 stężenie teoretyczne 2 Badanie 3 W trzecim badaniu zakres stężeń zonisamidu w przypadku testu QMS Zonisamide wyniósł 2,59–49,49 µg/ml przy stężeniu średnim równym 20,69 µg/ml. Zakres stężeń zonisamidu w przypadku metody HPLC wyniósł 2,30–50,70 µg/ml przy stężeniu średnim równym 19,27 µg/ml. Metabolity Zonisamid ulega acetylacji do N-acetylozonisamidu (NAZ) oraz redukcji do 2-sulfamoiloacetylofenolu (SMAP) będącego metabolitem z otwartym pierścieniem. 35% wydalanej dawki było odzyskiwane w postaci zonisamidu, 15% w postaci NAZ, a 50% jako glukuronid SMAP. Redukcja zonisamidu do SMAP zachodzi za pośrednictwem izozymu 3A4 cytochromu P450 (CYP3A4).1,23 Poniżej przedstawiono wyniki analizy regresji metodą Passinga-Babloka dla tego badania. Nachylenie krzywej (95% przedział ufności) Przeprowadzono badania w celu przeanalizowania reakcji krzyżowych pomiędzy antysurowicą w teście QMS Zonisamide a dwoma najważniejszymi metabolitami. Do prawidłowej surowicy ludzkiej zawierającej znane stężenia zonisamidu (ok. 12 i 36 µg/ml) dodawano różne stężenia NAZ i SMAP, a następnie wykonywano oznaczenie z użyciem testu QMS Zonisamide. 1,06 (1,02–1,12) Punkt przecięcia z osią Y (95% przedział ufności) 0,18 (od -0,37 do 0,74) Współczynnik korelacji (r) 0,98 Błąd standardowy estymaty 2,67 Liczba próbek 97 Metabolit Bez zonisamidu Niskie stężenie zonisamidu Wysokie stężenie zonisamidu 500 0,20 0,20 0,20 100 NW NW NW 50 NW NW NW 25 NW NW NW NAZ Precyzja Precyzję oznaczono zgodnie z protokołem NCCLS EP5-A.21 Przeprowadzono dwa osobne badania precyzji. W każdym z tych badań zastosowano trzy poziomy dostępnego na rynku materiału kontrolnego wyprodukowanego na bazie surowicy ludzkiej i zawierającego zonisamid, jak również pule próbek pochodzących od pacjentów, odpowiadające niskim, średnim i wysokim wartościom terapeutycznym. W pierwszym badaniu każdy poziom materiału kontrolnego oraz próbki od pacjentów analizowano w dwóch powtórzeniach 2 razy na dobę przez 20 dni niekoniecznie następujących bezpośrednio po sobie. W drugim badaniu materiały kontrolne były badane w dwóch powtórzeniach, natomiast pule próbek od pacjentów — w jednym. Odstęp pomiędzy poszczególnymi testami wykonywanymi w jednym dniu wynosił co najmniej 2 godziny. Obliczono wartości średnie oraz odchylenie standardowe (SD) i procentowe współczynniki zmienności (CV) w ramach pojedynczych testów i w ujęciu łącznym. Reaktywność krzyżowa (%) Stężenie metabolitu (µg/ml) SMAP 5 NW NW NW 500 2,60 2,30 NW 100 11,30 1,30 NW 50 2,90 NW 4,40 25 3,70 NW 5,70 5 9,30 NW 4,20 NW = nie wykryto Wpływ leków Przeprowadzono badania z zastosowaniem testu QMS Zonisamide w celu stwierdzenia, czy którekolwiek ze związków powszechnie podawanych wraz z zonisamidem lub mających podobną budowę mają wpływ na odzysk stężenia zonisamidu. Poniżej przedstawiono reprezentatywne wyniki dla danych zebranych. Badanie 1 W ramach testu Całkowite Próbka n Wartość średnia (μg/ml) SD CV (%) SD CV (%) Pula próbek pacjentów — wartości niskie 80 10,42 0,59 5,7 0,86 8,3 Pula próbek pacjentów — wartości średnie 80 27,74 1,38 5,0 2,19 7,9 Pula próbek pacjentów — wartości wysokie 80 40,74 2,45 6,0 3,06 7,5 Materiał kontrolny — poziom 1 80 8,90 0,37 4,2 0,61 6,8 Materiał kontrolny — poziom 2 80 27,39 1,50 5,5 1,80 6,6 Materiał kontrolny — poziom 3 80 52,30 2,17 4,1 3,00 5,7 Do prawidłowej surowicy ludzkiej zawierającej znane stężenia zonisamidu (ok. 12 i 36 µg/ml) dodawano znane wysokie stężenia każdego związku, a następnie badano wraz z surowicą stanowiącą materiał kontrolny dla zonisamidu. Dla wszystkich związków błąd wykrywania zonisamidu wynosił < 5%. W tabeli poniżej wymieniono te związki oraz przebadane stężenia. Substancja wpływająca na wynik testu Stężenie substancji wpływającej na wynik testu* Substancja wpływająca na wynik testu Stężenie substancji wpływającej na wynik testu* 10-hydroksykarbamazepina 100 Ibuprofen 400 Diamid kwasu 2-etylo-2fenylomalonowego 1000 Lamotrygina 300 Acetaminofen 200 Lewetiracetam 100 Kofeina 100 Fenobarbital 400 Karbamazepina 120 Fenytoina 200 Badanie 2 W ramach testu Całkowite Próbka n Wartość średnia (μg/ml) SD CV (%) SD CV (%) 10,11-epoksykarbamazepina 120 Prymidon 100 Pula próbek pacjentów — wartości niskie *24 7,30 nie dotyczy nie dotyczy 0,84 11,5 Klonazepam 0,5 Kwas salicylowy 500 Pula próbek pacjentów — wartości średnie *24 26,22 nie dotyczy nie dotyczy 2,09 8,0 Cyklosporyna A 40 Sulfametoksazol 400 Pula próbek pacjentów — wartości wysokie *24 48,92 nie dotyczy nie dotyczy 5,56 11,4 Diazepam 10 Sulfafurazol 1000 Materiał kontrolny — poziom 1 80 8,07 0,65 8,0 0,73 9,0 Erytromycyna 200 Teofilina 250 Materiał kontrolny — poziom 2 80 26,14 1,48 5,7 1,88 7,2 Etosuksymid 1000 Topiramat 250 Materiał kontrolny — poziom 3 80 50,52 3,05 6,0 4,45 8,8 Felbamat 1000 Trimetoprim 20 Heparyna 8500/j./l Kwas walproinowy 1000 * Pule próbek pacjentów były analizowane w trakcie badania przez 12 dni niekoniecznie następujących po sobie. Swoistość Badania czynników wpływających na wynik testu przeprowadzono, stosując jako wytyczne protokół NCCLS EP7-A.22 Reakcje krzyżowe przebadano dla najważniejszych metabolitów zonisamidu. Przebadano również inne leki rutynowo podawane wraz z zonisamidem oraz substancje endogenne w celu ustalenia, czy związki te mają wpływ na ilościowe oznaczanie stężeń zonisamidu w teście QMS Zonisamide. Do pul surowicy (materiału kontrolnego) zawierających niskie i wysokie stężenia terapeutyczne zonisamidu wprowadzono wysokie stężenia tych związków oraz substancji endogennych. Próbki zostały przebadane, a stężenia zonisamidu w próbkach zawierających substancję wpływającą na wynik testu porównano z surowicą kontrolną. * µg/ml, chyba że wskazano inaczej 3 Piśmiennictwo Substancje endogenne Do surowicy zawierającej znane stężenia zonisamidu (ok. 12 i 36 µg/ml) dodawano klinicznie wysokie stężenia potencjalnych endogennych substancji wpływających na wynik testu. Każdą próbkę przebadano za pomocą testu QMS Zonisamide wraz z surowicą stanowiącą materiał kontrolny dla zonisamidu. Dla wszystkich substancji błąd wykrywania zonisamidu wynosił < 10%. Poniżej wymieniono te substancje endogenne oraz przebadane stężenia. Substancja wpływająca na wynik testu 1. NDA 20-789: Zonegran (zonisamide) Capsules 25, 50, 100 mg. FDA Approved Labeling, Eisai Inc., Teaneck, NJ 07666. 2. Mimaki T. Clinical pharmacology and therapeutic drug monitoring of zonisamide. Ther Drug Monit 1998;20:593-7. 3. Oommen KJ, Mathews S. Zonisamide: A new antiepileptic drug. Neuropharmacol 1999;22(4): 192-200. 4. Johannessen SI, Battino D, Berry DJ, Bailer M, Kramer G, et al. Therapeutic drug monitoring of the newer antiepileptic drugs. Ther Drug Monit 2003; 25:347-63. 5. Dasgupta A, Dean R, Saldana S, et al. Absorption of therapeutic drugs by barrier gels in serum separator blood collection tubes. Am J Clin Path 1994;101:456-61. 6. Patsalos PN, Froscher W, Pisani F and M van Rijn C. The importance of drug interactions in epilepsy therapy. Epilepsia 2002;43(4):365-85. 7. Moyer TP, Pippenger CE. Therapeutic Drug Monitoring. In: Burtis AC, Ashwood ER, editors. Tietz Textbook of Clinical Chemistry, Second Edition. Philadelphia, PA. WB Saunders, 1994;1094 110. 8. Tomson T, Johannessen SI. Therapeutic monitoring of the new antiepileptic drugs. Eur J Clin Pharmacol 2000; 55:667-705. 9. Yamauchi T, Aikawa H. Efficacy of zonisamide: our experience. Seizure 2004; 13S:S41-8. 10. Perruca E. Is there a role for therapeutic drug monitoring of new anticonvulsants? Clin Pharmakinet 2000; 38(3):191-204. 11. Kochak GM, et al. Steady-state pharmacokinetics of zonisamide, an antiepileptic agent for treatment of refractory complex partial seizures. J Clin Pharmacol 1998; 38:166-71. 12. Sackellares JC, et al. Randomized, Controlled clinical trial of zonisamide as adjunctive treatment for refractory partial seizures. Epilepsia 45;45(6):610-7. 13. Shimoyana R, Ohkubo T, and Sugawara K. Monitoring of zonisamide in human breast milk and maternal plasma by solid-phase extraction HPLC method. Biomed Chromatogr 1999;13:370-2. 14. Berry DJ. Determination of zonisamide (3-sulphamoylmethy-1,2-benzioxazole) in plasma at therapeutic concentrations by high-performance liquid chromatography. J Chromatogr Biomed App 1990;534:173-81. 15. Perruca E. The Clinical Pharmacokinetics of the new antiepileptic drugs. Epilepsia 1999; 40(S9):713. 16. Nakamura M, Hirade K, Sugiyama T, and Katagiri, Y. High-performance liquid chromatographic assay of zonisamide in human plasma using a non-porous silica column. J Chromatogr Biomed Sci and App 2001; 755:337-41. 17. Faught E, et al. Randomized controlled trial of zonisamide for the treatment of refractory partial onset seizures. Neurology 2001; 57:1774-9. 18. Faught E. Review of United States and European clinical trials of zonisamide in the treatment of refractory partial onset seizures. Seizure 2004; 13S; S59-65. 19. Passey RB, Bee DE, Caffo A, et al. Evaluation of the Linearity of Quantitative Analytical Methods; Approved Guideline- Second Edition (EP6-A). Villanova, PA: The National Committee for Clinical Laboratory Standards, 1986. 20. Kennedy JW, Carey RN, Coolen RB, et al. Method Comparison and Bias Estimation Using Patient Samples; Approved Guideline (EP9-A). Wayne, PA: The National Committee for Clinical Laboratory Standards, 1995. 21. Kennedy JW, Carey RN, Coolen RB, et al. Evaluation of Precision Performance of Clinical Chemistry Devices (EP5-A). Villanova, PA: The National Committee for Clinical Laboratory Standards,1992. 22. Powers DM, Boyd JC, Glick MR, et al. Interference Testing in Clinical Chemistry (EP7-A). Villanova, PA. The National Committee for Clinical Laboratory Standards, 1986. 23. Kaibe K, et al. Competitive binding enzyme immunoassay for zonisamide, a new antiepileptic drug, with selected paired-enzyme labeled antigen and antibody. Clin Chem 1990; 36:24-7. Stężenie substancji wpływającej na wynik testu Albumina 12 g/dl Bilirubina 20 mg/dl Cholesterol 500 mg/dl Hemoglobina 1150 mg/dl Gamma-globulina 12 g/dl Czynnik reumatoidalny* 500 j.m./ml Trójglicerydy* 1500 mg/dl Kwas moczowy* 20 mg/dl * Przygotowane poprzez rozcieńczenie naturalnej próbki od pacjenta za pomocą pul surowicy ludzkiej o znanym stężeniu zonisamidu Microgenics Corporation 46500 Kato Road Fremont, CA 94538 USA USA — Wsparcie dla klientów i pomoc techniczna: 1-800-232-3342 Microgenics GmbH Spitalhofstrasse 94 D-94032 Passau, Germany Tel: +49 (0) 851 886 89 0 Fax: +49 (0) 851 886 89 10 Aktualną wersję ulotki można pobrać z witryny: www.thermoscientific.com/diagnostics Inne kraje: Należy skontaktować się z lokalnym przedstawicielem firmy Thermo Fisher Scientific. © 2015 Thermo Fisher Scientific Inc. Wszelkie prawa zastrzeżone. Wszystkie znaki towarowe stanowią własność firmy Thermo Fisher Scientific i spółek od niej zależnych. 0155276-G-PL 2015 09 4