BBL Mycoslide 4373157

GOTOWE PODŁOŻA NA PŁYTKACH
ZANURZENIOWYCH —
INSTRUKCJE STOSOWANIA
DA-273157.00
Wersja: erwiec 2003
BD BBL Mycoslide
PRZEZNACZENIE
Produkt BBL Mycoslide (Płytka BBL Mycoslide) to trójstronna płytka zanurzeniowa,
zawierająca podłoża służące do wykrywania grzybów (w tym drożdży) w próbkach moczu,
plwociny, popłuczyn z gardła oraz kału, a także w różnorodnych próbkach pobranych metodą
wymazu.
ZASADY I OBJAŚNIENIE PROCEDURY
Metoda mikrobiologiczna.
Grzyby nitkowate i drożdże należą do częstych patogenów, powodujących wiele rodzajów
zakażeń miejscowych i ogólnoustrojowych u osób z dobrze funkcjonującym układem
immunologicznym oraz z niedoborem odporności.1 Jednym z najczęstszych patogenów
grzybiczych jest Candida albicans. U pacjentów z upośledzeniem odporności C. albicans oraz
opisany niedawno C. dubliniensis często wywołują zakażenia miejscowe i ogólnoustrojowe.
Trzy główne obszary organizmu objęte miejscowymi infekcjami to układ oddechowy, układ
moczowo-płciowy oraz przewód pokarmowy. Ważne jest przeprowadzenie ilościowego badania
drożdży wyizolowanych ze wspomnianych okolic organizmu, gdyż drobnoustroje te mogą być
obecne w niewielkich ilościach jako element prawidłowej flory, ale ich liczba może się znacznie
zwiększać podczas zakażeń.1-5
Produkt BBL Mycoslide składa się z trójstronnego nośnika agarowego, pokrytego dwoma
podłożami do hodowli grzybów oraz podłożem służącym do wykrywania obecnych w próbce
bakterii. Cały nośnik agarowy zanurza się w płynnych próbkach albo zaszczepia poprzez
posiew pasmowy próbek pochodzących z wymazów. Po inkubacji można zliczać izolaty
I wykorzystywać je do dalszych testów różnicujących i identyfikacyjnych oraz do badania
lekowrażliwości.
Podłoże 1 to Malt Agar; służy do wykrywania wszystkich typów grzybów, w tym pleśni i drożdży.
Wyciąg słodowy zawiera wszystkie niezbędne składniki pokarmowe, podtrzymujące wzrost
grzybów. Niskie pH podłoża powoduje częściowe lub całkowite zahamowanie wzrostu bakterii,
którymi skażona jest próbka, natomiast jest czynnikiem dobrze tolerowanym przez grzyby.
Podłoże to jest stosowane do ilościowej oceny patogenów grzybiczych.
Podłoże 2 to pożywka Malt Agar uzupełniona cykloheksymidem, który jest inhibitorem wzrostu
pleśni saprofitycznych oraz niektórych drożdży. Podłoże to nie hamuje wzrostu większości
grzybów patogennych, w tym Candida albicans. Jednakże cykloheksymid hamuje wzrost
Cryptococcus neoformans oraz pewnych gatunków z rodzaju Candida (innych niż C. albicans),
które również mogą odgrywać rolę jako czynniki zakaźne.
Podłoże 3 to CLED (Cystine-Lactose-Electrolyte-Deficient) Agar, różnicujące podłoże
hodowlane, przeznaczone do izolowania i analiz ilościowych bakterii z próbek moczu. Można
go także używać do izolowania bakterii pochodzących z innych próbek, o ile nie mają one zbyt
wysokich wymagań odżywczych. Podłoże na płytkach BBL Mycoslide jest używane głównie do
określania rodzaju towarzyszącej flory bakteryjnej.
Płytki BBL Mycoslide stosuje się do wykrywania, izolowania oraz oceny ilościowej grzybów
pochodzących z różnych okolic organizmu oraz różnorodnych typów próbek. Można ich również
używać jako podłoża transportowego do przesyłania próbek z gabinetu lekarskiego do
laboratoriów analitycznych.
DA-273157.00
-1-
ODCZYNNIKI
Skład* w przeliczeniu na jeden litr wody oczyszczonej
BBL Mycoslide
Podłoże 1: Malt Agar
Podłoże 2: Malt Agar
z cykloheksymidem
Wyciąg słodowy
30,0 g
Wyciąg słodowy
30,0 g
Agar
15,0
Agar
15,0
pH 4,1 +/- 0,2
Cykloheksymid
1,0
pH 4,1 +/- 0,2
Podłoże 3: CLED Agar
Pepton żelatynowy
Pepton kazeinowy
Wyciąg wołowy
Laktoza
L-cystyna
Błękit
bromotymolowy
Agar
pH 7,3 +/- 0,3
*Skorygowany lub uzupełniony zgodnie z wymaganiami kryteriów działania.
4,0 g
4,0
3,0
10,0
0,128
0,02
15,0
ŚRODKI OSTROŻNOŚCI
. Wyłącznie do zastosowań profesjonalnych.
Nie należy używać zestawów płytek zanurzeniowych, jeżeli są na nich widoczne oznaki
skażenia mikrobiologicznego, odbarwienia, wyschnięcia, pęknięcia lub inne objawy wskazujące
na pogorszenie jakości.
Podczas wykonywania wszystkich procedur należy przestrzegać aseptycznej techniki pracy
i środków ostrożności dotyczących zagrożenia mikrobiologicznego. Procedury aseptycznej
techniki pracy z produktem, zagrożenia biologiczne oraz usuwanie zużytego produktu opisano
w dokumencie OGÓLNA INSTRUKCJA DOTYCZĄCA STOSOWANIA.
W przypadku stosowania zestawów BBL Mycoslide jako podłoża do transportu próbek
z gabinetu lekarskiego do laboratorium diagnostycznego należy przestrzegać lokalnych
przepisów dotyczących przewozu próbek zakaźnych.
WARUNKI I OKRES PRZECHOWYWANIA
Dostarczone zestawy BBL Mycoslide należy przechowywać aż do momentu użycia
w oryginalnych opakowaniach, w zaciemnionym pomieszczeniu, w temperaturze 15–20°C.
Nie zamrażać, nie przegrzewać, unikać wysychania i wahań temperatury.
Płytki zanurzeniowe należy wykorzystać do posiewu bakterii przed upływem daty ważności
(zobacz etykietę na opakowaniu) i inkubować zgodnie z zalecanymi czasami inkubacji.
Nieotwarte płytki z otwartych opakowań zbiorczych można stosować aż do upływu daty
ważności, o ile były przechowywane w czystym miejscu, w temperaturze od 15 do 20°C.
Płytki zanurzeniowe należy wykorzystywać natychmiast po otwarciu.
KONTROLA JAKOŚCI PRZEZ UŻYTKOWNIKA
Przygotować zawiesiny wymienionych poniżej szczepów, zgodne ze standardem McFarlanda
0,5. Przygotować dla każdego drobnoustroju probówkę (dostatecznie szeroką, aby można
było umieścić w niej nośnik agarowy zestawu BBL Mycoslide) zawierającą od 20 do 25 mL
jałowego roztworu soli fizjologicznej, po czym dodać do niej 1 mL opisanej wyżej zawiesiny
szczepu. Otworzyć zestaw BBL Mycoslide, wyjąć nośnik agarowy i zanurzyć go na krótko
w zawiesinie szczepu testowego, po czym postępować zgodnie z opisem badania płynnych
próbek, zamieszczonym w części Procedura testowa. Inkubować przez okres od 2 do 5 dni
w temperaturze 35 ± 2°C. Skontrolować powierzchnie agaru w poszukiwaniu wzrostu
drobnoustrojów zgodnie z opisem w części Wyniki i ich interpretacja.
DA-273157.00- 2 -
Szczepy
Candida albicans
ATCC 10231
Aspergillus niger
ATCC 16404
E. coli
ATCC 25922
Pseudomonas aeruginosa
ATCC 27853
Enterococcus faecalis
ATCC 29212
Staphylococcus aureus
ATCC 25923
Bez posiewu
Podłoże 1
Malt Agar
Wzrost
Wzrost
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Zabarwienie
jasnobursztynowe
Podłoże 2
Malt Agar
z cykloheksymidem
Wzrost
Podłoże 3
CLED Agar
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Częściowe lub
całkowite zahamowanie wzrostu
Zabarwienie
jasnobursztynowe
Wzrost
Wzrost
Wzrost
Wzrost
Wzrost
Wzrost
Zabarwienie
zielonkawożółte
PROCEDURA
Dostarczane materiały
BBL Mycoslide. Sprawdzane pod względem obecności drobnoustrojów.
Materiały niedostarczane
Pomocnicze pożywki hodowlane, odczynniki i sprzęt laboratoryjny, tak jak wymieniono.
Typy próbek
Zestaw BBL Mycoslide jest przeznaczony do izolacji i analiz ilościowych grzybów z moczu
(pobranego ze środkowego strumienia lub z cewnika albo z nakłucia nadłonowego pęcherza),
plwociny, popłuczyn z gardła, kału oraz wielu innych próbek (np. wymazów z pochwy).
Nie używać do wykrywania zakażeń bakteryjnych.
Pobieranie i przygotowanie próbek
Podczas pobierania próbek należy przestrzegać zasad techniki aseptycznej. Stosować
standardowe procedury pobierania próbek.1,6
Próbki moczu do badania powinny być świeże lub nie starsze niż 2 godziny od pobrania.
Można zamiast tego przechowywać próbki moczu w lodówce (nie dłużej niż do 24 godzin)
w celu uniknięcia przed wykonaniem posiewu nadmiernego wzrostu czynników zakaźnych
i zanieczyszczających.
Plwocina: Jedną część świeżo wykrztuszonej lub indukowanej plwociny dodaje się do jednej
części 0,25% roztworu trypsyny i wytrząsa z dodatkiem sterylnych paciorków szklanych przez
45 minut w temperaturze 37°C. Można zamiast tego poddać plwocinę homogenizacji
w homogenizatorze Stomachera przez 1 minutę. Jeżeli dostępna jest tylko niewielka ilość
plwociny, można ją wykorzystać bez przygotowania wstępnego.
Popłuczyny z gardła: Wirować płyn przez 10 minut z przyspieszeniem 2000 x g. Odrzucić fazę
płynną, rozpuścić osad w 5 mL roztworu trypsyny (0,25%) lub jałowego roztworu soli
fizjologicznej i wytrząsać z dodatkiem sterylnych paciorków szklanych przez 15 minut
w temperaturze 37°C.
Próbki kału ze świeżo oddanego stolca lub przechowywane w stanie zamrożenia nie dłużej niż
48 godzin. Poddać 1 g kału homogenizacji w 100 mL 0,25% roztworu trypsyny lub jałowego
roztworu soli fizjologicznej z dodatkiem sterylnych paciorków szklanych przez 15 minut
w temperaturze 37°C.
DA-273157.00- 3 -
Wymazy: Pobrać próbkę (np. z gardła lub z pochwy) za pomocą wymazówki i wykorzystać
bezpośrednio bez przygotowania wstępnego w sposób opisany poniżej. W razie opóźnienia
pomiędzy pobraniem a wykonaniem posiewu przesłać wymaz w odpowiednim podłożu
transportowym.1,6
Procedura testowa
1. Skontrolować wzrokowo powierzchnie podłoży agarowych, nie otwierając probówki
z zestawem BBL Mycoslide. Wyrzucić płytki z oznakami obkurczania się podłoży lub
ich skażenia.
2. Zapisać na probówce nazwisko pacjenta, numer próbki i datę wykonania posiewu.
3. Odkręcić pokrywę i wyjąć płytkę z plastikowej probówki, unikając dotykania powierzchni
podłoży agarowych.
Sposób zaszczepienia próbkami płynnymi (np. moczu lub popłuczyn z gardła):
1. Trzykrotnie zanurzyć na krótko płytkę w płynnej próbce (np. moczu lub przygotowanej wstępnie
plwociny, popłuczyn z gardła itp.), aby warstwy podłoży agarowych zostały całkowicie
zaszczepione przez płyn. Nie pozostawiać płytki zanurzonej w płynie na dłużej niż 10 sekund,
ponieważ może to spowodować wypłukanie składników podłoży i/lub obluzowanie żelu w
plastikowym uchwycie.
2. Jeżeli dostępna jest tylko niewielka objętość próbki, pobrać ją do jałowej pipety lub strzykawki i
opłukać nią całkowicie wszystkie trzy podłoża.
3. Pozbyć się nadmiaru materiału, przyciskając krawędź płytki do wewnętrznego brzegu probówki.
4. Ostatnie krople z krawędzi płytki można usunąć za pomocą bibuły. Zachowując ostrożność,
ponownie umieścić płytkę w plastikowej probówce i szczelnie zamknąć.
5. Inkubować płytkę przez 48 godzin w temperaturze 30 ± 2°C lub przesłać ją po zaszczepieniu do
specjalnego laboratorium. Dłuższy okres inkubacji może być konieczny do wzrostu grzybów
nitkowatych, np. w przypadkach zakażeń dolnych odcinków dróg oddechowych.
Sposób zaszczepienia próbkami z wymazów:
Ostrożnie wykonać posiew za pomocą wymazówki na wszystkich trzech podłożach płytki.
Wyniki i ich interpretacja
Po okresie inkubacji ostrożnie wyjąć płytkę z próbówki w celu dokonania interpretacji. W trakcie
całej procedury kontroli hodowli przestrzegać aseptycznej techniki pracy. Zaleca się używanie
podczas kontrolowania hodowli rękawiczek chirurgicznych. Nie dotykać powierzchni podłoży
agarowych!
Podłoże 1 (Malt Agar):
Podłoże to umożliwia wykrywanie całkowitej liczby wszystkich grzybów. Grzyby nitkowate
zwykle tworzą kolonie z chropowatą powierzchnią (grzybnia powietrzna). Kolonie często są
zabarwione (na kolor czarny, szary, niebieskozielony, żółtawy lub inny). Gatunki drożdży tworzą
kolonie barwy od białej do kremowej, błyszczące lub matowe, zazwyczaj o gładkiej powierzchni,
przypominające kolonie bakteryjne. Pełna identyfikacja patogenów wymaga przeprowadzenia
dalszych testów.1
W celu dokonania oceny ilościowej porównać rzeczywisty wzrost drobnoustrojów na płytce
z obrazami referencyjnymi, zamieszczonymi w Karcie interpretacji wyników na końcu
niniejszego dokumentu. W przypadku intensywnego wzrostu i dużej liczby kolonii (≥105)
powierzchnie podłoży agarowych mogą być całkowicie pokryte przez zlewny wzrost.
Informacje na temat klinicznej istotności liczb patogenów w próbkach pobranych z różnych
okolic w organizmie podano w tabeli oraz w odpowiednich pozycjach piśmiennictwa:1-5
Rodzaj próbki
Mocz ze środkowego strumienia lub z cewnika
Mocz pobierany drogą nakłucia nadłonowego
Plwocina
Popłuczyny z gardła
Kał
Próbki z pochwy
DA-273157.00- 4 -
Liczba kolonii drożdży
Prawidłowa1)
Wątpliwa2)
Istotna klinicznie
3
104–105/ml
>105/ml
≤10 /ml
Każda obecność grzybów jest istotna klinicznie
104–105/ml
>105/ml
≤103/ml
>104
103–104
≤102
4
5
3
10 –10 /g
>105/g3)
≤10 /g
Każda obecność grzybów jest istotna klinicznie
1)
Małe liczby mogą być istotne w przypadku pacjentów uprzednio leczonych lub pacjentów z zakażeniami
przewlekłymi.
2)
W razie możliwości ocenić powtórnie.
3)
Należy starannie ocenić leczenie u pacjentów z dużą liczbą drożdży w kale. Duża liczba drożdży w kale
często występuje u pacjentów leczonych uprzednio środkami przeciwbakteryjnymi. Po zakończeniu
terapii antybiotykami liczba drożdży zazwyczaj ponownie zmniejsza się do wartości prawidłowej.
U pacjentów z upośledzeniem odporności nawet niewielka liczba grzybów może wskazywać na
zakażenie.1,3
Podłoże 2 (Malt Agar z cykloheksymidem): To podłoże zapewnia hamowanie wzrostu grzybów
nitkowatych wrażliwych na cykloheksymid (np. pleśni, takich jak Aspergillus). Dodatek ten
hamuje również wzrost niektórych drożdży. Oporność na cykloheksymid jest ważną cechą
różnicującą grzybów:
Mikroorganizmy1)
Istotność kliniczna i częstość
występowania
Oporne na cykloheksymid
Istotny patogen; częsty
Candida albicans
Często wykrywany u pacjentów
C. dubliniensis
zakażonych wirusem HIV
Rzadki, mała istotność
C. guilliermondii
Rzadki, mała istotność
C. kefyr (=C. pseudotropicalis)
Rzadkie
Inne gatunki
Wrażliwe na cykloheksymid Candida tropicalis
Rzadki, mała istotność
Stosunkowo częsty, znany patogen
C. krusei
Rzadki, znany patogen
C. parapsilosis
Stosunkowo częsty, znany patogen
Candida (Torulopsis) glabrata
Rzadki; istotny patogen
Cryptococcus neoformans
Aspergillus, Penicillium i inne grzyby Grzyby Aspergillus mogą
powodować zakażenia dolnych
odcinków dróg oddechowych lub
inne infekcje. Grzyby te mogą
również występować jako czynniki
zanieczyszczające.
1)
Należy pamiętać, że wzrost lub zahamowanie wzrostu na tym podłożu nie ograniczają się do gatunków
zamieszczonych w niniejszej tabeli. Wymienione drobnoustroje występują bardzo często w próbkach
pochodzenia klinicznego. Dodatkowe informacje znajdują się w odpowiednich pozycjach
piśmiennictwa.1,7
Podłoże 3 (CLED Agar) jest stosowane do ilościowej oceny liczby bakterii obecnych w próbce.
Liczba bakterii może być istotna dla oceny związku pomiędzy wzrostem bakterii i grzybów,
np. W próbkach kału.
Należy pamiętać, że do pełnej identyfikacji patogenów wyizolowanych na omawianej płytce
zanurzeniowej konieczne są dalsze testy, takie jak badania biochemiczne i/lub mikroskopowe.1
Większość z tych metod jest dostępna wyłącznie w laboratoriach diagnostycznych i zwykle nie
można przeprowadzić tych badań w gabinecie lekarskim. Zatem wszystkie płytki zanurzeniowe
z wynikami wątpliwymi lub jednoznacznie dodatnimi należy wysyłać do laboratorium
analitycznego, wykonującego testy mykologiczne.
Po wykorzystaniu wszystkie zużyte probówki oraz pozostałe skażone materiały należy przed
wyrzuceniem poddać sterylizacji lub spalić. Szczegółowe informacje przedstawiono
w dokumencie OGÓLNA INSTRUKCJA DOTYCZĄCA STOSOWANIA.
DA-273157.00- 5 -
CHARAKTERYSTYKA WYDAJNOŚCIOWA I OGRANICZENIA PROCEDURY
Zestaw BBL Mycoslide służy do wykrywania, izolacji i analiz ilościowych grzybów (w tym
drożdży) w próbkach moczu, plwociny, popłuczyn z gardła, kału oraz wielu innych próbkach.
Podłoża znajdujące się na omawianych płytkach zanurzeniowych są często stosowanymi,
standardowymi pożywkami, służącymi do izolowania odpowiednich grup mikroorganizmów
grzybiczych i bakteryjnych.1,8-10
Niekiedy zahamowanie wzrostu bakterii na podłożach do hodowli grzybów (podłoże 1 i 2) na
omawianych płytkach nie jest całkowite. W razie wątpliwości należy przeprowadzić barwienie
podejrzanych kolonii błękitem metylenowym lub metodą Grama.
Większość gatunków bakterii o mniejszych wymaganiach odżywczych będzie rozwijać się na
podłożu 3 (CLED Agar). Jednakże podłoże to nie podtrzymuje wzrostu takich drobnoustrojów,
jak patogenne gatunki bakterii z rodzaju Neisseria, Haemophilus spp. i innych. Paciorkowce
beta-hemolizujące nie wykazują dobrego wzrostu na tym podłożu. Zatem jeśli podejrzewa się
zakażenie bakteryjne z udziałem takich drobnoustrojów, należy dołączyć hodowle na agarze
z krwią lub agarze czekoladowym. Podłoże CLED Agar na płytkach BBL Mycoslide jest
używane głównie do określania rodzaju towarzyszącej flory bakteryjnej. W celu dokładnej
diagnostyki infekcji bakteryjnych zaleca się użycie innych systemów i podłoży. Do diagnostyki
zakażeń bakteryjnych na podstawie próbek moczu powinno się stosować systemy BBL Urotube.
Próbki służące do wykrywania zakażeń bakteryjnych w innych okolicach organizmu należy
poddawać obróbce z użyciem podłoży hodowlanych na płytkach we właściwy sposób, zależnie
od rodzaju próbki.
Liczba gatunków, które mogą wykazywać wzrost na podłożach na omawianych płytkach
zanurzeniowych, jest duża i nie ogranicza się do drobnoustrojów wymienionych w części
Wyniki i ich interpretacja. Odpowiednią identyfikację wielu drobnoustrojów można
przeprowadzić wyłącznie w laboratoriach analitycznych. Zatem należy wysyłać do takich
laboratoriów płytki po wykonaniu posiewu lub po wykonaniu posiewu i inkubacji.
Zestaw BBL Mycoslide jest przeznaczony do pierwotnego izolowania i ilościowego oznaczania
drobnoustrojów. Do przeprowadzenia dalszych testów, szczególnie jeśli na podłożach
omawianego systemu występują hodowle mieszane, konieczne są hodowle pochodne na
odpowiednich podłożach płytkowych w celu uzyskania czystych hodowli, niezbędnych do pełnej
identyfikacji i badania wrażliwości na antybiotyki.1
Nie należy stosować płytek zanurzeniowych do wykonywania testów wrażliwości z użyciem
krążków dyfuzyjnych.
PIŚMIENNICTWO
1. Fromtling, R.A. (section editor). 2003. Mycology. In: Murray, P. R., E. J. Baron, J.H.
Jorgensen, M. A. Pfaller, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical microbiology, 8th ed.
American Society for Microbiology, Washington, D.C.
2. Halle, E., et al. 2000. Genitalinfektionen Teil I und II. In: Mauch, H., Lüttiken, R., and S.
Gatermann (eds.): MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen
Diagnostik, vol. 10 and 11. Urban & Fischer, Munich, Germany.
3. Kist, M., et al. 2000. Infektionen des Darmes. In: Mauch, H., Lüttiken, R., and S. Gatermann
(eds.): MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen Diagnostik, vol. 9.
Urban & Fischer, Munich, Germany.
4. Podbielski, A., et al. 2000. Infektionen des Mundes und der oberen Atemwege. In: Mauch, H.
and R. Lüttiken (eds.): MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen
Diagnostik, vol.13. Urban & Fischer, Munich, Germany.
5. Mauch, H., et al. 2003. Infektionen der tiefen Atemwege Teil II. In: Mauch, H., Lüttiken, R.,
and S. Gatermann (eds.): MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen
Diagnostik, vol. 8. Urban & Fischer, Munich, Germany.
6. Sutton, D.A. 2003. Specimen collection, transport, and processing: mycology. In: Murray, P.
R., E. J. Baron, J.H. Jorgensen, M. A. Pfaller, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical
microbiology, 8th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.
7. Hazen, K.C. 1995. New and emerging yeast pathogens. Clin. Microbiol. Rev. 8: 462-478.
DA-273157.00- 6 -
8. MacFaddin, J. D. 1985. Media for isolation-cultivation-identification- maintenance of medical
bacteria, vol. 1, p. 275-284. Williams & Wilkins, Baltimore, MD.
9. Larone, D.H. 1995: Medically important fungi - a guide to identification. 3rd edition. ASM
Press, Washington.
10. Atlas, R.M. 1993. Handbook of Microbiological media. CRC Press, Boca Raton, FL.
PAKOWANIE / DOSTĘPNOŚĆ
BBL Mycoslide
Nr kat. 273157
10 płytek
DODATKOWE INFORMACJE
W celu uzyskania dodatkowych informacji należy skontaktować się z lokalnym przedstawicielem
firmy BD.
BD Diagnostic Systems
Tullastrasse 8 – 12
D-69126 Heidelberg/Germany
Tel.: +49-62 21-30 50, Faks: +49-62 21-30 52 16
[email protected]
BD Diagnostic Systems Europe
Becton Dickinson France SA
11 rue Aristide Bergès
38800 Le Pont de Claix/France
Tel.: +33-476 68 3636 Faks: +33-476 68 3292
http://www.bd.com
BD, BD logo and BBL are trademarks of Becton, Dickinson and Company.
Urotube and Mycoslide are trademarks of Becton Dickinson GmbH.
ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection.
© 2003 Becton, Dickinson and Company
KARTA INTERPRETACJI WYNIKÓW (Malt Agar, Podłoże 1)
Do ilościowej oceny liczby komórek drobnoustrojów (wartości istotne klinicznie — patrz
Wyniki I ich interpretacja).
103
DA-273157.00- 7 -
104
105
106