U URAZOWO ORTOPEDYCZNEGO SZPITALA MIEJSKIEGO NR 1

Transkrypt

U URAZOWO ORTOPEDYCZNEGO SZPITALA MIEJSKIEGO NR 1
/#%.!#:934/g#)-)+2/")/,/')#:.%*g2/$/7)3+!/$$:)!|5
52!:/7/†/24/0%$9#:.%'/3:0)4!,!-)%*3+)%'/.2
73/3./7#5
$RNBIOL$ANUTA)DZIK
$RNBIOL-AŒGORZATA+ÃPA
$RNMED2OBERT$7OJTYCZKA
$RHAB*ERZY0ACHAPROFNADZWg5-
MGRFARM+ATARZYNA'OLAÊSKA†3KUPIÊSKA
2ENATA"RELA$ANUTA|OBODA
$RNPRZYR+RZYSZTOF*ASIK
+ATEDRAI:AKŒAD-IKROBIOLOGII7YDZIAŒU&ARMACEUTYCZNEGOZ/DDZIAŒEM!NALITYKI-EDYCZNEJW3OSNOWCU
gL’SKIEJ!KADEMII-EDYCZNEJW+ATOWICACH
+IEROWNIKDRHAB*ERZY0ACHAPROFNADZWg5
:ESP̌DS+ONTROLI:AKA˜EÊ7EWN’TRZSZPITALNYCH3ZPITAL-IEJSKINRW3OSNOWCU
STRESZCZENIE
Materiał do badań stanowiły próbki powietrza pobrane
metodą sedymentacyjną oraz wymazy z wybranych powierzchni płaskich pobrane metodą wacikową. Na podstawie przeprowadzonych badań stwierdzono, że czystość mikrobiologiczna powietrza badanego oddziału
mieści się w II i III klasie. Ilościowa analiza mikrobiologicznego zanieczyszczenia wybranych powierzchni
wykazała czterokrotnie wyższe zanieczyszczenie w czasie badań przeprowadzonych w listopadzie, w porównaniu z badaniami wykonanymi w marcu. Diagnostyka
mikrobiologiczna szczepów wyizolowanych ze środowiska badanego oddziału wykazała obecność bakterii
z rodzaju Micrococcus, Staphylococcus, Streptococcus,
pałeczek Gram-ujemnych, laseczek tlenowych z rodzaju Bacillus oraz grzybów z rodzaju Candida i grzybów
pleśniowych. Zarówno w listopadzie jak i w marcu
stwierdzono w powietrzu obecność Staphylococcus
aureus, zaś dominującym gatunkiem CNS był Staphylococcus epidermidis. Wśród wyizolowanych drobnoustrojów zidentyfikowano mikroorganizmy oportunistyczne i chorobotwórcze, odgrywające znaczącą rolę
w zakażeniach szpitalnych.
' "՟
Zakażenia szpitalne są zjawiskiem obecnym w szpitalach na całym świecie, od najniższych szczebli do wysoce
specjalistycznych klinik, akademii i instytutów a częstość
ich występowania pozostaje w ścisłym związku z rodzajem
wykonywanych zabiegów diagnostycznych i leczniczych
[1,2,3].
Dziś uważa się, że zakażenia szpitalne są ceną za postęp w medycynie. Stosowanie inwazyjnych metod diaCOPYRIGHT‚'RUPA$R!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
ABSTRACT
The research used samples of air that were taken with
use of the sedimentation method as well as smear tests
from selected flat surfaces taken with the tampon-smear
sampling. The completed analyses made it possible to
state that the microbiological air purity of the air under
tests falls within limits of the 2nd and 3rd classes. Quantitative analysis of microbiological contamination on
selected surfaces revealed four-fold higher contamination level when sampling was carried out in November
as compared to similar tests in March. The microbiological diagnostics of bacteria strains extracted from the
environment (habitat) of the examined hospital ward
allowed to disclose presence of bacteria classified to the
types of Micrococcus, Staphylococcus, Streptococcus,
Gram-negative sticks (?), oxygen bacillus of the genus
of Bacillus as well as fungi of the genus of Candida
and mould fungi. Presence of Staphylococcus aureus in
the air was stated both in November and March, while
Staphylococcus epidermidis was the predominant species of CNS. Among various microbes extracted some
opportunistic and pathogenetic microorganisms were
detected, including those that play an important role in
hospital-based infections.
gnostycznych połączonych z wprowadzaniem ciał obcych
do organizmu, drenaż naczyń, żywienie parenteralne oraz
skomplikowane zabiegi chirurgiczne prawie zawsze łączą
się z ryzykiem zakażenia. Istotnym problemem jest również
niekontrolowane stosowanie antybiotyków w szpitalu, co
sprzyja selekcji wielolekoopornych szczepów bakteryjnych
[4,5].
Zjawisku szerzenia się zakażeń szpitalnych można przeciwdziałać poprzez stałą kontrolę stanu sanitarno-epidemiologicznego szpitali, w szczególności oddziałów najbardziej
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
–Ÿ`ŸžŸ¤°°U
narażonych na ich występowanie. Do oddziałów takich coraz częściej zaliczane są oddziały urazowo–ortopedyczne.
Inwazyjne metody leczenia chorób układu kostnego spowodowały nie tylko zwiększenie skuteczności leczenia, ale
także wzrost ryzyka zakażenia szpitalnego. Badania przeprowadzone w ponad 4,5 tys. szpitali Unii Europejskiej
wykazały, że przy średniej częstości zakażeń szpitalnych
w 1994 r. kształtującej się na poziomie 4,4%, zakażenia na
oddziałach ortopedycznych stanowiły prawie 3,6% i tendencja ta nadal się utrzymuje. Badania przeprowadzone w 1998
roku przez Polskie Towarzystwo Zakażeń Szpitalnych wykazały, że odsetek zakażeń szpitalnych na oddziałach urazowo-ortopedycznych był porównywalny z zakażeniami na
oddziałach chirurgii naczyniowej (2,41%) oraz torakochirurgii (2,03%) i wynosił 2,11%. Dla porównania największy odsetek zakażeń zanotowano wówczas na oddziałach
neurochirurgicznych (4,56%) i urologicznych (2,95%), natomiast oddziałami o małej liczbie zakażeń były oddziały
okulistyczne i otolaryngologiczne (poniżej 1%). Oddziały urazowo-ortopedyczne znalazły się w pierwszej piątce
oddziałów o najwyższym procencie zakażeń szpitalnych.
Ważnym problemem, który należy tutaj zasygnalizować
jest przedłużający się czas hospitalizacji chorego, który
w przypadku pacjentów leczonych na oddziałach urazowo-ortopedycznych może ulec wydłużeniu nawet o 20 dni
[6,7,8].
Ÿ"#ŸŸ"
Badania przeprowadzono dwukrotnie: w listopadzie
i marcu. Materiałem do badań były próbki powietrza (nr 1
do 19) pobrane w kilku miejscach wybranych do badania
pomieszczeń (korytarza, pokoju zabiegowego, dyżurki pielęgniarek, kuchni, łazienki męskiej i damskiej, sal chorych
nr 4, 6 i 9) oraz wymazy pobrane z 22 powierzchni (pr. 20-41) (nocne stoliki, łóżka, umywalki w wybranych salach
chorych, stolik do przygotowania leków, opatrunkowy,
łóżko zabiegowe i umywalkę w pokoju zabiegowym, blat
i stół do przygotowania i wózek do rozwożenia posiłków
oraz zlew w kuchni, klamki w ubikacji męskiej i damskiej
łazience, kabiny prysznicowe i umywalki w łazience damskiej oraz zlew w basenowni).
Badanie stopnia zanieczyszczenia mikrobiologicznego powietrza wykonano metodą sedymentacyjną Kocha,
stosując podłoże agarowe z krwią i podłoże Sabourauda.
Płytki Petriego z podłożami agarowymi eksponowano na
działanie powietrza przez 15 minut a następnie inkubowano: agar krwawy w temp. 37°C przez 24-72 godz., podłoże
Sabourauda - 5 dni w temp. 21°C. Kolonie liczono a ilość
drobnoustrojów w 1 m3 powietrza obliczano według wzoru
zgodnie z metodyką [9].
Badanie czystości mikrobiologicznej powierzchni sprzętów znajdujących się na oddziale wykonano metodą tamponową (wacikową), zgodnie z metodyką [9].
W celu przeprowadzenia identyfikacji drobnoustrojów
zanieczyszczających powierzchnie płaskie, płyn Ringera
z wypłukanymi wacikami posiewano na następujące pożywki agarowe: agar krwawy, podłoże McConkey’a, podłoże Chapmana, podłoże Sabourauda, podłoże z cetrimidem.
Posiane podłoża inkubowano w odpowiedniej temperaturze
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
a wyizolowane ze środowiska badanego oddziału szczepy
identyfikowano zgodnie z obowiązującą metodyką.
')ŸÀŸŸŸ'Ÿ
Czystość mikrobiologiczna powietrza oraz powierzchni
różnych sprzętów odgrywa ważną rolę w szerzeniu zakażeń
szpitalnych, przy czym ryzyko przeniesienia infekcji zależy od rodzaju powierzchni z którymi pacjent ma kontakt
[10,11].
Stopień mikrobiologicznego zanieczyszczenia powietrza
w piśmiennictwie oceniany jest przy użyciu różnych norm.
Brak jednolitych wytycznych oceny mikrobiologicznego
skażenia powietrza w pomieszczeniach szpitalnych, powoduje trudności w jednoznacznej interpretacji wyników
badań. Podobny problem nastręcza również ocena stopnia
zanieczyszczenia mikrobiologicznego powierzchni środowiska szpitalnego [10,15].
W badaniach stopnia mikrobiologicznego zanieczyszczenia powietrza najczęściej stosowane są Wytyczne Projektowania Wentylacji i Klimatyzacji w Szpitalach z 1984 roku,
w których wyróżniono trzy klasy czystości z dopuszczalnym skażeniem powietrza [10].
Zgodnie z powyższymi normami, czystość powietrza
w większości pomieszczeń badanego oddziału odpowiadała II, rzadziej III klasie czystości, z tym, że badania przeprowadzone w marcu wykazały znaczny wzrost liczby pomieszczeń o III klasie czystości powietrza.
Ogromną rolę w szerzeniu zakażeń szpitalnych odgrywa
czystość mikrobiologiczna powierzchni, z którymi styka się
pacjent. Sprzęt wysokiego ryzyka, czyli mający bezpośrednią styczność z uszkodzoną skórą lub błonami śluzowymi
powinien być bezwzględnie jałowy. Średnie ryzyko zakażenia jest związane z przedmiotami stosowanymi w pielęgnacji chorego, takimi jak baseny, wanny oraz sprzętem
i powierzchniami do przygotowywania żywności. Obecność drobnoustrojów patogennych oraz duże skażenie powierzchni dyskwalifikuje ich czystość mikrobiologiczną
i jest sygnałem do sprawdzenia poprawności dezynfekcji,
czyli sposobu przygotowywania roztworów roboczych oraz
czasu i częstości wykonywanych zabiegów dezynfekcyjnych. W badaniach ilościowych stopnia mikrobiologicznego zanieczyszczenia powierzchni środowiska szpitalnego,
wyniki interpretowane są najczęściej według Draft European Standard CEN/TC 243/WG2 [10].
Zgodnie z tymi normami większość objętych badaniem
powierzchni charakteryzowała się średnim lub wysokim,
a w niektórych przypadkach nawet bardzo wysokim poziomem ryzyka przeniesienia infekcji. Warto podkreślić, że
wyniki uzyskane w marcu wskazują na poprawę stanu sanitarno-higienicznego oddziału, co może być konsekwencją
analizy wyników uzyskanych w listopadzie.
Wyniki analizy jakościowej mikroflory środowiska badanego oddziału obrazują ryc.1, 2, 3 i 4.
Na oddziałach zabiegowych najczęściej obserwowanymi
powikłaniami są zakażenia ran pooperacyjnych, pociągające za
sobą niekiedy daleko idące konsekwencje. Co dziesiąty pacjent
narażony jest na uogólnienie procesu i w efekcie co czwarty
z nich umiera. Pacjenci są często narażeni na kolejny zabieg,
w związku z czym ryzyko komplikacji wzrasta kilkukrotnie,
COPYRIGHT‚'RUPA$R!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
–Ÿ`ŸžŸ¤°°U
¬A‡Ÿ‡Ÿ–|ARy |ª¬Ÿ¥J®l-tŸ‚|˜®A®Ra}qy¬AiŸa–¥‚Ÿulp–||–a-yl®u}ªŸª¬k
l®|q|ª-y¬AiŸ ®RŸ ²–|J|ªl˜p-Ÿ JJ®l-t¥Ÿ #–-®|ª|k– |‚RJ¬A®yRa|Ÿ ªŸ qlk
˜ |‚-J®lR
¬A‡Ÿ¤‡Ÿ–|ARy |ª¬Ÿ¥J®l-tŸ‚|˜®A®Ra}qy¬AiŸa–¥‚Ÿulp–||–a-yl®u}ªŸª¬k
l®|q|ª-y¬AiŸ®RŸ²–|J|ªl˜p-ŸJJ®l-t¥Ÿ#–-®|ª|k– |‚RJ¬A®yRa|ŸªŸu-–k
A¥Ÿ
zakażeniach jest znacznie mniejszy [16,1,17,18,1
9,20,21,22,3].
Szczepy gronkowca złocistego w środowisku
badanego oddziału stanowiły 9,25% -14,63%
(ryc.1, 2).
Monitoring zakażeń Staphylococcus aureus ma
bardzo istotne znaczenie, gdyż może być wynikiem zjawiska nosicielstwa tych drobnoustrojów
wśród personelu medycznego i pacjentów oraz
rozpowszechnienia mechanizmów oporności na
stosowane antybiotyki [12].
Czynnikami etiologicznymi zakażeń wokół
implantów są zwykle drobnoustroje należące do
flory saprofitycznej, obecnej na skórze, takie jak:
Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus viridans, Staphylococcus haemolyticus [23].
Przeprowadzone badania wykazały, że udział
gronkowców koagulazoujemnych (CNS) w składzie mikroflory badanego oddziału wynosił 35%-50%, w tym 30,92 %-33,8% stanowiły szczepy
Staphylococcus epidermidis.
W literaturze medycznej nie brakuje doniesień o izolacji CNS, zwłaszcza Staphylococcus
epidermidis, od osób z klinicznymi objawami
zakażenia. Inne gatunki gronkowców koagulazoujemnych, takie jak: Staphylococcus cohnii,
Staphylococcus hominis, Staphylococcus saprophyticus, Staphylococcus xylosus, Staphylococcus simulans, Staphylococcus warneri, Staphylococcus schleiferi, Staphylococcus lugdunensis,
Staphylococcus lentus i itd. są znacznie rzadziej
izolowane z materiałów klinicznych i stanowią
od 2% do około 13 % wszystkich izolatów gronkowcowych. Dane literaturowe zwracają uwagę
na rosnący udział w zakażeniach szpitalnych Staphylococcus warneri, zwłaszcza w zakażeniach
krwi, dróg moczowych oraz infekcyjnym poprzetoczeniowym zakażeniu płynu mózgowo-rdzeniowego. Z materiałów klinicznych pobranych
od pacjentów izolowano także Staphylococcus
capitis i Staphylococcus haemolyticus, co może
wskazywać na ich udział w tego typu zakażeniach [24,25,26,27,28].
przy czym zabiegi ortopedyczne obarczone są dwu a nawet
pięciokrotnie wyższym ryzykiem wystąpienia zakażenia rany pooperacyjnej, w porównaniu ze średnią
ryzyka obserwowaną w innych zabiegach chirurgicznych [6,1,12,13,14].
Analiza jakościowa wyizolowanej ze środowiska badanego oddziału mikroflory wykazała,
że 60%-70% wyizolowanych szczepów stanowiły ziarniaki Gram-dodatnie, natomiast pałeczki
Gram-ujemne tylko 3,7-7%.
Prowadzone badania wykazały, że ziarniaki
Gram-dodatnie są najczęściej izolowanymi czynnikami etiologicznymi zakażeń po zabiegach
ortopedycznych, głównie gronkowiec złocisty
(60%-65%), gronkowce koagulazoujemne (CNS),
zwłaszcza Staphylococcus epidermidis i Staphy- ¬A‡Ÿ ¡‡Ÿ Ÿ Ÿ –|ARy |ª¬Ÿ ¥J®l-tŸ ‚|˜®A®Ra}qy¬AiŸ a- ¥yp}ªŸ a–|yp|ªA}ªŸ
lococcus haemolyticus, paciorkowce i enteroko- ª¬l®|q|ª-y¬AiŸ®RŸ²–|J|ªl˜p-ŸJJ®l-t¥Ÿ#–-®|ª|k– |‚RJ¬A®yRa|ŸªŸqlk
ki. Udział pałeczek Gram-ujemnych w tego typu ˜ |‚-J®lR
COPYRIGHT‚'RUPA$R!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
–Ÿ`ŸžŸ¤°°U
nie antybiotyków oraz częste zaniedbywanie znanych i dostępnych metod zapobiegania szerzeniu
się zakażeń. Wszystko to prowadzi do sytuacji,
w której nieszkodliwe kiedyś saprofity coraz częściej zagrażają zdrowiu, a niejednokrotnie i życiu
człowieka [29,30].
Zadowolenie budzi fakt, że w mikroflorze
badanego oddziału nie stwierdzono obecności
żadnego gatunku z rodzaju Enterococcus, gdyż
znaczenie tych bakterii w etiologii zakażeń szpitalnych wzrasta [12,18].
Pałeczki Gram-ujemne stanowiły zaledwie
4-7% flory środowiska badanego oddziału.
¬A‡Ÿ `‡Ÿ –|ARy |ª¬Ÿ ¥J®l-tŸ ‚|˜®A®Ra}qy¬AiŸ a- ¥yp}ªŸ a–|yp|ªA}ªŸ
W zakażeniach diagnozowanych na oddziaª¬l®|q|ª-y¬AiŸ ®RŸ ²–|J|ªl˜p-Ÿ JJ®l-t¥Ÿ #–-®|ª|k– |‚RJ¬A®yRa|Ÿ
łach
ortopedycznych izolowane są zwłaszcza
ªŸu-–A¥
Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Enterobacter cloacae,
Badania środowiska Oddziału Urazowo-Ortopedycznego Proteus mirabilis oraz Acinetobacter baumanii. Najnowsze
wykazały obecność niektórych, z wyżej wymienionych ga- doniesienia dowodzą, że są one ważnymi czynnikami etiotunków CNS: Staphylococcus lugdunensis, Staphylococcus logicznymi zakażeń w chirurgii implantacyjnej, gdyż stanoxylosus, Staphylococcus warneri, Staphylococcus schleiferi, wią 18% izolowanych szczepów. Najczęściej izolowane są
Staphylococcus hominis, Staphylococcus cohnie.
gatunki Pseudomonas aeruginosa (6,3%) oraz Escherichia
Wzrost znaczenia gronkowców koagulazoujemnych jako coli (3%). Wysoki odsetek bakterii Gram-ujemnych (42%)
etiologicznych czynników zakażeń u człowieka obserwu- stwierdzono również przy ocenie flory bakteryjnej uczestje się w medycynie od dość długiego czasu. Podstawową niczącej w zakażeniach kości po złamaniach otwartych.
przyczyną tego zjawiska jest stałe zwiększanie się liczby Prowadzone badania wskazują jednak na zmniejszający się
pacjentów z upośledzonym układem odpornościowym, po- udział tych bakterii w zakażeniach pooperacyjnych na odwszechne a w wielu przypadkach zupełnie zbędne stosowa- działach ortopedycznych. Z analizy danych z lat 1998-2000
l˜ |‚-J
–
–}7pl
lRo˜ARŸ‚|7|–¥
lA®7-Ÿ7-p R–llŸª
Ÿu¡Ÿ‚|ªlR –®„#žu¡…
-–®RA
lA®7-Ÿa–®¬7}ª
ªŸŸu¡Ÿ‚|ªlR –®„#žu¡…
lA®7-Ÿ7-p R–ll
ªŸu¡Ÿ‚|ªlR –®„#žu¡…
lA®7-Ÿa–®¬7}ª
ªŸŸu¡
‚|ªlR –®„#žu¡…

¤
|–¬ -–®
¡Gz
¡G°
¤œzG
¤G¤
|p}oŸ®-7lRa|ª¬
¤¡^Gz
^¤G`¤
¤°zGz
°
¬¸¥–p-Ÿ‚lRqÖayl-–Rp
¡z¡Gœ
UœG¡œ
¤UUG¡¤
¤G¤
¥Aiyl-
¤°zGz
¤°zGz
¤UUG¡¤
^œG¤
-®lRyp-Ÿu֘p-
°`GU`
°
œUG¡
^¤G`¤
-®lRyp-ŸJ-u˜p-
^œG¤œ
^¤G`¤
^œG¤
^œG¤
-q-Ÿy–Ÿz
¤¡^Gz
¤¡^Gz
`œGU
^œG¤
-q-Ÿy–Ÿ
¤¡^Gz
^œG¤œ
¡Gz
¤°zGz
-q-Ÿy–Ÿ`
¤¤G
¤G¤
¤°zGz
UœG¡œ
zœ¤G¡^
¤¡^°G¤z
¡
`
^

œ
U
z
°

¤
¡
`
^

œ
U
z
#
¤¤°Gœœ
¡œ`G¤
Uœ¡GU
¡¤¤¡Gzœ
"-7‡Ÿ‡Ÿ'¬ylplŸ-y-ql®¬Ÿlq|²Al|ªRoŸ®-ylRA®¬˜®A®Ryl-Ÿulp–|7l|q|alA®yRa|Ÿ‚|ªlR –®-ŸJJ®l-t¥Ÿ#–-®|ª|k– |‚RJ¬A®yRa|
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
COPYRIGHT‚'RUPA$R!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
–Ÿ`ŸžŸ¤°°U
lRo˜ARŸ
‚|7|–¥
¤°
-J-y-Ÿ‚|ªlR–®Aiyl-
ql˜ |‚-J
u-–®RA
ۖRJyl-ŸqlA®7-Ÿulp–||–k
a-yl®u}ª
ۖRJyl-ŸqlA®7-Ÿulp–||–k
a-yl®u}ª
#žAu¤
#žAu¤
#ž°°Au¤
#ž°°Au¤
y|Ay¬Ÿ˜ |qlp
œGU
œU
`G¡
`¡
t}¸p|
zG°`
z°`
G¡
¡
¤¤
p–®R˜t|
¤°G
¤°
°GU°
U°
¤¡
y|Ay¬Ÿ˜ |qlp
`G^
`^
G¤°
¤°
¤
¤`
-q-Ÿy–Ÿ`
t}¸p|
G``
``
°G`U
`U
¤^
¥u¬ª-qp-
GU
U
^G°`
^°`
¤
y|Ay¬Ÿ˜ |qlp
`œG``
`œ``
°GUU
UU
¤œ
-q-Ÿy–Ÿ
t}¸p|
GU
U
G¤U
¤U
¤U
¥u¬ª-qp-
¤G`°
¤`°
¡GU
¡U
¤z
˜ |qlpŸJ|Ÿ‚–®¬a| |ª¬ª-yl-ŸqRp}ª
Gz¤
z¤
°Gœ¤
œ¤
¡°
t}¸p|Ÿ®-7lRa|ªR
UGU°
UU
G¡
¡
˜ |qlpŸ|‚- –¥yp|ª¬
G``
``
°‡^
^
¥u¬ª-qp-
°G`
`
°GU°
U°
¡¡
7q- ŸJ|Ÿ‚–®¬a| |ª¬ª-yl-Ÿ‚|˜ltp}ª
¤G°°
¤°°
°G`
`
¡`
ª}®RpŸuR -q|ª¬ŸJ|Ÿ–|®ª|¸Ryl-Ÿ‚|˜ltp}ª
Gz¤
z¤
°G¤`
¤`
®qRª
¡¤Gœ¤
¡¤œ¤
¤G`°
¤`°
˜ }tŸJ|Ÿ‚|Ja–®Rª-yl-Ÿ‚|˜ltp}ª
°G¤`
¤`
¤G¤`
¤¤`
¡
-q-Ÿy–Ÿz
|p}oŸ®-7lRk
a|ª¬
¡¤
¡^
¥Aiyl-
¡
¡œ
#7lp-Ao-Ÿu֘p-
¡U
¡z
`°
`
-®lRyp-Ÿ
J-u˜p-
pq-up-
°G`
`
¡GU¡
¡U¡
¥u¬ª-qp-
°Gz
z
¡G°`
¡°`
p-7ly-Ÿ‚–¬˜®ylA|ª-ŸŠŸ²Al-y-
°Gœ¤
œ¤
°G¤`
¤`
®qRªŸkŸ7-˜Ry|ªyl-
¡^G¤
¡^¤
¡Gz¤
¡z¤
pq-up-
Gœ
œ
G°
°
z`Gz
z`z
^°G¤
^¤°
˜¥u-
"-7‡ŸŸ'¬ylplŸ-y-ql®¬Ÿlq|²Al|ªRoŸ˜ |‚yl-Ÿ®-ylRA®¬˜®A®Ryl-Ÿulp–|7l|q|alA®yRa|Ÿª¬7–-y¬AiŸ‚|ªlR–®AiylŸJJ®l-t¥Ÿ#–-®|ª|k
k– |‚RJ¬A®yRa|
wynika, że tylko w przypadku Escherichia coli widoczna
była tendencja wzrostowa (z 6,15% w1998 do prawie 9%
w 2000 roku), podczas gdy udział pozostałych pałeczek
Gram-ujemnych uległ zmniejszeniu [31,16,12,19,20,21].
Pałeczki Gram-ujemne wyizolowane z mikroflory środowiska badanego oddziału (Pseudomonas sp., Enterobacter
agglomerans, Sphingomonas parapaucimobilis, Aeromonas
salmonicida) to gatunki, których udział w zakażeniach szpitalnych jak dotąd nie został opisany w literaturze.
Grzyby stanowiły od 20,41% do 28,46% wyizolowanych
z badanego środowiska szczepów, w tym 6,83%-8,46%
drożdżaki a 13,58%-20% pleśnie. Tak wysoki odsetek grzybów w środowisku szpitalnym może przyczyniać się do rozwoju zakażeń grzybiczych.
W ostatnich latach zanotowano podwojenie liczby zakażeń grzybiczych u hospitalizowanych pacjentów. Odsetek tego typu zakażeń w Stanach Zjednoczonych wyniósł
10,4%, co wynika prawdopodobnie z szerokiego i niekontrolowanego stosowania antybiotyków u chorych z defektami immunologicznymi [2, 32].
Najczęstszym czynnikiem etiologicznym zakażeń grzybiczych jest Candida albicans. Gatunek ten zidentyfikowano również w składzie mikroflory środowiska badanego
oddziału, gatunkami dominującymi były jednak grzyby pleCOPYRIGHT‚'RUPA$R!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†
śniowe. W czasie badań przeprowadzonych w listopadzie,
na terenie badanego oddziału były prowadzone prace remontowe, które mogą być ważnym źródłem zakażeń grzybiczych u hospitalizowanych pacjentów. Ruch powietrza
sprzyja bowiem rozprzestrzenianiu się zarodników różnych
grzybów pleśniowych, dlatego ważne jest odpowiednie zabezpieczenie remontowanego odcinka szpitala przez ścianki
działowe i tymczasowe zamknięcie systemu wentylacyjnego w tym miejscu [32, 33].
Oceny na temat przyczyn szerzenia się zjawiska zakażeń
szpitalnych są rozbieżne. Część autorów faworyzuje ideę
szerzenia się zakażeń drogą powietrzna, część podkreśla natomiast znaczenie nosicielstwa u chorych i personelu, inni
wskazują na olbrzymią rolę, jaką spełnia odpowiednia higiena skóry oraz zabiegi dezynfekcyjne. Istotne znaczenie
w szerzeniu zakażeń mają również uchybienia porządkowe
oraz zbytnie zagęszczenie sal chorych [34].
Wysoka świadomość istnienia zakażeń szpitalnych i ich
następstw, wiedza na temat ich przyczyn, epidemiologii,
etiologii i objawów klinicznych, jest niezbędna do prawidłowej kontroli i zwalczania tego zjawiska. W związku z tym,
tak ważne są badania pozwalające na ilościową i jakościową ocenę zanieczyszczenia mikrobiologicznego środowiska
szpitalnego.
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
–Ÿ`ŸžŸ¤°°U
' 1. Stopień mikrobiologicznego zanieczyszczenia środowiska badanego oddziału był stosunkowo wysoki, jednak
wyniki uzyskane w marcu wskazują na poprawę stanu
sanitarno-higienicznego oddziału, co może być konsekwencją analizy wyników uzyskanych w listopadzie.
2. Ze środowiska badanego oddziału wyizolowano gatunki,
które mogą być czynnikami etiologicznymi zakażeń szpitalnych. Szczególnie niepokojąca jest obecność Staphylococcus
aureus, gdyż może być wynikiem zjawiska nosicielstwa tych
drobnoustrojów wśród personelu medycznego lub pacjentów.
""#
1. Bulanda M., Olszewski P., Heczko P. B.: Zakażenia szpitalne a powikłania septyczne w chirurgii. Post. Nauk
Med., 1996, IX, 117-121.
2. Dzierżanowska D., Jeljaszewicz J.: Zakażenia szpitalne.
Alfa- Medica Press, Bielsko- Biała 1999.
3. Wieczyńska J., Dzierżanowska D.: Zakażenia szpitalne- specyfika oddziałowa. Nowa klinika, 2002, 9, 3-4, 304- 310.
4. Dzierżanowska D.: Zakażenia szpitalne. Pediatria Polska, 1994, LXIX/ 1, 49-52.
5. Juszczyk J., Samet A.: Zakażenia szpitalne (Glosa do problemu krajowego). Przegl. Epidemiol., 2000, 54, 241-245.
6. Bulanda M., Heczko P. B.: Zakażenia szpitalne na oddziałach zabiegowych. Przew. Menedż. Zdr., 2001, 3, 75-83.
7. Cienciała A., Mądry R., Barucha P. i wsp.: Zakażenia
szpitalne w oddziałach zabiegowych. Przegl. Epidemiol., 2000, 54, 291-297.
8. Wójkowska- Mach J., Bulanda M., Adamski P. i wsp.:
Wstępna analiza danych uzyskanych w ramach kontroli
zakażeń. Terapia, 1999, 3, 1, 3-6.
9. Grzybowski J., Reissa J.: Praktyczna bakteriologia lekarska
i sanitarna, Dom Wydawniczy Bellona, warszawa, 2001.
10. Fleischer M.: Badania mikrobiologiczne środowiska
szpitalnego. Zakażenia, 2003, 1, 18-23.
11. Rogala-Zawada D.: Mikrobiologia i immunologia kliniczna. Wybrane zagadnienia. ŚAM, Katowice 1998.
12. Gaździk T. S.; Zakażenia w ortopedii. Wydawnictwo
Medyczne Urban & Partner, Wrocław 2004.
13. Różańska A., Wójkowska- Mach J., Bulanda M. i wsp.:
Nadzór epidemiologiczny nad zakażeniami miejsca operowanego. Zakażenia, 2002, 1-2, 72-75.
14. Wójkowska- Mach J., Różańska A., Kuthan R. i wsp.:
Śmiertelność związana z zakażeniami szpitalnymi. Analiza oparta na danych uzyskanych w ramach ogólnopolskiego programu kontroli zakażeń w 1998 roku. Przegl.
Epidemiol., 2000, 54, 281-290.
15. Friberg B., Friberg S., Ostensson R. i wsp.: Surgical
area contamination-Comparable bacterial counts using
disposable head and mask and helmet aspirator system, but dramatic increase upon omission of head-gear:
An experimental, study in horizontal laminar air-flow.
J. Hosp. Infect., 2001, 47 (2), 110-115.
16. Bożek M., Gaździk T. S., Mrozek S.: Zakażenia szpitalne w oddziale urazowo- ortopedycznym specjalistycznego szpitala wielooddziałowego. Ortop. Traumatol.
Rebab., 2002, 4, 4, 488-491.
&ARMACEUTYCZNY
0RZEGL’D.AUKOWY
17. Garbacz M., Palczewski D., Kandyba R.: Powikłania
septyczne w materiale własnym- sposoby i wyniki leczenia. Kwart. Ortop., 1999, 1, 35-39.
18. Gospodarek E., Ulatowska B., Powierska- Czarny J.
i wsp.: Drobnoustroje Gram- dodatnie izolowane od
pacjentów leczonych w Klinice Rehabilitacji Samodzielnego Publicznego Szpitala Klinicznego Akademii
Medycznej w Bydgoszczy w latach 2000-2001. Ortop.
Traumatol. Rebab., 2002, 4, 1, 75-80.
19. Samet A., Bronk M., Czarniak E. i wsp.: Drobnoustroje w próbkach materiałów klinicznych od pacjentów
Szpitala klinicznego Nr 1 w Gdańsku z lat 1997-1999.
Przegl. Epidemiol., 2000, 54, 305-313.
20. Szostek- Drwal E., Szostek A.: Flora bakteryjna w zakażeniach szpitalnych na oddziale urazowo- ortopedycznym. Kwart. Ortop., 2000, 1, 42-47.
21. Wątroba M., Bulanda M., Heczko P. B.: Zakażenia szpitalne
w chirurgii implantacyjnej. Terapia, 1997, 11 (2), 16-19.
22. Weems J.J.: The many faces of Staphylococcus aureus
infection: recognizing and managing its life-threatening
manifestations. Postgrad. Med., 2001, 110(4), 24-36.
23. Babiak I., Kowalewski M., Szczęsny G. i wsp: Specyfika zakażeń na oddziałach urazowo-ortopedycznych.
Wskazania terapeutyczne. Zakażenia, 2004, 3, 70-76.
24. Buttery J. P., Easton M., Pearson S. R. i wsp.: Pediatric
bacteriemia due to Staphylococcus warneri: microbiological, epidemiological and clinical features. J.Clin.
Microbiol., 1997, 35/8, 2174-2177.
25. Kamath U., Singer C., Isenberg H.D.: Clinical significance of Staphylococcus warneri bacteremia. J.Clin.
Microbiol., 1992, 30/2, 261-264.
26. Michnikowska- Swincow E., Szychlińska J.: Lekooporność różnych gatunków metycylinoopornych gronkowców koagulazoujemnych (MRCNS) izolowanych w środowisku szpitalnym. Diagn. Lab., 2001, 37, 437-444.
27. von Eiff C, Proctor RA, Peters G.: Coagulase-negative
staphylococci: pathogens have major role in nosocomial
infections. Postgrad. Med., 2001, 110(4), 63-76.
28. Wiktorowicz- Belzyt E., Wojak I.: Częstość występowania metycylinoopornych i metycylinowrażliwych szczepów z rodzaju Staphylococcus w materiale klinicznym.
Med. Dośw. Mikrobiol., 1997, 49, 27-33.
29. Geary C., Jordens J., Richardson J. F. i wsp.: Epidemiological typing of coagulase- negative staphylococci from
nosocomial infections. Journal Med. Microbiol., 1997,
46, 195-203.
30. Meszaros J.: Komentarz do artykułu- Gronkowce koagulazoujemne. Medycyna po dyplomie, 2002, 11/4, 197-200.
31. Barański M., Lisicki K., Nowak G.: Ocena flory bakteryjnej w leczeniu złamań otwartych. Kwart. Ortop.,
2001, 2, 97-99.
32. Przodo – Mordarska A.: Zakażenia szpitalne – etiologia
i przebieg. Continuo, Wrocław 1999.
33. Wenzel R., Edmund M., Piktel D. i wsp.: Kontrola zakażeń szpitalnych- Vademecum. Alfa - Medica Press,
Bielsko-Biała 1999.
34. Antonowicz A.: Ryzyko wewnątrzszpitalnych zakażeń
narządów ruchu. Chir. Narz. Ruchu Ortop. Pol., 1982,
XLVII, 1-2, 93-97.
COPYRIGHT‚'RUPA$R!2+WIECIÊSKIEGO
)33.†

Podobne dokumenty