Roślinne i zwierzęce kultury in vitro - Wydział Biologiczno

Roślinne i zwierzęce kultury in vitro
SYLABUS
A. Informacje ogólne
Elementy składowe sylabusu
Nazwa jednostki prowadzącej
kierunek
Nazwa kierunku studiów
Poziom kształcenia
Profil studiów
Forma studiów
Kod przedmiotu
Język przedmiotu
Opis
Wydział Biologiczno-Chemiczny UwB, Instytut Biologii
Biologia
studia pierwszego stopnia
ogólnoakademicki
stacjonarne
0200-BS1-5RZV
polski
przedmiot obowiązkowy, moduł specjalnościowy
III rok / semestr V
Rodzaj przedmiotu
Rok studiów /semestr
Wymagania wstępne (tzw.
sekwencyjny system zajęć i
egzaminów)
Liczba godzin zajęć
dydaktycznych z podziałem na
formy prowadzenia zajęć
Założenia i cele
Student powinien spełniać efekty kształcenia zakładane dla następujących przedmiotów:
biochemia, biologia komórki, fizjologia roślin, fizjologia zwierząt.
wykład – 15 godz.
laboratoria – 30 godz.
Przedmiot ma na celu wprowadzenie studenta w podstawowe zagadnienia związane z
roślinnymi i zwierzęcymi kulturami in vitro zarówno od strony teoretycznej jak i
praktycznego wykorzystania zdobytej wiedzy. Student poznaje procesy
morfogenetyczne zachodzących w roślinnych kulturach in vitro, dowiaduje się o
możliwościach świadomego sterowania tymi procesami, jak też o wykorzystywaniu
roślinnych kultur in vitro w przemysłowych procesach biotechnologicznych. Student
poznaje podstawowe techniki uzyskiwania, namnażania i przechowywania zwierzęcych
i ludzkich komórek w warunkach in vitro, podstawowe mechanizmy sterowania
rozwojem tych komórek oraz możliwości wykorzystania modeli in vitro w badaniach
laboratoryjnych i praktyce medycznej.
Metody dydaktyczne: wykład, konsultacje, wykonywanie doświadczeń według
instrukcji podczas zajęć laboratoryjnych, analiza wyników eksperymentów
przeprowadzanych samodzielnie przez studentów.
Formy zaliczenia przedmiotu: zaliczenie na ocenę laboratoriów, zaliczenie na ocenę
wykładów
Metody dydaktyczne oraz
ogólna forma zaliczenia
przedmiotu
Odniesienie do kierunkowych
efektów kształcenia
Efekty kształceniai
1. Student definiuje podstawowe typy kultur in vitro i opisuje uwarunkowania
podstawowych procesów morfogenetycznych i fizjologicznych zachodzących w tych
kulturach.
2. Student podaje przykłady praktycznego wykorzystania kultur in vitro w gospodarce i
medycynie.
3. Student zna podstawowe metody kultur in vitro, potrafi wykonać zadania laboratoryjne
w zakresie zakładania i prowadzenia roślinnych i zwierzęcych kultur in vitro.
4. Student posługuje się terminologią fachową stosowaną do opisu roślinnych i
zwierzęcych kultur in vitro.
5. Student potrafi pracować w grupie, wykazuje postawę otwartą w stosunku do
praktycznego zastosowania wiedzy z zakresu kultur in vitro.
Punkty ECTS
Bilans nakładu pracy
studentaii
Wskaźniki ilościowe
Data opracowania:
K_W14, K_U07, K_K01
K_W02, K_W15, K_K08
K_W10, K_U01, K_U09
K_U06, K_U15
K_U16, K_K02, K_K05
4
Ogólny nakład pracy studenta: 100 godz. w tym: udział w wykładach: 15 godz.;
udział w zajęciach laboratoryjnych: 30 godz.; przygotowanie się do zajęć, zaliczeń,
egzaminów: 55 godz.; udział w konsultacjach, zaliczeniach, egzaminie: 5 godz.
Nakład pracy studenta związany z zajęciami iii:
Liczba godzin
Punkty ECTS
50
2
wymagającymi bezpośredniego udziału nauczyciela
85
3,4
o charakterze praktycznym
30.09.2015
Koordynator
przedmiotu:
dr hab. Adam Tylicki
SYLABUS
B. Informacje szczegółowe
Elementy składowe sylabusu
Opis
Nazwa przedmiotu
Kod przedmiotu
Nazwa kierunku
Nazwa jednostki prowadzącej kierunek
Język przedmiotu
Roślinne i zwierzęce kultury in vitro
0200-BS1-5RZV
Biologia, studia pierwszego stopnia
Wydział Biologiczno-Chemiczny UwB, Instytut Biologii
polski
Rok studiów/ semestr
Liczba godzin zajęć dydaktycznych oraz
forma prowadzenia zajęć
Prowadzący
Treści merytoryczne przedmiotu
III rok / semestr V
wykład – 15 godz.
Efekty kształcenia wraz ze sposobem ich
weryfikacji
Forma i warunki zaliczenia
przedmiotu
Wykaz literatury podstawowej
i uzupełniającej
……………………………….
podpis osoby składającej sylabus
dr hab. Adam Tylicki
1. Historia kultur in vitro na tle rozwoju nauk biologicznych.
2. Podstawowe terminy z zakresu biotechnologii i kultur in vitro.
3. Ścieżki morfogenetyczne w roślinnych kulturach in vitro, skład pożywki, a
kierowanie morfogenezą. Charakterystyka kultury kalusa jako przykład wzrostu
niezorganizowanego, strukturalne zróżnicowanie agregatów kalusowych.
Ryzogeneza w kulturach in vitro, morfogeneza pędu w kulturach in vitro,
embriogeneza somatyczna, kultury protoplastów.
4. Uwarunkowania kultury in vitro komórek zwierzęcych i ludzkich, podstawowe
rodzaje linii komórkowych i modele w układach in vitro, hodowle różnych
komórek tkanek i organów, embrionalne, tkankowe i indukowane komórki
macierzyste, klonowanie zarodkowe i somatyczne.
5. kultury in vitro w biotechnologii roślin, zastosowania praktyczne ryzogenezy,
kultury korzeni transformowanych, praktyczne zastosowania morfogenezy pędu,
technologia sztucznych nasion, bioreaktory i ich wykorzystanie w przemyśle
6. Obecne możliwości i perspektywy wykorzystania kultur in vitro.
Efekty kształcenia:
1. Student definiuje podstawowe typy kultur in vitro i opisuje uwarunkowania
podstawowych procesów morfogenetycznych i fizjologicznych zachodzących
w tych kulturach.
2. Student podaje przykłady praktycznego wykorzystania kultur in vitro w
gospodarce i medycynie.
3. Student posługuje się terminologią fachową stosowaną do opisu roślinnych i
zwierzęcych kultur in vitro.
Sposoby weryfikacji:
pisemny test zamknięty podsumowujący przedmiot
1. Obecność na zajęciach (dopuszcza się możliwość opuszczenia 1 wykładu)
2. Pozytywna ocena zaliczenia laboratoriów
3. Pozytywna ocena testu podsumowującego
Literatura podstawowa:
1. Malepszy S. (red.). 2011. Biotechnologia roślin. PWN, Warszawa
2. Stokłosowa S. (red.). 2011. Hodowla komórek i tkanek. PWN,
Warszawa.
Literatura uzupełniająca:
3. Woźny A., Przybył K. (red.). 2004. Komórki roślinne w warunkach
stresu. Wydawnictwo Naukowe UAM, Poznań.
4. Haas R., Kronenvett R. 2009. Hematopoetyczne komórki macierzyste.
Pytania i odpowiedzi. Medipharm Polska
5. H. Bartel. 2012. Embriologia. Wydawnictwo lekarskie PZWL.
SYLABUS
C. Informacje szczegółowe
Elementy składowe sylabusu
Nazwa przedmiotu
Kod przedmiotu
Nazwa kierunku
Nazwa jednostki prowadzącej kierunek
Język przedmiotu
Rok studiów/ semestr
Liczba godzin zajęć dydaktycznych
oraz forma prowadzenia zajęć
Prowadzący
Treści merytoryczne przedmiotu
Efekty kształcenia wraz ze sposobem
ich weryfikacji
Opis
Roślinne i zwierzęce kultury in vitro
0200-BS1-5RZV
Biologia, studia pierwszego stopnia
Wydział Biologiczno-Chemiczny UwB, Instytut Biologii
polski
III rok / semestr V
laboratoria – 30 godz.
dr hab. Iwona Ciereszko, mgr Magdalena Siemieniuk
Roślinne kultury in vitro
1. Przygotowanie i sterylizacja narzędzi, szkła i podłoży do
kiełkowania nasion. Sterylizacja nasion, wysiewanie sterylnych
nasion i przygotowanie nasiona z szalkami do kiełkowania
2. Przygotowanie składników pożywek i pożywek do wzrostu
kalusa i indukcji organogenezy w kulturach in vitro.
3. Pobieranie i wykładanie eksplantatów (fr. liścieni, hypokotyli i
korzeni) na sterylne pożywki, umożliwiające wzrost kalusa
oraz regeneracje pędów i korzeni. Badanie wpływu światła na
wzrost eksplantatów i organogenezę.
4. Wykazanie wpływu rodzaju eksplantatu i miejsca pobrania
eksplantatu na intensywność organogenezy w warunkach in
vitro.
5. Obserwacje rozwoju eksplantatów w różnych warunkach
(światło, ciemność), sporządzanie notatek, dyskusja.
6. Obserwacje końcowe, porównanie zdolności regeneracyjnych
wybranych eksplantatów na świetle i w ciemności.
Opracowanie i prezentacja wyników.
Zwierzęce kultury in vitro
1. Organizacja i wyposażenie laboratorium zwierzęcych kultur in
vitro. Zasady bezpieczeństwa i pracy w warunkach sterylnych.
(Nauka obsługi urządzeń i sprzętu znajdującego się w pracowni
np. komora laminarna, naczynie Dewara, wirówka, mikroskop
świetlny o odwróconej optyce).
2. Przygotowanie mediów do prowadzenia kultur komórkowych.
Procedura rozmrażania komórek linii nowotworowej HeLa-C,
zakładanie kultury komórkowej.
3. Okresowa ocena stanu kultury (ocena kondycji komórek i stanu
konfluencji kultury w mikroskopie odwróconym), wymiana
pożywki i pasażowanie komórek adherentnych.
4. Zakładanie, prowadzenie i ocena parametrów kultur
eksperymentalnych w różnych wariantach pożywek:
kontrolnych, wzbogaconych tiaminą i zawierających
antywitaminy.
5. Ocena żywotności komórek z zastosowaniem testu MTT oraz
ocena tempa przyrostu liczby komórek przy użyciu licznika
komórek i cytometru przepływowego.
6. Opracowanie, prezentacja i dyskusja uzyskanych wyników.
Efekty kształcenia:
1. Student zna podstawowe metody kultur in vitro, potrafi
wykonać zadania laboratoryjne w zakresie zakładania i
prowadzenia roślinnych i zwierzęcych kultur in vitro.
2. Student potrafi pracować w grupie, wykazuje postawę otwartą
w stosunku do praktycznego zastosowania wiedzy z zakresu
kultur in vitro.
Sposoby weryfikacji:
1. Bieżąca ocena postępów studenta podczas zajęć.
2. Ocena dokumentacji z przeprowadzonych doświadczeń i
cotygodniowych obserwacji
Forma i warunki zaliczenia przedmiotu
Wykaz literatury podstawowej
i uzupełniającej
3. Ocena prezentacji wyników przeprowadzonego eksperymentu
1. Obecność na zajęciach (dopuszcza się możliwość opuszczenia
jednych zajęć).
2. Pozytywna ocena pracy studenta podczas zajęć.
3. Pozytywna ocena prezentacji wyników przeprowadzonego
eksperymentu.
Literatura podstawowa:
1. Malepszy S. (red.). 2011. Biotechnologia roślin. PWN, Warszawa
2. Woźny A., Przybył K. (red.). 2004. Komórki roślinne w warunkach
stresu. Wydawnictwo Naukowe UAM, Poznań
3. Stokłosowa S. (red.). 2011. Hodowla komórek i tkanek. PWN,
Warszawa
Literatura uzupełniająca:
1. Drewa T. 2007. Kultury komórkowe zwierząt i człowieka:
przewodnik do ćwiczeń dla studentów kierunku
biotechnologia. UMK, Toruń. CM, Bydgoszcz
……………………………….
podpis osoby składającej sylabus
i
Opis zakładanych efektów kształcenia w zakresie wiedzy, umiejętności i kompetencji społecznych, z uwzględnieniem form zajęć. Uwzględnia się
tylko efekty możliwe do sprawdzenia (mierzalne / weryfikowalne).
ii
Przykładowe rodzaje aktywności: udział w wykładach, ćwiczeniach, przygotowanie do zajęć, udział w konsultacjach, realizacja
zadań projektowych, pisanie eseju, przygotowanie do egzaminu. Liczba godzin nakładu pracy studenta powinna być zgodna z przypisanymi
do tego przedmiotu punktami ECTS wg przelicznika : 1 ECTS – 25÷30 h.
iii
Zajęcia wymagające bezpośredniego udziału nauczyciela są to tzw. godziny kontaktowe (również te nieujęte w rozkładzie zajęć,
np. konsultacje lub zaliczenia/egzaminy). Suma punktów ECTS obu nakładów może być większa od ogólnej liczby punktów ECTS
przypisanej temu przedmiotowi.