Ćwiczenie 3: Instrukcja - Warszawski Uniwersytet Medyczny

Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej
Warszawski Uniwersytet Medyczny
Instruktarz do ćwiczeń
1. Ocena skuteczności dezynfekcji rąk.
Podzielić studentów na 5 grup: 1, 2, 3, 4, 5 (po 1-2 osoby)
Każdą z dwóch płytek z podłożem agarowym z krwią podzielić na tyle sektorów, ilu jest
studentów przy stole. Jedną płytkę należy podpisać „PRZED”, a drugą „PO”. Każdy
student/studentka podpisuje inicjałami lub cyfrą „swój” sektor na obydwu płytkach. W
sektorze należy również wpisać numer grupy, do której student/studentka został przypisany
(1, 2, 3, 4, 5).
Każdy student/studentka odciska „brudny” palec na „swoim” sektorze na płytce „PRZED”.
Odciskanie polega na dotknięciu podłoża przez 15 sekund. Następnie:
Grupa 1 – pociera opuszkę palca „brudnego” przez 30 sekund jałowym wacikiem nasączonym
antyseptycznym preparatem alkoholowym. Wacik wyrzucamy do kosza. Na zdezynfekowany
palec nie można dmuchać, ani nim machać. Gdy alkohol samoistnie wyschnie, należy odcisnąć
opuszkę palca przez 15 sekund na płytce „PO”.
Grupa 2 – myje ręce „socjalnie” w ciepłej wodzie z mydłem, następnie suszy ręce suszarką. Po
wyschnięciu palca, (który odciskano uprzednio) należy odcisnąć go przez 15 sekund na płytce
„PO”.
Grupa 3 – myje ręce wg techniki Ayliffe w zimnej wodzie z mydłem, następnie suszy ręce
suszarką. Po wyschnięciu palca, (który odciskano uprzednio) należy odcisnąć go przez 15 sekund
na płytce „PO”.
Grupa 4 - myje ręce wg techniki Ayliffe w bardzo ciepłej wodzie z mydłem, następnie suszy ręce
suszarką. Po wyschnięciu palca, (który odciskano uprzednio) należy odcisnąć go przez 15 sekund
na płytce „PO”.
Grupa 5 - myje ręce wg techniki Ayliffe w ciepłej wodzie z mydłem, następnie suszy ręce
suszarką. Po wyschnięciu rąk pociera przez 30 sekund jałowym wacikiem nasączonym
antyseptycznym preparatem alkoholowym opuszkę palca, który odciskano uprzednio. Wacik
wyrzucamy do kosza. Na zdezynfekowany palec nie można dmuchać, ani nim machać. Gdy
alkohol samoistnie wyschnie, należy odcisnąć opuszkę palca przez 15 sekund na płytce „PO”.
Płytki z posiewami będą inkubowane 18-24h w temperaturze 37°C, a następnie
przechowywane w chłodni do dnia ćwiczeń.
2. Badanie czystości powietrza metodą swobodnej sedymentacji.
Otwartą płytkę agarową umieścić na stole do ćwiczeń na ok. 60 minut. Po tym czasie zamknąć
płytkę. Płytki z posiewami będą inkubowane 18-24h w temperaturze 37°C, a następnie
przechowywane w chłodni do dnia ćwiczeń.
Copyright © 2016/2017 Walter de Walthoffen Szymon Warszawski Uniwersytet Medyczny/Medical University of Warsaw
Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej
Warszawski Uniwersytet Medyczny
3. Posiew metodą odciskową różnych materiałów i przedmiotów.
Wybrać materiały i przedmioty do badania (np. klucze, numerek z szatni, rękaw fartucha, zegarek,
monety, itp). Podzielić płytkę agarową na sektory i opisać (numerem lub nazwą odciskanego
przedmiotu). Pobrać odciski. Płytki z posiewami będą inkubowane 18-24h w temperaturze 37°C,
a następnie przechowywane w chłodni do dnia ćwiczeń.
4. Badanie występowania bakterii metodą odciskową.
Płytką odciskową „Count-Tact” należy pobrać odcisk z dowolnej, płaskiej powierzchni, np. blat
stołu laboratoryjnego, parapet, podłoga. Czas nacisku wynosić powinien 15 sekund. Płytki z
posiewami będą inkubowane 18-24h w temperaturze 37°C, a następnie przechowywane w chłodni
do dnia ćwiczeń.
5. Porównanie skuteczności różnych metod dezynfekcji przy użyciu szczepów bakteryjnych:
Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis.
Płytkę agarową podzielić i podpisać wg wzoru:
Escherichia
coli
Staphylococcus
aureus
Bacillus
subtilis
Kontrola
żywotności
2% chloramina
1000C
Kontrola żywotności – Przy użyciu ezy wykonać punktowy posiew z płynnych hodowli badanych
szczepów na płytkę agarową w odpowiednich kratkach.
2% chloramina - Przenieść pipetą 0,5ml hodowli płynnych do odpowiednich probówek podpisanych
roztworu 2% chloraminy. Czas ekspozycji na chloraminę wynosi 10 minut. Następnie należy wykonać
punktowy posiew na płytkę agarową w odpowiednią kratkę hodowli po inkubacji.
1000C – Pozostała część hodowli płynnej umieścić we wrzącej łaźni na 10 minut. Następnie wykonać
punktowy posiew z płynnych hodowli badanych szczepów na płytkę agarową w odpowiednią kratkę.
Płytki z posiewami będą inkubowane 18-24h w temperaturze 37°C, a następnie przechowywane w
chłodni do dnia ćwiczeń.
Copyright © 2016/2017 Walter de Walthoffen Szymon Warszawski Uniwersytet Medyczny/Medical University of Warsaw