Nr wniosku: 169027, nr raportu: 2570. Kierownik (z rap.): mgr inż
Transkrypt
Nr wniosku: 169027, nr raportu: 2570. Kierownik (z rap.): mgr inż
Nr wniosku: 169027, nr raportu: 2570. Kierownik (z rap.): mgr inż. Monika Rewers Kiełkowanie jest ważnym etapem w cyklu życiowym rośliny, ponieważ jest konieczne do wytworzenia siewki i dalszego rozwoju rośliny. Jednym z najważniejszych procesów komórkowych podczas kiełkowania jest wydłużanie komórek, które prowadzi do przebicia okrywy nasiennej przez korzeń zarodkowy. Wydłużanie komórek jest związane z endoreduplikacją, podczas której po syntezie DNA nie zachodzi podział mitotyczny; w efekcie komórki stają się endopoliploidalne, tzn. zawierają zwielokrotnioną zawartość DNA. Ponieważ wraz ze wzrostem zawartości DNA wzrasta wielkość jądra oraz komórki z pomiarów intensywności syntezy DNA można wnioskować, w którym regionie zarodka komórki się wydłużają. Ponieważ korzeń zarodkowy jest pierwszym wyłaniającym się po przebiciu okrywy nasiennej organem zarodka, do tej pory uważano, że to komórki tego organu wydłużają się w czasie kiełkowania. Opierając się na tym założeniu, do badań kiełkowania, wybiera się najczęściej korzeń zarodkowy lub też całą oś zarodka. Jednakże badania kiełkowania nasion Arabidopsis thaliana wykazały, że u tego gatunku długość korzenia zarodkowego nie zmienia się w czasie kiełkowania, a przebicie okrywy nasiennej następuje w wyniku wydłużania się komórek dolnej części hipokotyla i strefy przejściowej między korzeniem zarodkowym a hipokotylem. Niniejsza praca podejmuje próbę rozszerzenia tych badań na ważne gospodarczo gatunki roślin rolniczych i ogrodniczych. Jej celem było wyznaczenie regionów zarodka najaktywniej syntetyzujących DNA w czasie kiełkowania nasion różnych typów (bielmowych, bezbielmowych, obielmowych, wytwarzających siewki w sposób epigeiczny i hipogeiczny) 16 gatunków. Analizy cytometryczne różnych części zarodka (korzenia zarodkowego, strefy przejściowej, hipokotylu, liścieni) podczas kiełkowania wykazały, że w zależności od sposobu rozwoju siewki, najczęściej intensywność endoreduplikacji jest najwyższa w strefie przejściowej między korzeniem zarodkowym a hipokotylem (gatunki epigeiczne) albo w hipokotylu (gatunki hipogeiczne). W liścieniach natomiast poziom endopoliploidalności nie zależy od typu wzrostu siewki, ale od typu liścieni i jest wyższy u gatunków, których liścienie pełnią funkcje magazynującą, niż u tych, u które służą jako organ fotosyntetyzujący. Podczas kiełkowania oprócz syntezy DNA obserwuje się również wytwarzanie reaktywnych form tlenu (ROS), których funkcja w tym procesie nie jest dokładnie wyjaśniona. Sugeruje się, że ROS biorą udział w transdukcji sygnałów, wydłużaniu się komórek lub/i w ochronie komórek przed atakiem patogenów. Testy histochemiczne in situ wykazały, że produkcja ROS występuje w tych samych regionach u wszystkich badanych gatunków i nie jest związana z poziomem endopoliploidalności. W fazie kiełkowania sensu stricto ROS są wytwarzane w korzeniu zarodkowym, a po przebiciu okrywy nasiennej dodatkowo w strefie przejściowej. Sugeruje to rolę ROS w ochronie zarodka i młodej siewki przed czynnikami stresowymi środowiska, a nie w kontroli wydłużania się komórek. Uzyskane wyniki wskazują, że badania kiełkowania, w zależności od typu rozwoju siewki, powinny uwzględniać również strefę przejściową między korzeniem zarodkowym i hipokotylem oraz/lub hipokotyl, a nie jedynie korzeń zarodkowy. Odpowiedni dobór materiału do badań jest szczególnie ważny w kosztownych badaniach molekularnych, wykorzystujących metody genomiki, transkryptomiki, proteomiki i metabolomiki. Uzyskane w projekcie wyniki przyczynią się do przyspieszenia oraz obniżenia kosztów tych badań, a zarazem ułatwią interpretację ich wyników. Wiedzę na temat regionów zarodka, które są najbardziej aktywne w czasie kiełkowania można również wykorzystać podczas monitorowania procesu kondycjonowania nasion, który polega na zainicjowaniu kiełkowania nasion. Zabieg ten, aby był wydajny, musi zostać przerwany przed przebiciem okrywy nasiennej przez korzeń zarodkowy, kiedy jeszcze wizualnie nie można wykryć zmian. Wybierając do analizy intensywności syntezy DNA sugerowane w niniejszej pracy regiony zarodka, można precyzyjniej ustalać warunki kondycjonowania nasion.