Program ćwiczeń z fizjologii zwierząt semestr zimowy 2016/2017

Transkrypt

Program ćwiczeń z fizjologii zwierząt semestr zimowy 2016/2017
Program ćwiczeń z Fizjologii Zwierząt dla studentów II roku Wydziału Medycyny
Weterynaryjnej - semestr zimowy 2016/2017
Ćwiczenie 1 – 3-4.10.16
1. Omówienie regulaminu ćwiczeń
2. Płyny fizjologiczne dla zwierząt stałocieplnych i zmiennocieplnych
3. Mikroskopowy obraz niebarwionego preparatu krwi różnych kręgowców
4. Zachowanie się krwinek czerwonych ssaka w roztworach izo-, hipo- i hipertonicznych
5. Hemoliza krwinek czerwonych wywołana czynnikami fizycznymi i chemicznymi
6. Oznaczanie oporności osmotycznej krwinek czerwonych
7. Oznaczanie wskaźnika hematokrytowego
Ćwiczenie 2 – 10-11.10.16
1. Obliczanie liczby krwinek czerwonych we krwi obwodowej
2. Oznaczanie Hb we krwi obwodowej.
3. Obliczanie wskaźnika barwnego (indeksu) Hb
4. Obliczanie średniej masy Hb (MCH), średniej objętości krwinki czerwonej (MCV), średniego stężenia Hb w
krwince czerwonej (MCHC)
5. Odtlenowanie, utlenowanie, utlenianie i redukcja hemoglobiny
6. Widmo hemoglobiny i niektórych jej pochodnych
Ćwiczenie 3 –17-18.10.16
1. Obliczanie liczby krwinek białych we krwi obwodowej
2. Barwienie rozmazu krwi metodą Pappenheima
3. Ocena i rozpoznawanie poszczególnych rodzajów krwinek białych w barwionym preparacie krwi różnych
gatunków zwierząt
4. Określanie procentowego udziału poszczególnych rodzajów krwinek białych we krwi różnych gatunków
zwierząt - leukogram
Ćwiczenie 4 – 24-25.10.16
1. Oznaczanie szybkości opadania krwinek (OB)
2. Czas krwawienia i czas krzepnięcia (omówienie)
3. Krzepnięcie krwi odwapnionej po rekalcyfikacji i wpływ jonów wapnia
4. Grupy krwi u człowieka i zwierząt (omówienie)
5. Oznaczanie pojemności buforowej krwi
Ćwiczenie 5 – 7-8.11.16
Repetytorium z fizjologii krwi
Ćwiczenie 6 – 14-15.11.16
1. Wpływ prądu indukcyjnego na mięsień, określanie czasu latencji *
2. Wpływ siły bodźców elektrycznych na wielkość reakcji skurczowej mięśnia *
3. Rejestracja pojedynczego skurczu izotonicznego i izometrycznego mięśnia *
4. Warunki otrzymywania i zapisywania skurczu tężcowego zupełnego i niezupełnego *
5. Cechy skurczu mięśnia gładkiego
Ćwiczenie 7 – 21-22.11.16
1. Rejestracja skurczu mięśnia wypoczętego i znużonego *
2. Zapis zmęczenia mięśnia *
3. Ergograficzne badanie zmęczenia mięśni szkieletowych u człowieka
4. Wpływ zaciśnięcia tętnicy ramieniowej na zmęczenie mięśni człowieka badanych ergograficznie
5. Zapis reakcji skurczowej mięśnia szkieletowego szczura – skurcz pojedynczy i tężcowy, zapis zmęczenia
mięśniowego
6. Elastyczność i rozciągliwość mięśni szkieletowych
Ćwiczenie 8 – 28-29.11.16
1. Zapis potencjału spoczynkowy i czynnościowego komórki nerwowej, powstawanie impulsów nerwowych *
2. Wpływ pobudzający bodźców elektrycznych, mechanicznych, termicznych i chemicznych na nerwy *
3. Porównanie progu pobudliwości mięśni i nerwów *
4. Badanie szybkości przewodzenia w różnych włóknach nerwowych *
5. Sumowanie czasowe elektrycznych bodźców podprogowych działających na nerw *
6. Wpływ środków narkotycznych, anestetyków, neurotoksyn na przewodnictwo nerwowe *
7. Wpływ bodźców pobudzających na nerwy, badanie pobudliwości mięśni i nerwów – preparat nerwowomięśniowy szczura
Ćwiczenie 9 – 5-6.12.16
1. Badanie odruchów obronnych u żaby rdzeniowej - film
2. Mierzenie czasu odruchu zginania kończyny u żaby rdzeniowej /metoda Türka/ - film
3. Badanie odruchów u człowieka:
a. na rozciąganie – z mięśnia trójgłowego łydki, czworogłowego uda, dwugłowego ramienia, trójgłowego
ramienia
b. skórnych – podeszwowy, Babińskiego /omówienie/
c. źrenicznych
Ćwiczenie 10 - 12-13.12.16
Repetytorium z fizjologii układu mięśniowego i nerwowego
Ćwiczenie 11– 19-20.12.16
1. Wpływ pH i podwyższonej temperatury na działanie amylazy ślinowej
2. Etapy rozkładu skrobi przez amylazę ślinową
3. Badanie aktywności proteolitycznej soku żołądkowego w zależności od pH
4. Badanie wpływu podpuszczki na białko mleka
5. Działanie żółci na tłuszcze
Ćwiczenie 12 – 9-10.01.17
1. Badanie odczynu i oglądanie treści żwacza pod mikroskopem
2. Obliczanie liczby pierwotniaków w treści żwacza
3. Badanie aktywności fermentacyjnej płynu żwaczowego
4. Rejestracja skurczów żwacza u owcy /film/
5. Badanie amylolitycznej aktywności płynnej treści żwacza
6. Hormonalna regulacja funkcji przewodu pokarmowego*
Ćwiczenie 13 – 16-17.01.17
Odrabianie i zaliczanie opuszczonych ćwiczeń
Ćwiczenie 14 – 23-24.01.17
Repetytorium z fizjologii układu pokarmowego
Ćwiczenie 15- 30-31.01.17
Zaległe repetytoria
* - elementy ćwiczeń realizowane z wykorzystaniem programu komputerowego „PhysioEx®7.0 for Human Physiology” oraz Human
Physiology System, MacLab, ADInstruments GmbH.