ProgramWet2012-13 zima.DOC - Katedra Fizjologii Zwierząt

Program ćwiczeń z Fizjologii Zwierząt dla studentów II roku Wydziału Medycyny
Weterynaryjnej - semestr zimowy 2012/2013
Ćwiczenie 1 – 8-9.10
1. Omówienie regulaminu ćwiczeń
2. Płyny fizjologiczne dla zwierząt stałocieplnych i zmiennocieplnych
3. Mikroskopowy obraz niebarwionego preparatu krwi różnych kręgowców
/żaby, kury, konia, krowy, świni, owcy i człowieka/
4. Zachowanie się krwinek czerwonych ssaka w roztworach izo-, hipo-, i hipertonicznych
5. Hemoliza krwinek czerwonych wywołana czynnikami fizycznymi i chemicznymi
6. Oznaczanie oporności osmotycznej krwinek czerwonych
7. Oznaczanie wartości hematokrytowej i rzeczywistej objętości krwinek czerwonych krwi obwodowej
Ćwiczenie 2 – 15-16.10
1. Oznaczanie liczby krwinek czerwonych
2. Ilościowe oznaczanie Hb we krwi.
3. Obliczanie wskaźnika barwnego (indeksu) Hb
4. Obliczanie średniej masy Hb (MCH), średniej objętości krwinki czerwonej (MCV), średniego stężenia Hb w
krwince czerwonej (MCHC)
5. Odtlenowanie, utlenowanie, utlenianie i redukcja hemoglobiny
6. Widmo hemoglobiny i niektórych jej pochodnych
Ćwiczenie 3 – 22-23.10
1. Oznaczanie liczby krwinek białych
2. Barwienie rozmazu krwi metodą Pappenheima
3. Ocena i rozpoznawanie poszczególnych rodzajów krwinek białych w barwionym preparacie krwi człowieka,
krowy, konia
4. Oznaczanie procentowego udziału poszczególnych rodzajów krwinek białych - leukogram
Ćwiczenie 4 – 29-30.10
1. Oznaczanie szybkości opadania krwinek (OB)
2. Czas krwawienia i czas krzepnięcia
3. Krzepnięcie krwi odwapnionej po rekalcyfikacji i wpływ jonów wapnia
4. Grupy krwi u człowieka i zwierząt
5. Oznaczanie pojemności buforowej krwi
Ćwiczenie 5 – 5-6.11
Repetytorium z fizjologii krwi
Ćwiczenie 6 – 12-13.11
1. Wpływ prądu indukcyjnego na mięsień, określanie czasu latencji *
2. Wpływ siły bodźców elektrycznych na wielkość reakcji skurczowej mięśnia *
3. Rejestracja pojedynczego skurczu izotonicznego i izometrycznego mięśnia *
4. Warunki otrzymywania i zapisywania skurczu tężcowego zupełnego i niezupełnego *
5. Cechy skurczu mięśnia gładkiego
Ćwiczenie 7 – 19-20.11
1. Elastyczność i rozciągliwość mięśni szkieletowych
2. Rejestracja skurczu mięśnia wypoczętego i znużonego *
3. Zapis zmęczenia mięśnia *
4. Ergograficzne badanie zmęczenia mięśni szkieletowych u człowieka
5. Wpływ zaciśnięcia tętnicy ramieniowej na zmęczenie mięśni człowieka badanych ergograficznie
6. Zapis reakcji skurczowej mięśnia szkieletowego szczura – skurcz pojedynczy i tężcowy, zapis zmęczenia
mięśniowego
Ćwiczenie 8 – 26-27.11
1. Potencjał spoczynkowy i czynnościowy komórki nerwowej, powstawanie impulsów nerwowych *
2. Wpływ pobudzający bodźców elektrycznych, mechanicznych, termicznych i chemicznych na nerwy *
3. Porównanie progu pobudliwości mięśni i nerwów *
4. Badanie szybkości przewodzenia w różnych włóknach nerwowych *
5. Sumowanie czasowe elektrycznych bodźców podprogowych działających na nerw *
6. Wpływ środków narkotycznych, anestetyków, neurotoksyn na przewodnictwo nerwowe *
7. Wpływ bodźców pobudzających na nerwy, badanie pobudliwości mięśni i nerwów – preparat nerwowomięśniowy szczura
Ćwiczenie 9 – 3-4.12
1. Badanie odruchów obronnych u żaby rdzeniowej /wyciąganie kończyny, zrzucanie papierka/ - film
2. Mierzenie czasu odruchu wyciągania kończyny u żaby rdzeniowej /metoda Türka/ - film
3. Badanie odruchów u człowieka:
a. na rozciąganie – z mięśnia trójgłowego łydki, czworogłowego uda, dwugłowego ramienia, trójgłowego
ramienia
b. skórnych – podeszwowy, Babińskiego /omówienie/
c. źrenicznych
Ćwiczenie 10 - 10-11.12
Repetytorium z fizjologii układu mięśniowego i nerwowego
Ćwiczenie 11– 17-18.12
1. Wpływ pH i podwyższonej temperatury na działanie amylazy ślinowej
2. Etapy rozkładu skrobi przez amylazę ślinową
3. Badanie aktywności proteolitycznej soku żołądkowego w zależności od pH
4. Badanie wpływu podpuszczki na białko mleka
5. Działanie żółci na tłuszcze
Ćwiczenie 12 – 7-8.01
1. Badanie odczynu i oglądanie treści żwacza pod mikroskopem
2. Obliczanie ilości pierwotniaków w treści żwacza
3. Badanie aktywności fermentacyjnej płynu żwaczowego
4. Rejestracja skurczów żwacza u owcy /film/
5. Badanie amylolitycznej aktywności płynnej treści żwacza
6. Hormonalna regulacja funkcji przewodu pokarmowego
Ćwiczenie 13 – 14-15.01
Repetytorium z fizjologii układu pokarmowego
Ćwiczenie 14 – 21-22.01
Odrabianie i zaliczanie opuszczonych ćwiczeń
Ćwiczenie 15- 23-25.01
Zaległe repetytoria
* - elementy ćwiczeń realizowane z wykorzystaniem programu komputerowego „PhysioEx®7.0 for Human Physiology” oraz Human
Physiology System, MacLab, ADInstruments GmbH.