Tina-quant C-Reactive Protein Gen.3 Symbol wskazuje
Transkrypt
Tina-quant C-Reactive Protein Gen.3 Symbol wskazuje
05112761001V6 CRPL3 Tina-quant C-Reactive Protein Gen.3 Symbol wskazuje analizatory, w których można używać niniejszych zestawów odczynnikowych Nr kat. Butelka 902 Zawartość MODULAR P 04956885 190 1 2 REAGENT 6 REAGENT 6 x 20 mL x 10 mL 04956923 190 1 2 REAGENT 6 REAGENT 6 x 63 mL x 33 mL D 1 REAGENT 4 x 235 mL 2 REAGENT 4 x 116 mL Niektóre analizatory i zestawy odczynnikowe mogą być niedostępne w poszczególnych krajach. Aby uzyskać informacje o innych aplikacjach należy skontaktować się z lokalnym przedstawicielem Roche Diagnostics. Polski Zalecenia i środki ostrożności Przeznaczone do celów diagnostyki in vitro. Informacja o aplikacjach Należy stosować standardowe procedury postępowania z odczynnikami. Analizatory Roche/Hitachi MODULAR P: ACN 210. Karta charakterystyki produktu dostępna na życzenie. Analizator Roche/Hitachi MODULAR D: ACN 200. Wszelkie odpady należy usuwać zgodnie z lokalnymi przepisami. 04995554 190 Zastosowanie Zestaw do ilościowego oznaczania in vitro stężenia CRP w surowicy ludzkiej i osoczu w automatycznych analizatorach chemii klinicznej firmy Roche metodą immunoturbidymetryczną. Podsumowanie1,2,3,4,5,6,7,8 Białko C-reaktywne jest klasycznym białkiem ostrej fazy, pojawiającym się w stanach zapalnych. Syntetyzowane jest w wątrobie i składa się z pięciu jednakowych łańcuchów polipeptydowych tworzących pięć podjednostek o masie cząsteczkowej 105000 Daltonów. CRP jest najbardziej czułym spośród białek ostrej fazy, a jego stężenie gwałtownie wzrasta w toku procesów zapalnych. Cząstka CRP aktywuje dopełniacz na drodze klasycznej. Wzrost CRP często wyprzedza inne objawy kliniczne, jak np. gorączkę. U zdrowych osób CRP występuje w ilościach śladowych, do 5 mg/L. Na początku ostrej fazy stężenie CRP wzrasta bardzo dynamicznie. Wzrost zaczyna się już po 6 do 12 godz., a wartości maksymalne osiągane są po 24-48 godzinach. Stężenie powyżej 100 mg/L kojarzone jest z bardzo silną stymulacją, taką jak poważny uraz lub ciężkie zakażenie (sepsa). Produkcja CRP może być nieco mniejsza u pacjentów chorych na choroby wątroby. Pomiar stężenia CRP wykorzystywany jest do wykrywania procesów zapalnych w organiźmie z wyjątkiem pewnych rodzajów stanów zapalnych, takich jak układowy toczeń rumieniowaty (SLE = Systemic Lupus Erythematosus) czy wrzodziejącego zapalenia jelita grubego (Colitis ulcerosa), do monitorowania antybiotykoterapii, wykrywania infekcji wewnątrzmacicznych powstających na skutek przedwczesnego pęknięcia pęcherza płodowego, różnicowania między aktywnymi i nieaktywnymi formami choroby powikłanej infekcją np. u pacjentów z wrzodziejącym zapaleniem jelita grubego lub SLE, monitorowania przebiegu choroby reumatycznej i oceny leczenia przeciwzapalnego, wykrywania wczesnego etapu powikłań pooperacyjnych, takich jak zakażenia ran, zakrzepica czy zapalenia płuc oraz do różnicowania między zakażeniem a odrzuceniem przeszczepu szpiku kostnego. Pooperacyjne monitorowanie stężenia CRP może pomóc w rozpoznaniu nieoczekiwanych komplikacji (długotrwałe wysokie lub narastające stężenie). Pomiar zmian stężenia CRP dostarcza użytecznych informacji diagnostycznych o tym, jak ostry i poważny jest toczący się proces chorobowy. Pozwala również na ocenę etiologii choroby. Utrzymujący się wysoki poziom CRP zazwyczaj rokuje poważnie, świadcząc o obecności niekontrolowanej infekcji. Zasada testu9,10 Metoda immunoturbidymetryczna wzmocniona cząstkami lateksu. Ludzkie CRP aglutynuje z cząstkami lateksu opłaszczonymi przeciwciałami monoklonalnymi przeciwko ludzkiej CRP. Agregaty oznacza się metodą immunoturbidymetryczną. Odczynniki - roztwory robocze R1 R2 TRISa bufor zawierający albuminę surowicy wołowej; konserwanty. Cząstki lateksu w buforze glicynowym, opłaszczone przeciwciałami przeciwko CRP (mysie), immunoglobuliny (mysie); konserwant. a) TRIS = Tri(hydroksymetylo)-aminometan 2012-01, V 6 Polski Postępowanie z odczynnikami R1: Gotowe do użycia. R2: Gotowe do użycia. Przed użyciem butelkę kilkukrotnie odwrócić do góry dnem, unikając powstawania piany. Przechowywanie i trwałość Nie otwarty zestaw odczynnikowy: W temp. 2-8 ℃ zachowuje trwałość do podanej daty ważności R1: W analizatorze, otwarty i schłodzony, zachowuje trwałość przez 14 tyg. R2: W analizatorze, otwarty i schłodzony, zachowuje trwałość przez 14 tyg. Pobieranie i przygotowanie materiału W celu pobrania i przygotowania próbek należy stosować jedynie przeznaczone do tego probówki lub pojemniki. Sprawdzono i zaakceptowano możliwość stosowania jedynie materiałów biologicznych wymienionych poniżej. Surowica Osocze: Osocze krwi pobranej na heparynę litową, K2-/K3-EDTA . Podane rodzaje próbek oznaczono przy użyciu wybranych probówek do pobierania materiału dostępnych na rynku w czasie wykonywania oznaczeń. Oznacza to, że nie przetestowano probówek od wszystkich producentów. Systemy pobierania próbek pochodzące od różnych producentów mogą zawierać różniące się materiały, co w pewnych przypadkach może mieć wpływ na wynik oznaczeń. W przypadku stosowania probówek pierwotnych (systemów pobierania krwi) należy ściśle przestrzegać zaleceń ich producenta. Przed oznaczeniem odwirować próbki z widocznym zmętnieniem lub obecnością strątów. Trwałość:11 11 dni w temp. 15-25 ℃ 2 mies. w temp. 2-8 ℃ 3 lata w temperaturze (-15)–(-25)°C Materiały dostarczone w zestawie Patrz "Odczynniki - roztwory robocze" w części o odczynnikach Niezbędne materiały dodatkowe (nie dostarczone w zestawie) • Kalibratory: Preciset Serum Proteins, nr kat. 11876406 216; C.f.a.s. (Kalibrator dla systemów zautomatyzowanych) Proteins, nr kat. 11355279 216, 11355279 160 (dla USA) • Kontrole: Precinorm Protein, nr kat. 10557897 122, 10557897 160 (dla USA); Precipath Protein, nr kat. 11333127 122, 11333127 160 (dla USA) PreciControl ClinChem Multi 1, nr kat. 05117003 190, 05947626 160 (dla USA), PreciControl ClinChem Multi 2, nr kat. 05117216 190, 05947774 160 (dla USA) • 0.9 % NaCl • Ogólne wyposażenie laboratoryjne Oznaczenie W celu optymalnego działania testu należy stosować się do zaleceń zawartych w niniejszej ulotce dotyczących konkretnego analizatora. Należy postępować zgodnie z instrukcją obsługi analizatora. 1/4 Roche/Hitachi CRPL3 Tina-quant C-Reactive Protein Gen.3 Wszelkie zmiany w aplikacji nie zatwierdzone przez firmę Roche nie podlegają gwarancji i muszą być zdefiniowane przez użytkownika. Kalibracja Spójność pomiarowa: Metoda standaryzowana wobec metody wewnętrznej odnoszącej się do CRM 470 (RPPHS - Reference Preparation for Proteins in Human Serum) (wzorzec dla białek surowicy ludzkiej).12 Po wprowadzeniu nowych wartości kalibratora a przed wykonaniem kontroli oraz oznaczania próbek pochodzących od pacjentów, należy przeprowadzić kalibrację. Analizatory Roche/Hitachi 902/MODULAR D: S1: 0.9 % NaCl S2-5: Preciset Serum Proteins Analizatory Roche/Hitachi MODULAR P S1: 0.9 % NaCl S2: C.f.a.s. Proteins W celu uzyskania stężeń wzorca dla sześciopunktowej krzywej kalibracji, należy wartości stężenia kalibratora C.f.a.s Proteins właściwe dla danej serii pomnożyć przez poniższe współczynniki: S2: 0.10 S3: 0.40 S4: 1.00 S5: 2.00 S6: 4.00 Częstość wykonywania kalibracji Zaleca się kalibrację pełną: • po zmianie serii odczynnika • jeśli wymagają tego procedury kontroli jakości Kontrola jakości Do kontroli należy używać materiałów wyszczególnionych w rozdziale "Niezbędne materiały dodatkowe". Dodatkowo można stosować inny odpowiedni materiał kontrolny. Częstotliwość i zakres przeprowadzania kontroli muszą być dostosowane do indywidualnych wymogów danego laboratorium. Uzyskane wartości winny zawierać się w wyznaczonych granicach. Wskazane jest, by każde laboratorium opracowało procedury naprawcze, które należy wdrożyć, gdy wyniki uzyskane dla materiałów kontrolnych znajdą się poza podanym zakresem. Procedury kontroli jakości należy stosować zgodnie z właściwymi zaleceniami organów państwowych oraz lokalnymi wytycznymi. Obliczanie wyników Analizatory automatycznie obliczają stężenie oznaczanej substancji dla każdej próbki. Współczynniki przeliczeniowe: mg/L x 9.52 = nmol/L mg/L x 0.1 = mg/dL mg/dL x 0.01 = g/L mg/dL x 95.2 = nmol/L mg/dL x 10 = mg/L g/L x 100 = mg/dL Ograniczenia - substancje interferujące Kryterium: Odzysk w granicach ± 10 % wartości początkowych w stężeniu CRP wynoszącym 5.0 mg/L (47.6 nmol/L). Żółtaczka:13 Brak istotnej interferencji do wartości wskaźnika I wynoszącego 60 (przybliżone stężenie związanej i niezwiązanej bilirubiny: 60 mg/dL lub 1026 µmol/L). Hemoliza:13 Brak istotnej interferencji do wartości wskaźnika H wynoszącego 1000 (przybliżone stężenie hemoglobiny: 1000 mg/dL lub 622 µmol/L). Lipemia (Intralipid):13 Brak istotnej interferencji do wartości wskaźnika L wynoszącego 1000. Brak istotnej zależności pomiędzy wskaźnikiem L (odnosi się do zmętnienia), a stężeniem triglicerydów. Czynnik reumatoidalny do 1200 IU/mL nie interferuje. Efekt nadmiaru antygenu: Brak zafałszowanych wyników do stężenia CRP wynoszącego1200 mg/L (11424 nmol/L). Leki: Brak interferencji z najczęściej używanymi lekami w stężeniu terapeutycznym.14,15 Leki: Znacznie zaniżone wyniki CRP mogą wystąpić w próbkach pobranych od pacjentów leczonych karboksypenicyliną. W bardzo rzadkich przypadkach gammapatii, szczególnie typu IgM (makroglobulinemia Waldenströma), wyniki mogą być niemiarodajne. Wprawdzie podjęto kroki mające na celu zminimalizowanie interferencji ze strony ludzkich przeciwciał przeciwko antygenom mysim, jednak w próbkach od pacjentów leczonych monoklonalnymi przeciwciałami Roche/Hitachi mysimi lub pacjentów, którzy otrzymali takie przeciwciała w celach diagnostycznych, mogą wystąpić błędne wyniki testu. Dla celów diagnostycznych wyniki powinny być interpretowane z uwzględnieniem historii choroby, badań klinicznych oraz innych danych o pacjencie. WYMAGANE DZIAŁANIE Programowanie specjalnego cyklu mycia: W odniesieniu do pewnych kombinacji testów przeprowadzanych jednocześnie w systemach Roche/Hitachi wymaga się stosowania specjalnych cykli mycia. W celu uzyskania dalszych instrukcji należy odnieść się do ostatniej wersji listy dodatkowych cykli mycia i do Podręcznika Operatora. W celu uzyskania instrukcji dotyczących specjalnych cykli mycia, użytkownicy w USA powinni odnieść się do dokumentu dotyczącego programowania specjalnego cyklu mycia (znajdującego się na stronie internetowej MyLabOnline) oraz w Podręczniku Użytkownika. Tam, gdzie to niezbędne, przed podaniem wyników testu należy wprowadzić specjalne oprogramowanie dotyczące dodatkowego cyklu mycia/efektu przeniesienia. Granice i zakresy Zakres pomiarowy Analizatory Roche/Hitachi 902/MODULAR P/MODULAR D Zakres pomiarowy: 0.3-350 mg/L (2.9-3333 nmol/L) Próbki o wartościach przekraczających liniowość reakcji należy rozcieńczać automatycznie przy użyciu funkcji „Rerun”. Rozcieńczenie próbek za pomocą funkcji „Rerun” wynosi 1:2. Wyniki próbek rozcieńczonych za pomocą funkcji „Rerun” są automatycznie mnożone przez współczynnik 2. Granica dla próby ślepej (LoB) i granica wykrywalnosci (LoD) LoB = 0.2 mg/L (1.9 nmol/L) LoD = 0.3 mg/L (2.9 nmol/L) Granice próby ślepej i wykrywalności określono zgodnie z wymogami EP17-A CLSI (Instytutu Standardów Klinicznych i Laboratoryjnych; dawniej NCCLS). Granica próby ślepej jest 95 percentylem wartości z n > 60 pomiarów próbek nie zawierających analizowanych substancji w kilku niezależnych seriach. Granica próby ślepej jest zgodna ze stężeniem, poniżej którego próbki wolne od substancji badanej znajdowane są z prawdopodobieństwem 95 %. Granica wykrywalności jest określona na podstawie granicy dla próby ślepej i odchylenia standardowego próbek o niskim stężeniu. Granica wykrywalności odnosi się do najniższego dającego się oznaczyć stężenia substancji analizowanej (wartość ponad granicę próby ślepej z prawdopodobieństwem 95 %). Czułość funkcjonalna (granica oznaczania) 0.6 mg/L (5.7 nmol/L) Granicę oznaczalności określono za pomocą oznaczania wyników czułości funkcjonalnej. Granica oznaczalności (czułość funkcjonalna) to najniższe stężenie CRP, które może być mierzone przy współczynniku zmienności dla precyzji pomiędzy seriami < 20 %. Została wyliczona przez oznaczenia próbek białka C-reaktywnego o niskich stężeniach. Wartości oczekiwane Uzgodnione zakresy wartości referencyjnych dla dorosłych:16 < 5 mg/L (< 47.6 nmol/L) W oparciu o populacje pacjentów każde laboratorium powinno określić poziom wartości oczekiwanych lub wyznaczyć własne zakresy wartości referencyjnych. Szczegółowe dane o teście Dane uzyskane przy użyciu analizatorów podano poniżej. Wyniki uzyskane w poszczególnych laboratoriach mogą się różnić. 2/4 2012-01, V 6 Polski 05112761001V6 CRPL3 Tina-quant C-Reactive Protein Gen.3 Precyzja Precyzję oznaczono w oparciu o surowice ludzkie i próbki kontrolne zgodnie z przyjętym protokołem wewnętrznym przy powtarzalności* (n = 21) i precyzji pośredniej** (3 próbki w serii, 1 seria dziennie, 21 dni). Uzyskano następujące wyniki: Powtarzalność* Próbka Kontrola Poziom 1 Kontrola Poziom 2 Surowica ludzka 1 Surowica ludzka 2 Surowica ludzka 3 Precyzja pośrednia** Wart. śr. mg/L OS mg/L WZ % Wart. śr. mg/L OS mg/L WZ % 3.6 0.03 0.8 3.1 0.08 2.7 42.2 0.26 0.6 41.4 0.86 2.1 0.9 0.03 4.0 0.5 0.03 6.2 1.6 0.02 1.0 1.5 0.05 3.3 18.4 0.09 0.5 39.1 0.73 1.9 * powtarzalność = precyzja w serii ** precyzja pośrednia = precyzja całkowita/precyzja pomiędzy seriami / precyzja pomiędzy dniami Porównanie metod W wyniku porównania stężeń CRP za pomocą zestawu Roche Tina-quant C–Reactive Protein Gen. 3 w analizatorze Roche/Hitachi 917 (y) z wynikami uzyskanymi za pomocą Roche Tina-quant CRP (Latex) w analizatorze Roche/Hitachi 917 (x) uzyskano następującą korelację w surowicy ludzkiej (mg/L): Regresja liniowa Passing/Bablok17 y = 1.02x – 0.0003 y = 1.03x – 0.504 τ = 0.995 r = 0.9998 Liczba oznaczanych próbek: 67 Stężenia próbek mieściły się w granicach pomiędzy 0.22 i 197 mg/L (2.1-1875 nmol/L). 10. Eda S, Kaufmann J, Roos W, et al. Development of a new microparticle-enhanced turbidimetric assay for C-reactive protein with superior features in analytical sensitivity and dynamic range. J Clin Lab Anal 1998;12:137-144. 11. Use of Anticoagulants in Diagnostic Laboratory Investigations. WHO Publication WHO/DIL/LAB/99.1. Rev. 2. Jan. 2002. 12. Baudner S, Bienvenu J, Blirup-Jensen S, et al. The certification of a matrix reference material for immunochemical measurement of 14 human serum proteins, CRM470, Report EUR 15243 EN, 1993:1-186. 13. Glick MR, Ryder KW, Jackson SA. Graphical comparisons of interferences in clinical chemistry instrumentation. Clin Chem 1986;32:470-475. 14. Breuer J. Report on the Symposium “Drug effects in Clinical Chemistry Methods”, Eur J Clin Chem Clin Biochem 1996;34:385-386. 15. Sonntag O, Scholer A. Drug interference in clinical chemistry: recommendation of drugs and their concentrations to be used in drug interference studies. Ann Clin Biochem 2001: 38:376-385. 16. Dati F, Schumann G, Thomas L, et al. Consensus of a group of professional societies and diagnostic companies on guidelines for interim reference ranges for 14 proteins in serum based on the standardization against the IFCC/BCR/CAP reference material (CRM 470). Eur J Clin Chem Clin Biochem 1996;34:517-520. 17. Passing H, Bablok W, Bender R, et al. A general regression procedure for method transformation. J Clin Chem Clin Biochem 1988 Nov;26(11):783-790. Ustawienia analizatora Dla użytkowników w USA: W celu uzyskania dodatkowych informacji należy odnieść się do ulotki produktowej i instrukcji "Programowanie Specjalnego Cyklu Mycia" (Special Wash Programming) - dostępnej w internecie na stronie MyLabOnline. Analizatory Roche/Hitachi MODULAR: Dane aplikacyjne należy wprowadzić za pomocą kodów kreskowych. W wyniku porównania stężeń CRP za pomocą zestawu Roche Tina-quant C-Reactive Protein Gen. 3 w analizatorze Roche/Hitachi 917 (y) z wynikami uzyskanymi za pomocą Roche CRPL2 w analizatorze COBAS INTEGRA 800 (x) uzyskano następującą korelację w surowicy ludzkiej (mg/L): Regresja liniowa Passing/Bablok17 y = 0.993x – 0.282 y = 0.992x + 0.034 mg/L τ = 0.977 r = 0.9991 Liczba oznaczanych próbek: 68 Stężenia próbek mieściły się w granicach pomiędzy 0.79 i 184 mg/L (7.5-1750 nmol/L). Literatura 1. Greiling H, Gressner AM, eds. Lehrbuch der Klinischen Chemie und Pathobiochemie, 3rd ed. Stuttgart/New York: Schattauer, 1995:234-236. 2. Thomas L, Labor und Diagnose, 7. Auflage, TH-Books Verlagsgesellschaft mbH, Frankfurt/Main, 2008:1010-1021. 3. Burtis CA, Ashwood ER, eds. Tietz Fundamentals of Clinical Chemistry, 5th ed., W.B. Saunders Company, Philadelphia, 2001:332-333. 4. Thomas L, Messenger M. Pathobiochemie und Labordiagnostik der Entzündung. Lab med 1993;17:179-194. 5. Young B, Gleeson M, Cripps AW. C-reactive protein: A critical review. Pathology 1991;23:118-124. 6. Wasunna A, Whitelaw A, Gallimore R, et al. C-reactive protein and bacterial infection in preterm infants. Eur J Pediatr 1990;149:424-427. 7. Vergis N. Should CRP be used as a marker of infection in patients with liver cirrhosis? Clin Lab Int 2007; 6:12-13. 8. Mackenzie I, Woodhouse J. C-reactive protein concentrations during bacteraemia: a comparison between patients with and without liver dysfunction. Intensive Care Medicine 2006; 32:1344-1351. 9. Price CP, Trull AK, Berry D, et al. Development and validation of a particle-enhanced turbidimetric immunoassay for C-reactive protein. J Immunol Methods 1987;99:205-211. 2012-01, V 6 Polski 3/4 Roche/Hitachi CRPL3 Tina-quant C-Reactive Protein Gen.3 Analizator Roche/Hitachi 902 Nr 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 <Chemistry> Test Name Assay Code (Mthd) Assay Code (2. Test) Reaction Time Assay Point 1 Assay Point 2 Assay Point 3 Assay Point 4 Wavelength (SUB) Wavelength (MAIN) Sample Volume R1 Volume R1 Pos. R1 Bottle Size R2 Volume R2 Pos. R2 Bottle Size R3 Volume R3 Pos. R3 Bottle Size Calib. Type (Type) Calib. Type (Wght) Calib. Conc. 1 Calib. Pos. 1 Calib. Conc. 2 Calib. Pos. 2 Calib. Conc. 3 Calib. Pos. 3 Calib. Conc. 4 Calib. Pos. 4 Calib. Conc. 5 Calib. Pos. 5 Calib. Conc. 6 Calib. Pos. 6 S1 ABS K Factor K2 Factor K3 Factor K4 Factor K5 Factor A Factor B Factor C Factor SD Limit Duplicate Limit Sens. Limit S1 Abs. Limit (L) S1 Abs. Limit (H) Abs. Limit Abs. Limit (D/I) Prozone Limit Proz. Limit (Upp/Low) Prozone (Endpoint) Expect. Value (L) Expect. Value (H) Instr. Fact. (a) Instr. Fact. (b) Key setting CRPL3 2 Point End 0 10 20 29 21 23 800 570 3.0 250 ..... Small 0 0 Small 120 ..... Small Spline 0 0.00 ..... ..... ..... ..... ..... ..... ..... ..... ..... ..... ..... 0 0 1000 1000 1000 1000 0 0 0 999 100 5050 -32000 32000 32000 Increase 63 D 29 ..... ..... 1.0 0.0 ..... W celu uzyskania dalszych informacji należy zapoznać się z dokumentacją dla danego analizatora; instrukcją obsługi, ulotką aplikacyjną, informacją o produkcie lub ulotkami produktowymi dołączonymi do opakowań. W niniejszej ulotce metodycznej jako separatora dziesiętnego oddzielającego w liczbach dziesiętnych jednostki od ułamków używany jest zawsze punkt (okres/stop). Separatorów oddzielających tysiące nie używa się. Istotne dodatki oraz zmiany zostały oznaczone na marginesie. © 2011, Roche Diagnostics Roche Diagnostics GmbH, Sandhofer Strasse 116, D-68305 Mannheim www.roche.com ..... Dane wprowadzane przez operatora Roche/Hitachi 4/4 2012-01, V 6 Polski