Oznaczanie zawartości emitowanych związków
Transkrypt
Oznaczanie zawartości emitowanych związków
!"#$!#"%& !#'#()*+$% &,%)*'#"-$. !'%/!01' *(2#"%$!"-$.333 151 Gra¿yna KAMIÑSKA-BACH Instytut In¿ynierii Materia³ów Polimerowych i Barwników w Toruniu Oddzia³ Zamiejscowy Farb i Tworzyw w Gliwicach, ul. Chorzowska 50 A, 44-101 Gliwice Zak³ad Badawczo-Analityczny, Laboratorium Akredytowane tel.: (32) 231-90-41, fax: (32) 231-26-74, e-mail: [email protected] Oznaczanie zawartoœci emitowanych zwi¹zków organicznych organicznych...– badania miêdzylaboratoryjne z OFI/AUSTRIA W artykule przybli¿ono metodê oznaczania zawartoœci emitowanych zwi¹zków organicznych technik¹ ekwiwalentu acetonowego. Producenci detali samochodowych z tworzyw polimerowych stosowanych w przedzia³ach poasa¿erskich pojazdów oraz w baga¿nikach, zobligowani s¹ do oznaczania miêdzy innymi zawartoœci emitowanych zwi¹zków organicznych. Oznaczanie zawartoœci tych zwi¹zków metod¹ ekwiwalentu acetonowego polega na wykonaniu chromatogramów próbki badanej i obliczeniu zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych w przeliczeniu na µg C. W artykule przedstawiono badania podjête w gliwickim Oddziale Instytutu In¿ynierii Materia³ów Polimerowych i Barwników w ramach tzw. „badañ miêdzylaboratoryjnych” z Instytutem OFI w Austrii. Determination of contents of emitted organic compounds – inter-laboratory comparison testing with OFI/Austria. The method of determination of contents of emitted organic compounds by acetone equivalent technique was presented in the article. Producers of vehicle plastic details used for compartments of passenger vehicles and for (luggage) boots are obliged to determine the contents of emitted organic compounds. Determination of contents of these compounds by acetone equivalent method relies on making of chromatograms of tested sample and estimation of contents of emitted organic compounds calculating on µg C. Tests performed in Paint and Plastics Department of the Institute for Engineering of Polymers Materials and Dyes in the frame of so called “inter-laboratory comparison testing ”with the OFI Institute from Austria were presented in this article. WSTÊP — wartoœæ foggingu oznaczana wg PV 3015 – G Producenci detali samochodowych z tworzyw polimerowych stosowanych w przedzia³ach poasa¿erskich pojazdów oraz w baga¿nikach, zobligowani s¹ miêdzy innymi do oznaczania zawartoœci emitowanych zwi¹zków organicznych. Ze wzglêdów zdrowotnych zawartoœæ ta nie powinna przekraczaæ dopuszczalnych limitów. Ka¿dy z koncernów motoryzacyjnych dysponuje w³asnymi dokumentami normatywnymi zawieraj¹cymi kryteria dopuszczenia do stosowania materia³ów i komponentów maj¹cych kontakt z powietrzem wewn¹trz pojazdów. Na przyk³ad wg normy Volkswagen AG VW 501 80:2000 dopuszczane do stosowania s¹ materia³y spe³niaj¹ce nastêpuj¹ce wymagania: — zawartoœci emitowanych zwi¹zków orga- 2 mg nicznych oznaczana wg PV 3341 – EG 50 µg C/g — badanie zapachu wed³ug PV 3900 – stopieñ 3 — emisja formaldehydu oznaczana wg PV 3925 – 10 mg/kg OPIS METODYKI BADAÑ Koordynator badañ miêdzylaboratoryjnych (OFI Technologie & Innovation GmbH w Wiedniu) wskaza³ dwa równorzêdne standardy, wed³ug których wykonuje siê oznaczania zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych: — VDA 277:1995 (wersja niemieckojêzyczna) Przetwórstwo Tworzyw 4 (lipiec – sierpieñ) 2009 !"#$!#"%& !#'#()*+$% &,%)*'#"-$. !'%/!01' *(2#"%$!"-$.333 152 — VW Audi PV 3341 (wersja angielskojê- zyczna) W niniejszej pracy zawartoœæ emitowanych sk³adników organicznych oznaczano zgodnie z metodyk¹ badañ opisan¹ w VW Audi PV 3341. Oznaczanie zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych metod¹ ekwiwalentu acetonowego polega na wykonaniu chromatogramów badanej próbki i obliczeniu zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych w przeliczeniu na µg C, na podstawie wyznaczonej krzywej kalibracji acetonu. Zasada metody Zasada metody polega na pomiarze potencja³u emisyjnego poprzez sumowanie powierzchni wszystkich pików otrzymanych na chromatogramie, wskutek wydzielania siê ró¿nych zwi¹zków z próbki, podczas jej inkubacji w przystawce „headspace” w temperaturze 120oC. Przygotowanie próbek do badañ Próbki wykonane z naturalnych materia³ów jak we³na, bawe³na, drewno, skóra powinny byæ pociête na kawa³ki i suszone przez 24 godziny nad chlorkiem wapnia. Próbki z tworzyw polimerowych nie wymagaj¹ wstêpnego kondycjonowania. Przygotowanie próbek do badañ polega na pociêciu ich na fragmenty o masie 10-25 mg ka¿dy; zwróciæ nale¿y szczególn¹ uwagê na unikniêcie grzania siê próbki w czasie rozdrabniania i nawa¿eniu 1,0 ± 0,001 g do szczelnie zamykanej fiolki pojemnoœci 10 ml stanowi¹cej wyposa¿enie przystawki headspace (nale¿y przygotowaæ co najmniej trzy fiolki). Warunki pracy chromatografu gazowego Wymagane jest zastosowanie chromatografu gazowego wyposa¿onego w detektor p³omieniowo-jonizacyjny (FID) oraz rejestrator umo¿liwiaj¹cy integracjê pól powierzchni otrzymywanych pików. Rozdzia³ emitowa- nych sk³adników oraz substancji wzorcowych nale¿y przeprowadzaæ w kolumnie kapilarnej o œrednicy wewnêtrznej 0,25 mm, gruboœci filmu 0,25 µm i d³ugoœci 30 m, zawieraj¹cej jako fazê stacjonarn¹ 100% glikol polietylenowy w nastêpuj¹cych warunkach pracy: — temperatura kolumny (programowana): 50oC (3 min) – 12oC/min – 200oC (4 min) o — temperatura dozownika: 200 C o — temperatura detektora: 250 C — stosunek podzia³u: oko³o 1:20 — gaz noœny: hel — œrednia szybkoœæ przep³ywu gazu noœnego: 22-27 cm/s Wykonanie oznaczenia Fiolki zawieraj¹ce odpowiednie iloœci badanych próbek (3 szt.) oraz puste fiolki stanowi¹ce tzw. „œlepe” próby (3 szt.) nale¿y inkubowaæ w przystawce headspace w temperaturze 120 ±1 oC w ci¹gu 5 godzin (± 5 min). Po tym czasie nale¿y analizowaæ wszystkie próbki na chromatografie gazowym w warunkach podanych wy¿ej, a nastêpnie zintegrowaæ pola powierzchni uzyskanych pików pochodz¹cych od emitowanych zwi¹zków. Kalibracja W celu iloœciowego oznaczenia zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych wymagane jest przeprowadzenie kalibracji przy zastosowaniu acetonu jako wzorca zewnêtrznego. W tym celu nale¿y przygotowaæ 7 wzorców acetonu w butanolu o stê¿eniu odpowiednio 0,1; 0,5; 1,0; 5,0; 10,0; 50,0; 100,0 g acetonu/l roztworu. Tak przygotowane roztwory nale¿y umieœciæ w szczelnie zamykanych fiolkach pojemnoœci 10 ml w iloœci 2 ± 0,02 µl (po 3 fiolki dla ka¿dego stê¿enia). Po 1 godzinnej inkubacji w przystawce headspace w temperaturze 120±1oC nastêpuje analiza chromatograficzna w warunkach jak dla badanych próbek. Dla ka¿dego roztworu kalibracyjnego oblicza siê powierzchniê piku acetonu, a na podstawie uzyskanych wyników wykreœla krzyw¹ kali- Przetwórstwo Tworzyw 4 (lipiec – sierpieñ) 2009 !"#$!#"%& !#'#()*+$% &,%)*'#"-$. !'%/!01' *(2#"%$!"-$.333 bracji odcinaj¹c na osi rzêdnych powierzchniê piku acetonu, a na osi odciêtych stê¿enie acetonu [mg/ml]. Stosuj¹c metodê regresji liniowej oblicza siê parametry krzywej kalibracji – wspó³czynnik przesuniêcia, nachylenia i korelacji liniowej (wspó³czynnik nachylenia wykorzystuje siê do obliczenia zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych). Ponadto nale¿y spe³niæ wymaganie dotycz¹ce wartoœci wspó³czynnika korelacji liniowej, którego wartoœæ liczbowa powinna byæ wiêksza ni¿ 0,995. Obliczanie zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych Zawartoœæ emitowanych sk³adników organicznych nale¿y obliczyæ wed³ug poni¿szego wzoru: EG $ % ppp # % ppœ " 2 " 0,6204 [µg C/g] a gdzie: !ppp – suma powierzchni pików dla próbki badanej !ppœ – suma powierzchni pików dla „œlepej” próby a – wspó³czynnik nachylenia krzywej kalibracji acetonu 2 – wspó³czynnik przeliczeniowy 0,6204 – wspó³czynnik okreœlaj¹cy %-ow¹ zawartoœæ wêgla a acetonie CZÊŒÆ DOŒWIADCZALNA Oznaczenie przeprowadzono dla dwóch próbek dostarczonych przez koordynatora badañ (Sample A – szare tworzywo imituj¹ce skórê, Sample B – granulat). Zgodnie z wytycznymi koordynatora, próbki analizowano w trzech turach. Ka¿da tura analizy poprzedzona by³a 48-godzinn¹ klimatyzacj¹ próbek w warunkach laboratoryjnych. I tura Próbki po klimatyzacji umieszczono w fiolkach pojemnoœci 10 ml, nawa¿aj¹c oko³o 1 g. Próbkê oznaczon¹ jako ‘Sample B’ nawa¿ono 153 bezpoœrednio, natomiast próbkê oznaczon¹ jako ‘Sample A’, przed nawa¿eniem, pociêto na kawa³ki o masie oko³o 20 mg. Z ka¿dej próbki przygotowano po 3 nawa¿ki (³¹cznie 6 fiolek). Przygotowano równie¿ 3 „œlepe” próby (puste fiolki). Wszystkie 9 fiolek szczelnie zamkniêto i zakapslowano, a nastêpnie umieszczono w przystawce head space i po odpowiednim czasie inkubacji analizowano chromatograficznie w warunkach podanych powy¿ej. Zsumowano odpowiednie powierzchnie pików, uzyskane na chromatogramach próbek do badañ i œlepych prób, stosuj¹c kryteria opisane w normie: — nale¿y braæ pod uwagê piki o powierzchni wiêkszej od 10% powierzchni wzorca acetonowego o stê¿eniu 0,5 mg/ml oraz piki, których wysokoœæ jest 3-krotnie wiêksza od wysokoœci szumów. Powy¿sz¹ procedurê powtórzono dwukrotnie w odstêpach 1-dniowych (II tura i III tura). Poni¿ej, w tabeli 1 zestawiono wielkoœæ nawa¿ek próbek w poszczególnych turach: Tabela 1. Nr tury Sample A Sample B I 1,0022 1,0011 1,0017 0,9922 1,003 0,9972 II 1,0016 0,9946 0,9957 0,9887 1,0141 1,0001 III 0,9998 1,0002 1,0013 0,9981 1,0017 0,9967 Przygotowano równie¿ roztwory kalibracyjne acetonu w butanolu o stê¿eniach przedstawionych w Tabeli 2, odpowiednio: Tabela 2. Nr roztworu kalibracyjnego Stê¿enie otrzymanego roztworu kalibracyjnego II roztwór kalibracyjny 50,040 mg/ml III roztwór kalibracyjny 10,008 mg/ml IV roztwór kalibracyjny 5,004 mg/ml V roztwór kalibracyjny 1,0008 mg/ml VI roztwór kalibracyjny 0,5004 mg/ml Analizê chromatograficzn¹ badanych próbek oraz roztworów kalibracyjnych wykonano Przetwórstwo Tworzyw 4 (lipiec – sierpieñ) 2009 !"#$!#"%& !#'#()*+$% &,%)*'#"-$. !'%/!01' *(2#"%$!"-$.333 154 Tabela 3. Parametr Okreœlone w PV 3341 Zastosowane w pracy rodzaj kolumny DB-Wax, o d³. 30 m, œrednicy wewnêtrznej 0,25 mm, gruboœci filmu 0,25 m DB-Wax, o d³. 30 m, œrednicy wewnêtrznej 0,25 mm, gruboœci filmu 0,25 m program temperaturowy 200 C/50 C (3 min) -12 C/min-200 C (4 min)/250 C 200 C/50 C (3 min) -12 C/min-200 C (4 min)/250 C stosunek podzia³u 1:20 1:20 gaz noœny hel hel 22-27 cm/s 24 cm/s 120 C 120 C czas inkubacji roztworów kalibracyjnych 1h 1h czas inkubacji próbek badanych 5h 5h chromatograf gazowy prêdkoœæ przep³ywu gazu noœnego przystawka head space na chromatografie gazowym firmy ATI UNICAM 610 Series z detektorem p³omieniowo-jonizacyjnym (FID). Rozdzia³ sk³adników przeprowadzono na polarnej kolumnie kapilarnej DB-WAX o d³ugoœci 30 m, œrednicy wewnêtrznej 0.25 mm i gruboœci filmu 0.25 µm. Próbki dozowano do chromatografu przy u¿yciu przystawki do analizowania par znad próbki DANI HSS 86.50. Powy¿ej zestawiono warunki analizy chromatograficznej HS/GC roztworów kalibracyjnych i próbek badanych okreœlone w normie i zastosowane w pracy (Tabela 3.). y = 52,994x - 43,624 5000 R 2 = 0,9989 4000 3000 2000 1000 0 0 20 40 60 80 100 stê¿enie acetonu [mg/ml] Zawartoœæ emitowanych sk³adników organicznych UZYSKANE WYNIKI Krzywa kalibracji acetonu (Tabela 5, rys. 1.) Tabela 5. Nr roztworu Stê¿enie kalibra- [mg/ml] cyjnego Rys. 1. Krzywa kalibracji acetonu 6000 powierzchnia piku acetonu temperatura inkubacji Powierzchnia piku acetonu VI 0,5004 22,839 21,677 22,366 V 1,0008 40,436 40,118 40,037 IV 5,004 213,802 193,418 206,675 III 10,008 419,688 518,512 356,877 II 50,04 2583,89 2641,57 I 100,08 5170,84 5378,93 Na podstawie otrzymanych chromatogramów badanych próbek, nawa¿ek próbek oraz parametru nachylenia krzywej kalibracji acetonu obliczono E [µg C/g]. W Tabeli 6 zestawiono uzyskane wyniki. Wyniki te, w formie raportu sporz¹dzonego w arkuszu kalkulacyjnym, przes³ano do koordynatora badañ celem oceny. OMÓWIENIE WYNIKÓW I PODSUMOWANIE Przeprowadzone w ramach testów miêdzylaboratoryjnych badania maj¹ce na celu ozna- Przetwórstwo Tworzyw 4 (lipiec – sierpieñ) 2009 !"#$!#"%& !#'#()*+$% &,%)*'#"-$. !'%/!01' *(2#"%$!"-$.333 155 Tabela 6. I tura Sample A Sample B masa [g] 1,0022 1,0011 1,0017 0,99225 1,003 0,9972 !ppp 520,118 530,49 525,45 76,801 84,341 78,432 !ppœ 0 12,41 12,28 1,81 1,97 1,84 EG [µg C/g] 12,15 II tura masa [g] 1,0016 0,9946 0,9957 0,9887 1,0141 1,0001 !ppp 519,132 497,474 506,625 74,928 87,478 91,366 !ppœ 0 11,71 11,91 1,77 2,01 2,13 EG [µg C/g] 12,13 III tura masa [g] 0,9998 1,0002 1,0013 0,9981 1,0017 0,9967 !ppp 519,238 507,145 526,475 82,438 85,411 75,143 !ppœ 0 11,87 12,31 1,93 1,99 1,76 EG [µg C/g] 12,16 czenie zawartoœci emitowanych sk³adników organicznych zosta³y ocenione jako bardzo dobre (próbka B) oraz satysfakcjonuj¹ce (próbka A). Badania wykonane w ramach tej pracy stanowi³y jeden ze sposobów ci¹g³ego doskonalenia systemu zarz¹dzania, jakiemu podlega Zak³ad Badawczo-Analityczny w zwi¹zku z obowi¹zuj¹cym Systemem Jakoœci zgodnym z PN-EN ISO/IEC 17025. Uzyskana pozytywna ocena wyników oznaczeñ umo¿liwi³a rozszerzenie zakresu oferowanych badañ w Zak³adzie Badawczo-Analitycznym. Literatura 1. 2. 3. 4. 5. VW 501 80:2000 Components in passenger compartment. Emission behavior VDA 277:1995 Nichtmetallische werkstoffe der Kfz-innenausstattung. Bestimmung der emission organisccher verbindungen PV 3341 Non-metallic materials in automotive interior trim. Determination of emission of organic compounds Z. Witkiewicz Podstawy chromatografii, WNT, W-wa, 1995 B. Kolb Applied headspace gas chromatography, Heyden, London, 1984 Przetwórstwo Tworzyw 4 (lipiec – sierpieñ) 2009