2. Iwona Markowska-Daniel - Państwowy Instytut Weterynaryjny
Transkrypt
2. Iwona Markowska-Daniel - Państwowy Instytut Weterynaryjny
Afrykański pomór świń diagnostyka laboratoryjna znaczenie, możliwości i ograniczenia Prof. dr hab. Iwona Markowska-Daniel Krajowe Laboratorium Referencyjne w zakresie ASF Zakład Chorób Świń PIWet - PIB Puławy, 26.03.2014 r. Cel postępowania diagnostycznego Postawienie rozpoznania (ustalenie przyczyny problemu zdrowotnego) BADANIE LABORATORYJNE PODSTAWA DIAGNOZY I ZWALCZANIA ASF IZOLACJA WIRUSA I SEKWENCJONOWANIE Dwa wymiary badań MIEJSCE CZAS 2010-2011 2009 2011 20082011 2009- 2010 2010 2008 2008 Skąd zawleczono ASFV? Kiedy doszło do zakażenia? Czy i dokąd przeniesiono? Jak długo trwa? Epidemiologia molekularna Badania wirusologiczne i serologiczne Czynniki determinujące postawienie prawidłowego rozpoznania: Wywiad (zebranie właściwych informacji); Badanie kliniczne (bardzo istotny element wczesnego rozpoznania termometr - ważne narzędzie); Badanie sekcyjne (sekcjonować kilka zw., najpierw padłe); Badanie laboratoryjne zaczyna się już w chlewni !!! Uwaga na dobór i pobór próbek dobór próbek jest zwykle nieodwracalny WŁAŚCIWE POBRANIE I PRZESŁANIE MATERIAŁU WARUNKIEM SUKCESU W BADANIU LABORATORYJNYM Czynniki determinujące postawienie prawidłowego rozpoznania: Pobranie właściwych próbek do badań: (wartościowych epidemiologicznie, reprezentatywnych) rodzaj, liczba, czas od zakażenia do próbkobrania. Jaki materiał należy pobrać ? 3-5 ml Materiał - przyżyciowo z dodatkiem EDTA, gdy chodzi o wykrycie obecności wirusa we krwi (okres wiremii) (dodatek heparyny utrudnia reakcję PCR) bez dodatku EDTA, gdy chodzi o wykrycie obecności swoistych dla ASFV przeciwciał. Materiał - pośmiertnie śledzionę, migdałki, nerki, węzły chłonne, w przypadku nietypowego przebiegu choroby: płuca lub szpik kostny. Próbki należy pobrać od zwierząt poddanych eutanazji (bezkrwawo) w szczytowej fazie choroby. Przykładowe błędy: - przesyłanie: całych zwłok zwierząt; całej kończyny; tylko kości od dzików odstrzelonych; tkanek + kości; niewłaściwych tkanek – tzn. wyłącznie wątroby, żołądka, jelit, serca; krtani/ślinianek/węzłów chłonnych ZAMIAST migdałków Próbki powinny być tak zapakowane, aby wykluczyć ich wylanie strata materiału do badań; nieczytelność numerów próbek, zniszczenie pisma przewodniego jeden narząd/jeden pojemnik ! Nie przesyłać krwi w tzw. igło-probówkach ! Przykładowe błędy: - przesyłanie: krwi w słoikach; krwi w niezakręcanych probówkach; wielu próbek w 1 opakowaniu zbiorczym; Protokół pobrania próbek przykładowe błędy: brak zgodności z zawartością przesyłki; brak/błędy w identyfikacji próbek; brak wyszczególnienia narządów (autoliza) – trudność w identyfikacji. CZAS !! Pakowanie materiału Transport przykładowe błędy: zamrażanie próbek krwi prowadzi do hemolizy - wpływ na jakość próbki = wynik badania; przesyłanie próbek w piątek, popołudniu, zwłaszcza od dzików odstrzelonych. Procedura POBIERANIA I PRZESYŁANIA PRÓBEK DO LABORATORYJNYCH BADAŃ DIAGNOSTYCZNYCH W KIERUNKU AFRYKAŃSKIEGO POMORU ŚWIŃ OPRACOWAŁ(A): SPRAWDZIŁ(A): strona: 1 stron: 9 Edycja 1 Wersja 1 Obowiązuje od dnia: ZATWIERDZIŁ(A): Prof. dr hab. Iwona Markowska-Daniel Prof. dr hab. Zygmunt Pejsak Dr Janusz związek Data i podpis Data i podpis Data i podpis Niniejszy dokument został opracowany przez Krajowe Laboratorium Referencyjne ds. Afrykańskiego pomoru świń Dokument jest przeznaczony dla Inspekcji Weterynaryjnej Najważniejsze fakty istotne w diagnostyce ASF Brak szczepionek obecność przeciwciał = zakażenie Brak przeciwciał neutralizujących wirusa długotrwała wiremia (od 2 DPZ do końca życia) Wczesna odpowiedź humoralna (obecność IgM od 4 DPZ, IgG od 8-10 DPZ) Diagnostyka laboratoryjna Nie jest możliwe właściwe wykorzystywanie laboratorium bez znajomości testów diagnostycznych Diagnostyka laboratoryjna Brak idealnej metody (żadna nie gwarantuje 100% czułości i swoistości) różne możliwości i ograniczenia (czułość, specyficzność, szybkość, wydajność – skala, łatwość wykonania, interpretacja wyniku, koszt); różne zastosowanie (podejrzenie/monitoring; stado/badanie indywidualne) Konieczność stosowania min.2 metod lab. Techniki TECHNIKA LABORATORYJNA Immunofluorescencja (DIF) Chromatografia („pen-side”) ELISA IB IPT IIF PCR sekwencjonowanie bezpośrednie ELISA antygenowa pośrednie Izolacja i identyfikacja CO WYKRYWAMY? żywe wirusy antygeny (białka) wirusowe Przeciwciała materiał genetyczny (DNA) sekwencję nukleotydów w analizowanym fragmencie genu Izolacja - hodowle komórkowe Identyfikacja - test hemadsorbcji nie wszystkie szczepy HA długi czas badania brak możliwości badań na dużą skalę wymaga doświadczonego „złoty” standard czułość i specyficzność personelu i dobrze wyposażonego laboratorium test indywidualny Czas badania: kilkanaście dni ELISA do wykrywania antygenu szybkość łatwość wykonania duża skala badań/ badanie stada cena niska czułość (wynik + gdy dużo ASFV) konieczność badań potwierdzających Czas badania – kilka godzin Identyfikacja - IF szybkość czułość i specyficzność wykrywanie szczepów nie HA cena subiektywność wyniku wymaga doświadczonego personelu brak możliwości badań na dużą skalę Czas badania – kilka godzin Szybkie „pen-side” testy (chromatografia) szybkość łatwość wykonania duża skala badań/ badanie stada konieczność badań potwierdzających Czas badania – kilka minut Badania serologiczne Bardzo duże znaczenie (brak szczepionki, wczesna serokonwersja) Pozwalają na: ustalenie (przybliżone) statusu immunologicznego (stwierdzenie obecności Ig wskazuje na kontakt z wirusem); ustalenie (przybliżone) czasu zakażenia, monitorowanie szerzenia się choroby. Surowice: świeże, schłodzone, zamrożone Krew - wirowanie ELISA Czas trwania badania ~ 3 - 4 godz. Ok. 5% wyników fałszywie dodatnich Zła jakość próbek surowic (krwi) od dzików wyniki niespecyficzne W 2014 r. : 83 fałszywie +/ +/- + +/- + +/- +/- 0,5501-0,3501 X=0,55415 Badania próbek w 2 powtórzeniach! ??? 1. 2. 3. 4. 5. ??? P/13/10002/6 P/13/10003/13 P/13/10003/18 P/13/10173/2 P/13/10173/3 X ELISA najbardziej powszechne zastosowanie szybkość łatwość wykonania duża skala badań/ badanie stada cena ograniczona specyficzność (dziki) konieczność badań potwierdzających Test immunoblotting (IB) Czas trwania badania ~ 3 - 4 godz. IB wysoka czułość i specyficzność szybkość łatwość wykonania brak zestawów komercyjnych mała skala badania subiektywizm w ocenie wyniku (doświadczenie w interpretacji) Test immunoperoksydazowy (IPT) wysoka czułość i specyficzność szybkość łatwość wykonania brak zestawów komercyjnych subiektywizm w ocenie wyniku Czas trwania badania – kilka godz. Rekomendacja: PCR i genotypowanie Izolacja DNA Amplifikacja DNA (PCR) Czas trwania badania ~ 3 - 6 godz. (zależnie od rodzaju próbki - krew, tkanki) Brak zestawów komercyjnych dopuszczonych do stosowania Amplifikacja DNA (RT PCR) Fernandez-Pinero J. et al. 2012; FastStart Universal Probe Master Kit (Roche) King DP et al. 2003; (Qiagen) PCR najbardziej powszechne zastosowanie szybkość czułość i specyficzność wykrywa nawet fragmenty genomu przydatność do badania wielu matryc oraz materiału nieświeżego badania na b. dużą skalę czułość laboratorium zanieczyszczone DNA = wyniki fałszywie (+) specyficzność niewłaściwie dobrane startery = wyniki fałszywie (-) Zagrożenia związane z badaniami laboratoryjnymi Krew/surowica materiał potencjalnie wysoce zakaźny; Ryzyko rozwleczenia wirusa wraz z transportem próbek; Ryzyko „ucieczki” wirusa z laboratorium Środki ostrożności Państwowy Instytut Weterynaryjny Państwowy Instytut Badawczy w Puławach www.piwet.pulawy.pl KLR w zakresie ASF 8.02 - 1.03.2011 r. 5 powiatów woj. W-M Gatunek Badanie Świnie liczba próbek + Molekularne (PCR) 12 Serologiczne (ELISA) Ogółem liczba wykonanych badań Dziki wynik wynik - liczba próbek + 0 12 80 0 80 232 0 232 8 0 8 244 0 244 88 0 88 244 0 244 88 0 88 - Ogółem liczba przebadanych zwierząt ∑= 322 1.01. - 31.12.2012 r. Gatunek Badanie Świnie liczba próbek + Molekularne (PCR) 208 Serologiczne (ELISA) Ogółem liczba wykonanych badań Dziki wynik wynik - liczba próbek + 0 208 1282 0 1282 12 0 12 1247 0 1247 220 0 220 2529 0 2529 208 0 208 1282 0 1282 - Ogółem liczba przebadanych zwierząt ∑= 3507 próbek – 1490 zwierząt 1.01.- 31.12.2013 r. Gatunek Świnie Badanie liczba próbek + Molekularne (PCR) 1672 Serologiczne (ELISA) Ogółem liczba wykonanych badań Dziki wynik wynik - liczba próbek + 0 1672 11693 0 11693 191 0 191 824 0 824 1863 0 1863 12517 0 12517 1672 0 1672 11693 0 11693 - Ogółem liczba przebadanych zwierząt ∑= 15821 próbek – 13318 zwierząt Próbki badane testem PCR w 2013 r. 9203 10000 DZIKI 9000 ŚWINIE 8000 7000 6000 5000 4000 3000 144 37 1 3 0 Kość długa 582 Mostek Płuca Węzły chłonne 200 Wątroba 452 401 142 Migdałki Nerka Surowica Krew 481 61 Śledziona 329 276 1000 0 942 857 691 2000 7 ∑= 15821, w tym od 70 padłych dzików 1 1.01. - 23.03.2014 r. Gatunek Świnie Badanie Molekularne Serologiczne liczba próbek Dziki wynik + - 747 0 747 676 0 1423 747 liczba próbek wynik + - 4616 2 4614 676 1419 1 0 1423 6035 0 747 4616 Świniodziki wynik liczba próbek + - 1 0 1 1418 1 0 1 3 6032 2 0 2 2 4614 1 0 1 Ogółem Liczba wykonanych badań Ogółem Liczba przebadanych zwierząt ∑= 11156 próbek – 5363 zwierzęta Od 14.02 zbadano 708 świń i 1665 dzików - wszystkie ujemne Próbki badane testem PCR od 1.01 do 23 .03. 2014 r. 3769 4000 DZIKI 3500 ŚWINIE 3000 ŚWINIODZIKI 2500 2000 1500 730 714 655 585 1000 1 500 52 1 0 9 0 6 0 135 5 1 198 6 0 8 0 7 0 0 74 4 0 Kość Mostek Płuco Węzły chłonne Migdałki Śledziona Nerki Surowica Krew 0 W 2014 r. zbadano 11.156 próbek, w tym od 267 padłych dzików (35 z woj. podlaskiego) Pierwszy przypadek ASF w Polsce (PCR+) Drugi przypadek ASF w Polsce (PCR+) Genotyp II 100% homologii z ASFV z Litwy i Białorusi 17.02.2014 r. Badania serologiczne 5 świń z gospodarstwa w Grzybowszczyźnie Wszystkie wyniki ujemne 23.02.2014 r. Badanie serologiczne 623 świń ze 118 gospodarstw z 57 miejscowości z woj. podlaskiego Wszystkie wyniki ujemne Liczba zwierząt przebadanych w poszczególnych woj. w latach 2011-2014 (stan na dzień 23.03.2014 r.) Województwa 2011 świnie dziki 2012 świnie 2013 dziki Dolnośląskie Kujawsko-Pomorskie 189 Lubelskie 179 świnie dziki 1 1001 49 287 737 3241 Lubuskie 15 Łódzkie Małopolskie 4 Mazowieckie 1 160 2014 (1.01-23.03) świnie dziki dziki 1 1063 11 56 60 343 70 2027 996 18 87 65 86 47 2 29 5447 15 152 137 162 1082 312 1 Podkarpackie 2 301 112 897 5 190 119 1388 Podlaskie 8 140 327 1835 640 1350 975 3325 Pomorskie 49 449 64 49 513 Śląskie 15 140 52 15 192 35 18 102 1176 95 355 2016 105 879 122 124 1001 Świętokrzyskie Warmińsko-Mazurskie 244 88 9 657 Wielkopolskie Zachodniopomorskie Razem 19 274 244 88 208 1282 1672 11693 4616 RAZEM = 20 551 ZWIERZĄT 1 53 9 747 świniodziki 372 412 283 Opolskie świnie 62 354 669 świniodziki 2011-2014 283 1 2871 17679 1 www.piwet.pulawy.pl Podsumowanie: Diagnostyka laboratoryjna prowadzona w kompetentnym laboratorium jest podstawą monitorowania sytuacji i zwalczania ASF. Jakość materiału determinuje wiarygodność wyniku badania. Nie ma idealnej metody, dlatego niezbędne jest dysponowanie technikami alternatywnymi. W przyszłości planuje się poszerzenie badań diagnostycznych o nowe matryce (płyn ustny i sok mięśniowy). Obiecującym narzędziem wczesnej diagnostyki ASF są „pen-side” testy. W Europie od zakażenia do rozpoznania choroby w terenie 1-3 m-cy !!! w laboratorium - kilka (naście) godz. Rozpoznanie: w ciągu tygodnia - koszt 2 mln Euro w ciągu 2 tygodni - 22 mln Euro Dziękuję za uwagę