Marcin Dziedzic, Ewa Czukiewska, Janusz Solski Aminy
Transkrypt
Marcin Dziedzic, Ewa Czukiewska, Janusz Solski Aminy
!-).9+!4%#(/,/7% )`:ARYSWAuCIWOuCIBIOCHEMICZNYCHn #!4%#(/,!-).%3 )`4HE/UTLINEOF"IOCHEMISTRY0ROPERITIESn -GRANALITMED-ARCIN$ZIEDZIC ,EKMED%WA#ZUKIEWSKA 0ROFDRHABNFARM*ANUSZ3OLSKI +ATEDRAI:AKAD$IAGNOSTYKI,ABORATORYJNEJ!-W,UBLINIE +IEROWNIK+ATEDRY0ROFDRHABNFARM*ANUSZ3OLSKI Streszczenie Abstract Katecholaminy (KA): dopamina, adrenalina i noradrenalina odgrywają w organizmie człowieka istotną rolę jako neurotransmitery i hormony. Pod względem chemicznym katecholaminy są pochodne beta - fenyloalaniny, zaś substancją wyjściową do ich produkcji jest tyrozyna. Po raz pierwszy szlak biosyntezy amin katecholowych zaprezentował Blaschko. Zsyntetyzowane katecholaminy są magazynowane w ziarnistościach zakończeń nerwowych (pęcherzykach ziarnistych) i komórkach rdzenia nadnerczy. Z tych struktur aminy katecholowe są uwalniane, przy czym na ten proces wpływa wiele czynników w tym gradient błony jonów sodowych. Amminy katecholowe będące neuroprzekaźnikami, metabolizowane są pod wpływem dwóch enzymów: oksydazy monoaminowej (MAO) i tlenowej metylotransferazy katecholowej (COMT). Ponadto są inaktywowane po przez sprzęganie z kwasem glukuronowym i siarkowym. Prawidłowa czynność układu adrenergicznego zależy od równowagi pomiędzy procesami syntezy, uwalniania, wychwytu zwrotnego i unieczynniania katecholamin. Catecholamines (CA) play an important role in the human body as neurotransmitters and hormones. Catecholamines are derivatives of beta - phenylalanine, and tyrosine is an initial substrate for their production in the human organism. Biochemical pathway of synthesis of Catecholamines was proposed by Blachko. Previously synthesized CA are stored in subcellular structures – chromaffin granules. However, despite a general unity that increased neurotransmitter release is an effect of regression of sodium pump. Monoamine oxidase (MAO), and catecholo-O-methyltransferase (COMT) are the main enzyme responsible for degradation of catecholamines. Catecholamines are eliminated as a complex with sulphuric or glucuronic acid. The correct function of adrenergic system depends on balance between synthesis, releasing, uptake, and degradation of catecholamines. Keywords: catecholamines, adrenaline, noradrenaline, dopamine, structure, biosynthesis, degradation of catecholamines, catecholamine biochemistry. Słowo kluczowe: aminy katecholowe, adrenalina, noradrenalina, dopamina, budowa, biosynteza, biodegradacja katecholamin,biochemia amin katecholowych. COPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO )33. &ARMACEUTYCZNY 0RZEGLD.AUKOWY kU¤°°U ¬y R®Głównymi mediatorami układu autonomicznego, które pobudzają układ współczulny są aminy katecholowe: dopamina (DA), (Ryc. 3), adrenalina (A), (Ryc. 1) i noradrenalina (NA), (Ryc.2). Są to związki syntetyzowane w neuronach (zakończenia neuronów współczulnych) i rdzeniu nadnerczy. Z neuronów katecholaminy uwalniane są do szczeliny synaptycznej, gdzie łącząc się z odpowiednimi receptorami uruchamiają szereg złożonych procesów wewnątrz błonowych, pozwalających na wyzwolenie określonych reakcji (1, 2). ¬Aª®} ¥p ¥-qy¬-JRy-qly¬ Pod względem chemicznym katecholaminy są pochodnymi β – fenyloalaniny, zaś substancją wyjściową do ich produkcji jest aminokwas tyrozyna (3). Proces biosyntezy (Ryc. 4). rozpoczyna się od hydroksylacji tyrozyny w pozycji 3 do 3,4 – dihydroksyfenyloalaniny (DOPA) (3). Reakcja ta zachodzi w obrębie mitochondriów i jest katalizowana przez hydroksylazę tyrozyny (TH). Dalszy etap ma miejsce w cytoplazmie, gdzie pod wpływem dekarboksylazy DOPA powstaje dopamina – pierwsza endogenna amina katecholowa (1, 3, 4). Powstała w cytoplazmie DA pobierana jest za pomocą mechanizmu czynnego transportu do wnętrza pęcherzyków ziarnistych, gdzie utleniana jest do NA (druga endogenna amina katecholowa) przy współudziale enzymu beta – hydroksylazy dopaminy (DBH), kwasu askorbinowego i tlenu. W obrębie rdzenia nadnerczy NA ulega metylowaniu do A pod wpływem N – metylotransferazy (1, 3, 5). Rdzeń nadnerczy produkuje 80 % adrenaliny, 20% noradrenaliny i niewielkie ilości dopaminy (3). Szybkość biosyntezy KA jest regulowana bezpośrednio przez aktywność hydroksylazy tyrozynowej (1, 5), a pośrednio przez wiele różnych czynników jak np. prostaglandyny i sterydy nadnerczowe (1, 3). Wysunięto hipotezę, że jednym z czynników regulujących syntezę KA jest stopień pobierania DA do pęcherzyków ziarnistych, w których zachodzi reakcja tworzenia NA przy udziale dopamino – beta – hydroksylazy (1, 4). Ważnym procesem regulującym powstawanie DA, NA, i A jest szybkość zastępowania wcześniej zsyntetyzowanych cząsteczek przez nowe drobiny, tzw. obrót amin biogennych (1). #ª-qyl-ylR ¬A¤ª®} ¥p ¥-qy¬y|-JRy-qly¬ ¬A¡ª®} ¥p ¥-qy¬J|-uly¬ Po raz pierwszy szlak biosyntezy amin katecholowych zaprezentował Blaschko (3) w 1973 r. Model syntezy po pewnych uzupełnieniach jest dzisiaj powszechnie przyjęty (Ryc. 4). &ARMACEUTYCZNY 0RZEGLD.AUKOWY Zsyntetyzowane katecholaminy są magazynowane w ziarnistościach zakończeń nerwowych (pęcherzykach ziarnistych), komórkach rdzenia nadnerczy. W obrębie ziarnistości subkomórkowych rdzenia nadnerczy katecholaminy wiązane są przez substancje o charakterze kwaśnym takie jak: adenozynotrifosforan (ATP), kwas rybonukleinowy (RNA) oraz chromogranina (1). Na jedną cząsteczkę ATP przypadają w tworzonym związku kompleksowym 4 cząsteczki KA (1) gdyż ATP posiada 4 grupy o ujemnych ładunkach. Te połączenia kompleksowe chronią magazynowane aminy przed przypadkowym uwalnianiem z ziarnistości a także rozkładem enzymatycznym (1, 6). W warunkach prawidłowych około 2/3 całkowitej puli amin katecholowych jest magazynowana w ziarnistościach. Pozostała część znajduje się w cytoplazmie (6). Endogenne KA w komórkach rdzenia nadnerczy występują w dwóch głównych pulach, tzn. puli szybkiej uwalnianej przez bodziec neuronalny czy też pod wpływem związków takich jak tyramina (1, 3) i tzw. puli wolnej (zapasowej) o 24 godzinnym okresie półtrwania, uwalnianej przez przekaźniki chemiczne o działaniu pośrednim (1). Obserwuje się także pewien rytm dobowy uwalniania amin katecholowych ze wzrostem w trakcie dnia (1,6). W odpowiedzi na stymulację przed zwojową pochodzącą z ośrodkowego układu nerwowego katecholaminy są uwalniane na drodze egzocytozy z miejsc magazynowania (7). Podczas gdy adrenalina z rdzenia nadnerczy przechodzi bezpośrednio do krwiobiegu, gdzie penetruje do wnętrza komóCOPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO )33. kU¤°°U ¬A`7l|¬y R®--ulyp- RAi|q|ª¬Ai rek krwi (1, 6), noradrenalina z zakończeń nerwowych jest uwalniana do szczeliny synaptycznej, skąd jej znaczna część jest wychwytywana zwrotnie do zakończeń presynaptycznych i komórek pozaneuronalnych i tam ponownie podlega magazynowaniu lub biodegradacji (1, 13). W procesie tym następuje rozerwanie lipoproteinowej struktury błony komórkowej i otwarcie wnętrza ziarnistości do przestrzeni poza komórkowej. Proces ten zachodzi wskutek aktywacji fosfolipazy w miejscu zetknięcia się ziarnistości z wewnętrzną powierzchnią błony komórkowej przez zwiększone wnikanie Ca++ do aksoplazmy pod wpływem impulsu nerwowego (1, 7). Ilość uwolnionej NA jest regulowana przez stężenia już uwolnionej NA, która działa na presynaptyczne receptory α2 (hamowanie) i β2 (pobudzanie wydzielania NA), (1,9, 10). W wyniku pobudzenia efektora przez NA dochodzi do zwiększonego uwalniania prostaglandyny E, która hamuje dalsze uwalnianie NA, natomiast prostaglandyna F zwiększa uwalnianie (1). Istotny wpływ na uwalnianie neuroprzekaźników adrenergicznych , a tym samym na aktywność układu sympatycznego mają również wszelkie zmiany dotyczące rozmieszczenia jonów (w tym sodu) po obu stronach błony komórkowej, jak również zmiany mechanizmów utrzymujących błonowy gradient (ATP-azy Na-K), (1, 13). W roku 1963 Birks (14) po raz pierwszy zauważył wpływ hamowania pompy sodowej na uwalnianie acetylocholiny. Trzy główne koncepcje zależności uwalniania amin katecholowych od aktywności pompy sodowo-potasowej można sprowadzić do: COPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO )33. - Banks (15) sugeruje, że hamowanie ATP-azy NA-K prowadzi do depolaryzacji neuronu i uwalniania neurotransmitera przez egzocytozę wynikającą ze wzrostu poziomu Ca++ we wnętrzu komórki. Stężenia Ca++ wewnątrz komórki wzrasta na drodze mobilizacji zapasów wewnątrzkomórkowych (13), wymiany zewnątrzkomórkowego Ca++ za wewnątrzkomórkowy Na+ lub zachamowanie wpływu Ca++ z komórki. - Reiteri i Levi (16) zaproponowali, że wzrost stężenia wewnątrzkomórkowego Na+ pod wpływem hamowania pompy sodowej, powoduje niepęcherzykowy wypływ transmitera przez odwrócenie sodowo zależnych przenośników w błonie komórkowej (13). - Vizi i wsp. (17) dowiedli, że hamowanie ATP-azy Na-K w bliżej nieznany sposób daje bezpośrednie uwalnianie transmitera przez niezidentyfikowane kanały błony, niezależne od zmian w stężeniu jonów wewnątrzkomórkowych (13). Powszechnie przyjętym modelem uwalniania neurotransmiterów jest proces egzocytozy uzależniony od napływu Ca++ z przestrzeni zewnątrzkomórkowej do wewnątrzkomórkowej (1). Ewentualny brak wpływu zewnątrzkomórkowego Ca++ sugerowany przez tych autorów nie jest jednak wystarczającym dowodem do twierdzenia, że uwalnianie neurotransmitera nie jest oparte na egzocytozie, ponieważ uwalnianie pęcherzykowe może wynikać z mobilizacji zapasów wapnia wewnątrzkomórkowego lub spadku wypływu Ca++ z komórki (1, 13). W odróżnieniu od egzocytozy uzależnionej od jonów wapniowych coraz częściej przyjmuje się możliwość uwalniania neurotransmiterów z neuronów poprzez odwrócenie przenośników plazmowo-błonowych wskutek wzrostu wewnątrzkomórkowego poziomu jonów sodowych a nawet odwrócenia gradientu Na+ (13). Ma to miejsce podczas hamowania ATP-azy NA-K. W ten sposób uwalniana może być NA lub DA (1, 13). Ponadto w synapsach mózgowych stwierdzono niezależne od wapnia uwalnianie acetylocholiny i serotoniny (1, 13). Należy zatem podkreślić, że wszystkie zmiany dotyczące rozmieszczenia jonów (szczególnie Na+ i Ca++) po obu stronach błony komórkowej jak również zmiany mechanizmów utrzymujących błonowy gradient stężeń (ATP-aza Na-K) mają istotny wpływ na uwalnianie neuroprzekażników ad- &ARMACEUTYCZNY 0RZEGLD.AUKOWY kU¤°°U renergicznych, a tym samym na aktywność układu sympatycznego (13). Badania na pęcherzykach chromochłonnych i synaptosomach dowodzą, iż gromadzenie neurotransmitera w tych organellach jest uzależnione od jonowego gradientu transbłonowego, który wpływa na ilościowe uwalnianie noradrenaliny (13). W warunkach fizjologicznych impuls nerwowy uwalnia neuroprzekaźniki z zakończenia presynaptycznego do szczeliny synaptycznej. Ilość uwalnianego transmitera przypadająca na jeden impuls nerwowy podlega pewnej regulacji i jak stwierdzono (18) dieta nisko sodowa (DNS) zmniejsza tę ilość, natomiast dieta wysoko sodowa (DWS) zwiększa, dlatego też magazynowanie transmitera we włóknach adrenergicznych jest podwyższone przy DNS a obniżone przez DWS (13, 18). Zatem DNS i DWS wpływają na funkcję adrenergiczną w sposób przeciwny. Efektem zmian w uwalnianiu neurotransmitera wywołanych modyfikacją zawartości sodu w diecie w ciągu długiego okresu mogą być wpływy na funkcję układu sercowo – naczyniowego (9, 11, 13). Ewidentne zmiany w wypełnianiu łożyska sercowo-naczyniowego pojawiają się dopiero przy ekstremalnych zmianach poboru lub wydalania sodu, dzięki ogromnym zdolnościom kontrolnym mechanizmów neurohormonalnych i ich wpływu na wydalanie nerkowe (11, 13, 18). Gdyby jednak podobne uzależnienia od diety sodowej występowało w centralnych neuronach monoaminergicznych, konsekwencje funkcjonalne mogłyby być daleko idące. Przypuszczenie to zostało potwierdzone przez Ely`ego i Weigand`a (19), którzy stwierdzili, że 10 – cio tygodniowa DWS u szczurów z nadciśnieniem indukuje spadek poziomu NA w niektórych częściach mózgu w wyniku wzrostu uwalniania i zmniejszonego magazynowania (19). Zwiększone magazynowanie NA podczas DNS wyraża się wzrostem jej poziomów w tkankach unerwionych noradrenergicznie (13, 18). I tak u szczurów karmionych DNS stwierdzono wyraźny wzrost poziomu NA w sercu, nerkach i ścianach krezki (13). Z drugiej strony w badaniach klinicznych opisano wzrost KA w osoczu i moczu (9, 11, 13) u ludzi otrzymujących DNS. Ten wyraźnie podwyższony poziom osoczowych KA jest skutkiem wzrostu ich zawartości w sercu, naczyniach i nerkach (9, 11, 12, 13). Należy również pamiętać, że niektóre czynniki endogenne takie jak bradykinina czy angiotensyna II stymulują uwalnianie KA z rdzenia nadnerczy przez bezpośredni wpływ na komórki chromochłonne, a niski pobór sodu związany jest ze wzrostem osoczowej aktywności reniny i wskutek tego powiększaniem poziomu angiotensyny II (9, 13). Nilsson i wsp. (18) przeprowadzili całodobową analizę poboru oraz wydalania wody i sodu u szczurów karmionych DNS i DWS. Otrzymane przez tych autorów wyniki dowodzą, że różnice w poziomie sodu i ilości wody w obu badanych grupach zwierząt przez większość doby były nieznaczne dzięki regulacyjnej funkcji nerek. Nie jest wykluczone, że mogą one być sygnałem stymulującym neurony adrenergiczne do dopasowania ilości uwalnianych neurotransmiterów (12, 13). Podczas wysokiego poboru sodu ma miejsce uwalnianie czynnika natriuretycznego, głównie przez stymulację sercowo – płucnych receptorów objętości &ARMACEUTYCZNY 0RZEGLD.AUKOWY (11, 12). Ponadto wzrost napływu sodu powoduje szybki pobór wody poprzez stymulację podwzgórzowych osmoreceptorów (11, 12). Ta droga aktywności zarówno receptorów podwzgórzowych jak i sercowo-płucnych moduluje aktywność adrenergiczną (9, 11, 12). Niski pobór sodu z kolei wzmaga uwalnianie aldosteronu, który stymuluje aktywność ATPazy oraz syntezę makrocząsteczek pompy błonowej, aktywność której hiperpolaryzuje i stabilizuje błony komórkowe. Długookresowe troficzne efekty hormonalne w odpowiedzi na DNS mogą wywierać wpływ na neurony adrenergiczne poprzez stałe zmniejszanie ich pobudliwości, zmniejszenie ilości uwalnianego transmitera na jeden impuls nerwowy oraz wzrost jego magazynowania (13). Należy pamiętać, że niektóre neuronalne i hormonalne substancje mogą regulować ilość uwalnianej NA poprzez działanie na receptory presynaptyczne. Takie działanie ma np. angiotensyna, zatem takie czynniki mogą działać jako dodatkowe modulatory uwalniania transmitera in vivo w zakresie jakim podlegają wpływom zmian poboru sodu (11, 12, 13). R -7|ql®u Aminy katecholowe będące neuroprzekaźnikami, metabolizowane są pod wpływem dwóch enzymów: oksydazy monoaminowej (MAO) i tlenowej metylotransferazy katecholowej (COMT) (1, 2, 20). Ryc. 5 Oksydaza monoaminowa jest oksydoreduktazą katalizującą deaminację monoamin. Największa jej aktywność występuje w wątrobie, żołądku, nerkach i jelitach. Opisano, co najmniej 2 izoenzymy MAO. Izoenzym MAO-A występujący w tkance nerwowej oraz MAO-B spotykany w tkankach nienerwowych. Dopomina ulega metabolizowaniu pod wpływem obu izoenzymów (1, 21). Połączone działanie MAO i oksydazy aldehydowej na adrenalinę i noradrenalinę powoduje powstanie w wyniku ich dezaminacji – kwasu 3,4 dihydroksymigdałowego. Wspólne oddziaływanie MAO i oksydazy na meta-O- metylowe metabolity A i NA (powstające przy udziale COMT) powoduje powstanie kwasu 3-metoksy-4-hydroksymigdałowego (kwasu wanilinomigdałowego – VAMA), (1, 22). O-metylotransferaza katecholowa jest enzymem cytozolowym, a najwyższe jej stężenie stwierdza się w wątrobie i nerkach (1). Jest ona uważana za enzym pozaneuronalny, lecz wykryto ją także w błonach postsynaptycznych. COMT metabolizuje krążące we krwi A i NA oraz uwalnia noradrenalinę w tkance efektorowej. Katalizuje ona przyłączanie grupy metylowej do pierścienia benzoesowego zwykle w pozycji 3 (meta) różnych katecholamin (3). Do tej reakcji istotnie potrzebne są kationy dwuwartościowe oraz S-adenozylometionina jako donor grupy metylowej. Produktami tej reakcji są, zależnie od wyjściowego substratu normetanefryna i metanefryna (1, 3, 23). Metabolizm trzeciej endogennej katecholaminy – dopaminy – zachodzi najpierw pod wpływem MAO oraz dehydrogenazy aldehydowej a następnie COMT prowadząc do powstania kwasu 3-metoksy-4-hydroksyfenylooctowego (kwasu homowanilinowego – HVA), (1, 15). Poza powyższymi mechanizmami metabolicznymi rozkładu amin kateCOPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO )33. kU¤°°U ¬A^uR -7|ql®u-ulyp- RAi|q|ª¬Ai cholowych są one również inaktywowane poprzez sprzęganie z kwasem glukuronowym i siarkowym. KA są uwalniane do przestrzenni zewnątrzkomórkowej, a enzymy biorące udział w ich inaktywacji położone są wewnątrzkomórkowo. Aby inaktywacja miała miejsce, istnieją wymagane systemy transportu i wychwytu katecholamin. Gdy procesy te współgrają ze sobą możemy mówić o systemach metabolicznych. Szczegółowo poznane są dwa systemy: - uptake 1 w zakończeniach nerwów adrenergicznych i komórkach pheochromocytoma szczura PC-12, który współdziała z wewnątrzkomórkową monoaminooksydazą (MAO), (23). - uptake 2 w mięśniach gładkich, mięśniu sercowym oraz komórkach gruczołowych, który transportuje KA dla wewnątrzkomórkowej O-metylotransferazy katecholowej (COMT), (23). Wychwyt amin z krwi przez zakończenia nerwów współczulnych prowadzi do ich inaktywacji nie enzymatycznej, polegającej na przechowywaniu ich wewnątrz neuronów, oraz enzymatycznej za pośrednictwem enzymu mitochondrialnego – MAO (1). Adrenalina oraz w mniejszym stopniu noradreanlina mogą być usuwane także poprzez wychwyt nieneuronalny, występujący w wielu różnych tkankach, co stwierdzono na podstawie tworzenia się metabolitów miejscowo w tkankach odnerwionych. W usuwaniu i degradacji katecholamin w ustroju biorą udział erytrocyty. Może się to odbywać poprzez sekwestrację wolnych amin katecholowych we wnętrzu erytrocytów (24, 25, 26). COPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO )33. Alexander (24) dowodzi, że w warunkach fizjologicznych wartości stężeń dopaminy w krwinkach są ok. 1,77 raza wyższe niż w osoczu, noradrenaliny – 1,04, adrenaliny – 2,71 (22). Według Azoui i in. stosunki dla dopaminy (RBC/ osocze= 11±2,9) wykazują znaczne różnice w porównaniu z adrenaliną (RBC/osocze = 3,21±0,85) i noradrenaliną (RBC/osocze =0,90±0,91), (24). Stężenia trzech podstawowych katecholamin wewnątrz erytrocytów jest wyższe niż w surowicy w warunkach fizjologicznych (22). W związku z tym kumulacja KA w ludzkich erytrocytach w odpowiedzi na zwiększające się stężenia KA w osoczu wydaje się być zależna od struktury amin (DA>A>NA) i od ich stężeń osoczowych (26). Przenikanie wolnych KA z osocza nie jest jedynym źródłem ich obecności we wnętrzu erytrocytów (25, 26). Poziomy amin katecholowych ulegają modyfikacjom w związku z procesem starzenia. Udowodniono, że wraz z wiekiem wzrasta zarówno poziom noradrenaliny w plazmie jak też i ciśnienie krwi. Przeprowadzono wiele badań w celu ustalenia przyczyn tego zjawiska. Esler (28) twierdzi, że stały poziom noradrenaliny określony jest przez tempo pojawiania się i oczyszczanie osocza z tej aminy. Trudno jest jednak określić, czy z procesem starzenia związane jest w większym stopniu nasilone tempo pojawiania się noradrenaliny w osoczu czy też spadek szybkości jej eliminacji. Pfeifer i in. (21) przedstawili natomiast hipotezę na temat zakłócania funkcji baroreceptorów, wynikającego ze zwiększonego wkładu części współczulnej autonomicznego układu nerwowego do systemu sercowo-naczyniowego przy &ARMACEUTYCZNY 0RZEGLD.AUKOWY kU¤°°U Stimulation Vizi E. S.: by inhibition of (Na 2+ -K+-Mg 2+ activated ATPase of acetylocholine release In cortical slices from rat brain. J.Physiol (Lond.) 1972; 226(1): 95-117. 18. Nilsson H, Ely D, Friberg P, Karlstrom G, Folkow B.: Effects of high and low sodium diets on the resistance vessels and their adrenergic vasoconstrictor fibre control In normotensive and hypertensive rats. Acta Physio. Skand. 1985; 125: 323-334. 19. Ely D. L, Weigand J.: Stress and high sodium effects on blond pressure and brain catecholamines In spontaneoulsy hypertensive rats. Clin. Ex. Hypertension A. 1983; 5: 1559-1573. 20. Kazko M, wsp.: High Plasma Norepinephrina Levels Piśmiennictwo Associated with β2-Adrenoreceptor Polymorphisms Predict Future Renal Damage In Nonobese Normoten1. Solski The Outline J, Gernand of Catecholamine W.: sive Individuals. Human Neuotransmitter Laboratory Biochemistry. Annales UMCS Lublin Poland Sectio 2007;30(6): 503-511. DDD VI/VII, 1993/1994; 25:189-195. 21. Silvi G, wsp.: Dopamine D1 and adenosine A1 receptors 2. Eberhard Glucose metabolizm B, wsp.: and Catefrom functionally interacting heteromeric complexes. cholamines. Crit Care Med. 2007; 35: 508-518. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000; 97(15): 8606-8611. 3. Blaschko Catecholamine H.: biosynthesis. Br. Med. Bill. 22. Solski J, Duma D.: Plasma erythrocytes relationship of 1973; 29: 110- 115. catecholamines In healthy subjects. Applied Biology 4. Sourkes T.L.: DOPA decarboxlase: substrates, coenCommunications 1994; 4(5-6): 127-129. zyme, inhibitors. Pharmacol. Rev. 1966; 18: 53- 60. 23. Tredelenburg U.: A kinetic analysis of the extraneuronal 5. Catecholamines. Axelrod J, Weinshiboum New. R.:uptake and metabolizm of catecholamines. Rev. Physiol. Engl. J. Med. 1972; 287(5): 237- 242. Biochem. Pharmacol. 1980; 87: 33-115. 6. The Solski Catecholamine J.: Levels In Human Red Blood 24. Alexander N, Velasquez M, Vlachakis N. D.: Red blood Cells. APPL. BIOL. COMMUN 1992; 12: 127-130. cells: in vivo site for transport and inactivation of bio7. The Poton relase DM.: of catecholamines from adrenergenic amines in man and rats. Life Sci. 1981; 29(5): gic neurons. Perg. Press NY, Oxford 1979; 59-63. 477-482. 8. Ratge D, changes Dynamic Kohse P,In Wisser the H.: 25. Jakubowska - Solarska B, Solski J.: Catecholamine cellular distribution of free and sulfoconjugated catLevels In Blood Well From Multiple Sclerosis Patients. echolamines In the perioperative state of surgery for ANNALES PHARMACIA UMSC Lublin Poland Sectio pheochromocytoma. Biogenic Amines 1993; 10: 79-90. DDD XIX, SECTIO DDD 2006; 64: 315-319. 9. Książek Effect of A, dialysate Solski J.: sodium on the 26. Jakubowska - Solarska B, Solski J.: Siali Acids Condopamine, adrenaline and noradrenaline concentration centration In Perpheral Blood Lymphocytes In Patients in haemodialysis patients. Proc. EDTA-ERA 1984; 21: Witch Multiple Sclerosis. ANNALES PHARMACIA 170- 225. UMSC Lublin Poland Sectio DDD XIX, SECTIO DDD 10. Allan E. H.: Noradrenergic regulation of cyclic GnRH 2006; 66: 325-329. secretion. Review of Reproduction 1997; 2: 1-6. 27. Christensen N. J, Jensen E. W.: Effect of psychosocial 11. Solski J, Książek A, Spasiewicz D.: High and low sodium stress and age on plasma norepinephrine levels a review. acetate haemodialysis. I. Compresion of haemodynamic Psychozom. Med. 1994; 56(1):77-83. effects. Intern. Urol. Nephrol. 1986; 18(3): 333-339. 28. Esler M, Skews H, Leonard P.: Age dependence of no12. Solski J, Książek A, Spasiewicz D.: High and low soradrenaline kinetics in normal subjects. Clin. Sci. 1981; dium acetate haemodialysis. II Comparison of plasma 60: 217-219. renin activity, catecholamine levels and plasma aldosterone concentration. Inter. Urol. Nephorl. 1986; 18: 341347. 13. Solski J, Duma D.: Sodium and Adrenergic System Activity. Annales UMCS Lublin Poland Sectio DDD VI/ VII 1993/1994; 26: 197-202. 14. Birks The role R. of J.: sodium ions In the metabolizm of acetylcholine. Can. J. Biochem. Physiol. 1963; 41: 2573-2590. 15. Banks P.: The effect of ouabain on the secretion of catecholamines and on the intracellular concetration of potassium. J. Physiol. (Lond.) 1967; 193(3):631-637. 16. Raiteri M, Levi G.: Release mechanizm for catecholamines and serotonin In synaptosomes. Rev. Neurosci. 1978; 3:77-130. zaangażowaniu receptorów α2- adrenergicznych. Założenie to wydaje się zgodne z selektywnym wzrostem pojawiania się noradrenaliny w plazmie (27). Oczyszczanie noradrenaliny z osoczu wg Cryera i in. może też odbywać się za pośrednictwem receptora β-adrenergicznego, którego aktywność u osób starszych ulega znacznmu zmniejszeniu. Spadek powinowactwa receptorów β-adrenergicznych powoduje wzrost stężenia noradrenaliny. Zależność ta wykazuje związek z redukcją częstości akcji serca. Prawidłowa czynność układu adrenergicznego zależy od równowagi pomiędzy procesami syntezy, uwalniania, wychwytu zwrotnego i unieczynniania katecholamin. &ARMACEUTYCZNY 0RZEGLD.AUKOWY 17. COPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO )33.