cobas® TaqScreen DPX Test

Transkrypt

for use on the cobas s 201 system
DO STOSOWANIA W DIAGNOSTYCE IN VITRO.
DPX
96 Tests
P/N: 05509203 190
cobas TaqScreen DPX Control Kit
DPX CTL
12 Sets
P/N: 05509181 190
cobas® TaqScreen Wash Reagent
TS WR
5.1 L
P/N: 04404220 190
®
ZASTOSOWANIE
Test cobas® TaqScreen DPX do stosowania z systemem cobas s 201 jest testem in vitro opartym na
amplifikacji kwasu nukleinowego służącym do bezpośredniego ilościowego oznaczania DNA
genotypów 1, 2 i 3 parwowirusa B19 (B19V) i bezpośredniego wykrywania jakościowego RNA
genotypów I, II i III wirusa zapalenia wątroby typu A (HAV) w ludzkim osoczu.
Test cobas® TaqScreen DPX jest przeznaczony do użycia jako test wewnątrzprocesowy w celu
oznaczania ilościowego wyłącznie DNA parwowirusa B19 lub jednoczesnego oznaczania ilościowego
DNA parwowirusa B19 i wykrywania RNA wirusa zapalenia wątroby typu A w osoczu ludzkim
przeznaczonym do dalszej obróbki. Można używać osocze z krwi pełnej (odzyskane) lub zebrane przez
aferezę (osocze wyjściowe). Można testować próbki od wszystkich dawców lub pul produkcyjnych
w formie pojedynczych próbek lub pul złożonych z równych objętości poszczególnych próbek.
Ten test nie jest przeznaczony do stosowania z próbkami krwi pępowinowej.
Ten test nie jest przeznaczony do stosowania jako narzędzie diagnostyczne.
PODSUMOWANIE ORAZ OPIS TESTU
W teście cobas® TaqScreen DPX zastosowano kilka barwników, co umożliwia jednoczesne wykrywanie
docelowych kwasów nukleinowych bez konieczności stosowania testów identyfikacyjnych. Na podstawie
®
zainstalowanego pliku definicji testu (Test Definition File, TDF) test cobas TaqScreen DPX przedstawia
wyniki analizy ilościowej B19V i jakościowej HAV lub wyłącznie wynik analizy ilościowej B19V.
Ludzki parwowirus B19 (B19V) należący do rodzaju Erythrovirus z rodziny Parvoviridae1 jest małym
wirusem pozbawionym otoczki, zawierającym pojedynczą nić DNA. Wśród ludzkich erytrowirusów
wyróżnia się trzy genotypy: genotyp 1 (szczepy B19V), genotyp 2 (szczepy A6) i genotyp 3 (szczepy
V9/D91.1)1. Wirus B19V występuje na całym świecie. Badania serologiczne wykazały, że u co najmniej
50% osób dorosłych występują we krwi przeciwciała IgG przeciwko wirusowi B19V wskazujące na
przebyte zakażenie2, 3. Zakażenie wirusowe wiąże się z objawami klinicznymi, których manifestacja
i nasilenie zależą od stanu immunologicznego i hematologicznego pacjenta4. W przypadku osób
immunokompetentnych zakażenie przebiega bezobjawowo lub objawy są łagodne, obejmujące rumień
zakaźny (choroba piąta) u dzieci i artropatię u dorosłych. Wirus B19V może jednak powodować również
poważne schorzenia, takie jak przejściowa niedokrwistość aplastyczna u osób z zaburzeniami
hematologicznymi i obrzęk uogólniony płodu, niedokrwistość wrodzoną oraz obumarcie płodu
u ciężarnych4. Występowanie wirusa B19V w krwi i osoczu dawców może wahać się od 0,003% do 0,6%
w zależności od tego, czy pobrano krew w sezonie epidemicznym czy poza nim5, 6.
Wirus B19V przenosi się zwykle drogą kropelkową, możliwe jest jednak przeniesienie go przez produkty
osoczopochodne, co jest związane z wielkością pul osocza, częstością występowania ostrych,
niewidocznych klinicznie zakażeń wirusem B19V, wysokim poziomem wirusa we krwi zakażonych
dawców (do 1012 IU/ml) i opornością wirusa B19V na większość standardowych procedur
inaktywacji/usuwania, takich jak metoda rozpuszczalnik/detergent (S/D) lub pasteryzacja7. Istnieją
doniesienia o obecności DNA wirusa B19V w pulach osocza i produktach osoczopochodnych8–10 i liczne
doniesienia o przenoszeniu wirusa B19V przez podanie produktów osoczopochodnych, zwłaszcza
czynników krzepnięcia7, 11–13.
Część Informacje dotyczące wersji dokumentu znajduje się na końcu niniejszego dokumentu.
06362265049-06PL
Doc Rev. 6.0
1
Wirus zapalenia wątroby typu A (HAV) należący do grupy hepatowirusów z rodziny Picornaviridae14 jest
małym, pozbawionym otoczki wirusem RNA. HAV występuje na całym świecie, jest przenoszony drogą
fekalno-oralną, głównie w przypadku bliskiego, osobistego kontaktu. Epidemie występują często
w krajach rozwijających się, gdzie zakażenia występują głównie u osób we wczesnym okresie życia, co
skutkuje wysokim odsetkiem osób z przeciwciałami przeciwko HAV w populacji15. Z kolei w krajach
uprzemysłowionych spadek zapadalności spowodował, że zakażenia występują głównie u osób
dorosłych16. Zakażenia HAV u ludzi mogą mieć różny przebieg, od bezobjawowych, głównie u małych
dzieci, do zapalenia wątroby o gwałtownym przebiegu, i w niektórych przypadkach prowadzą do zgonu.
W północnej Europie oraz w Japonii, Kanadzie i USA częstość występowania w ogólnej populacji jest
niewielka (ok. 0,01%), a zachorowania występują głównie w grupach podwyższonego ryzyka, na
przykład u osób podróżujących do regionów endemicznego występowania wirusa17. Wyróżniono kilka
18,19
. Zakaźny HAV może być
genotypów HAV (I–VI), przy czym u ludzi występują genotypy I, II i III
wykryty we krwi w okresie okienka serologicznego20, jednak ryzyko przeniesienia HAV jest niewielkie
podczas transfuzji. Podobnie jak w przypadku wirusa B19V, trudno jest inaktywować HAV metodą S/D
lub przez pasteryzację. Istnieją też doniesienia o przeniesieniu HAV w produktach osoczopochodnych,
głównie w czynnikach krzepnięcia21–23.
Skażenie pul osocza wirusami B19V i HAV można wykryć testami wykorzystującymi kwasy nukleinowe.
W związku z tym na początku XXI wieku niektórzy producenci osocza zainicjowali badania
z wykorzystaniem kwasów nukleinowych (Nucleic Acid Testing, NAT) do wykrywania DNA wirusa B19V
i RNA HAV w osoczu przeznaczonym do dalszej obróbki. Miały one na celu ograniczenie zawartości
wirusa B19V w pulach osocza i wyeliminowanie próbek osocza zakażonych HAV. Takie badania są
nazywane badaniami wewnątrzprocesowymi. Ze względu na doniesienia o obecności przeciwciał IgG
przeciwko wirusowi B19V w pulach osocza i przenoszeniu wirusa B19V przez produkty zawierające
> 104 IU/ml DNA B19V7 zaproponowano przyjęcie ograniczenia zawartości DNA B19V w puli osocza do
dalszej obróbki do < 104 IU/ml jako wymóg prawny amerykańskiej Agencji ds. Żywności i Leków (Food and
Drug Administration, FDA) i Unii Europejskiej wobec osocza przeznaczonego do produkcji przeciwciał
przeciwko antygenowi D i osocza poddanego obróbce mającej na celu inaktywację wirusów24, 25, 26. Nie
określono obecnie wymogów prawnych dotyczących testów na obecność HAV w pulach osocza. Jednak
zgodnie z wymogami prawnymi obowiązującymi na obszarze Unii Europejskiej testy NAT HAV pul
osocza wykonywane w ramach badań wewnątrzprocesowych powinny umożliwiać wykrywanie kontroli
zawierających 100 IU/ml RNA HAV26.
Test cobas® TaqScreen DPX jest testem podwójnym, umożliwiającym jednoczesne wykrywanie wirusów
B19V i HAV w próbkach ludzkiego osocza od pojedynczych dawców lub w pulach osocza. Stosowanie
technologii wielu barwników umożliwia identyfikację każdego z docelowych wirusów bez konieczności
stosowania dalszych testów identyfikacyjnych. Ponadto test umożliwia oznaczenie ilościowe (w IU/ml)
wirusa B19V z zastosowaniem standardu Quantitation Standard (QS), opartego bezpośrednio na
międzynarodowym standardzie WHO dla wirusa B19V27. Standard QS wraz z kontrolą wewnętrzną
(internal control, IC) (dla docelowego HAV) ulega ekstrakcji i amplifikacji jednocześnie z każdą próbką.
Test cobas® TaqScreen DPX wykorzystuje ogólną technikę przygotowywania kwasów nukleinowych
w urządzeniu COBAS® AmpliPrep. DNA wirusa B19V i RNA wirusa HAV wraz z QS i IC są
amplifikowane i wykrywane w pojedynczej próbówce przy użyciu zautomatyzowanej techniki PCR
w czasie rzeczywistym w analizatorze COBAS® TaqMan®. Identyfikacja docelowych wirusów, QS i IC jest
możliwa dzięki zastosowaniu sond wyznakowanych fluorescencyjnie i wykrywanych w osobnych
kanałach analizatora COBAS® TaqMan®. W teście stosowany jest enzym AmpErase
(uracylo-N-glikozylaza) umożliwiający redukcję potencjalnego zanieczyszczenia produktami amplifikacji
przeprowadzonej uprzednio (amplikonem).
ZASADY PROCEDURY
®
Test cobas TaqScreen DPX do stosowania z systemem cobas s 201 jest oparty na 4 głównych
procesach:
1. Zautomatyzowane pulowanie próbek i pipetowanie kontroli przy użyciu urządzenia pipetującego
Hamilton MICROLAB® STAR/STARlet IVD (opcjonalnie)
2. Zautomatyzowane przygotowywanie próbek przy użyciu urządzenia COBAS® AmpliPrep
3. Zautomatyzowana amplifikacja kwasu nukleinowego oraz zautomatyzowana detekcja w czasie
rzeczywistym produktów reakcji PCR przy użyciu analizatora COBAS® TaqMan®
4. Zautomatyzowane zarządzanie danymi przy użyciu oprogramowania do pulowania i zarządzania
danymi (PDM)
06362265049-06PL
2
Doc Rev. 6.0
Zautomatyzowane pulowanie próbek i pipetowanie przy użyciu urządzenia pipetującego Hamilton
MICROLAB STAR/STARlet IVD
Urządzenie pipetujące Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD pozwala na automatyzację
pipetowania próbek od pojedynczych dawców, pulowanie próbek uzyskanych od wielu dawców oraz
pipetowanie odczynników kontrolnych testu. System cobas s 201 umożliwia rozstrzygnięcie
reaktywnych pul osocza do uzyskania wyników dla poszczególnych próbek. System cobas s 201
służy do przetwarzania próbek w partiach. Partię definiuje się jako zbiór próbek i kontroli, które są
pipetowane, ekstrahowane, amplifikowane i wykrywane łącznie. Po zakończeniu pipetowania partii
w urządzeniu pipetującym Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD cały statyw na próbki jest
przenoszony do urządzenia COBAS® AmpliPrep w celu przeprowadzenia następnego etapu.
Zautomatyzowane przygotowywanie próbek przy użyciu urządzenia COBAS® AmpliPrep
Cząsteczki kwasów nukleinowych z próbek i dodanej kontroli wewnętrznej (internal control, IC) Armored
HAV RNA oraz cząsteczki standardu QS DNA wirusa B19V w osłonce faga lambda (które służą jako
kontrola procesów przygotowywania próbek i amplifikacji / detekcji / oznaczenia ilościowego) są
przetwarzane jednocześnie. Test cobas® TaqScreen DPX zawiera odczynniki do pięciu kolejnych
etapów przeprowadzanych w urządzeniu COBAS® AmpliPrep. Roztwór proteinazy trawi białka, co
ułatwia lizę, pozwala na inaktywację nukleaz i ułatwia uwalnianie RNA i DNA z cząsteczek wirusa.
Dodanie odczynnika lizującego do próbki powoduje przez denaturację białek lizę wirusa i inaktywację
nukleaz. RNA i DNA są uwalniane i jednocześnie chronione przed nukleazami. Uwolnione kwasy
nukleinowe łączą się z silikonową powierzchnią dodanych szklanych cząstek magnetycznych. Jest to
spowodowane głównie sumarycznym dodatnim ładunkiem na powierzchni szklanej cząstki
i sumarycznym ujemnym ładunkiem kwasów nukleinowych wynikającym ze stężenia soli chaotropowej
i siły jonowej odczynnika lizującego. Odczynnik płuczący pozwala na usunięcie niezwiązanych substancji
i zanieczyszczeń, takich jak zdenaturowane białka, fragmenty komórek i potencjalne inhibitory reakcji PCR
(takie jak hemoglobina itp.), oraz zmniejszenie stężenia soli. Oczyszczone kwasy nukleinowe są odłączane
do szklanych cząstek magnetycznych w podwyższonej temperaturze za pomocą buforu do elucji.
Zautomatyzowana amplifikacja i detekcja kwasu nukleinowego przy użyciu analizatora COBAS®
TaqMan®
Po wyizolowaniu oczyszczonych kwasów nukleinowych z ludzkiego osocza podczas zautomatyzowanego
przygotowania próbek, do amplifikacji i detekcji RNA HAV i RNA IC oraz amplifikacji i oznaczenia
ilościowego DNA B19V i DNA QS używa się odczynnika cobas® TaqScreen DPX Master Mix (MMX). Po
zaktywowaniu przez dodanie octanu manganu odczynnik cobas® TaqScreen DPX Master Mix umożliwia
odwrotną transkrypcję (dla docelowych RNA), a następnie amplifikację PCR wysoce konserwatywnych
regionów RNA HAV, RNA IC, DNA wirusa B19V i DNA QS przy użyciu specyficznych starterów.
Amplikony są wykrywane przez hybrydyzację ze swoistymi sondami oligonukleotydowymi. Amplifikacja,
hybrydyzacja i detekcja zachodzą jednocześnie.
Odwrotna transkrypcja oraz amplifikacja PCR
Reakcje odwrotnej transkrypcji i amplifikacji przeprowadza się przy użyciu termostabilnego
rekombinowanego enzymu, polimerazy DNA Z05. W obecności jonów manganowych (Mn2+) polimeraza
DNA Z05 uzyskuje aktywność odwrotnej transkryptazy i polimerazy DNA. Dzięki temu możliwy jest
przebieg reakcji odwrotnej transkrypcji i amplifikacji PCR w tej samej mieszaninie reakcyjnej.
Podczas amplifikacji PCR wysoka temperatura w kolejnych etapach reakcji umożliwia denaturację
amplikonu docelowego i IC/QS do jednoniciowego DNA. Polimeraza DNA Z05 powoduje wydłużenie
przyłączonych starterów wzdłuż docelowych matryc celem wytworzenia dwuniciowego DNA (amplikonu).
Ten proces powtarza się cyklicznie, a po każdym cyklu podwajana jest ilość amplikonu. Amplifikacja
zachodzi jedynie w obszarze docelowego genomu między starterami; całość genomu nie ulega amplifikacji.
Zapobieganie zanieczyszczeniu produktami poprzedniej reakcji
Zanieczyszczeniu produktami poprzedniej reakcji zapobiega się, stosując enzym AmpErase
(uracylo-N-glikozylaza) oraz trójfosforan dezoksyurydyny (dUTP). Dezoksyurydyna nie występuje
w naturalnym DNA, ale jest zawsze obecna w amplikonie z uwagi na zastosowanie w odczynniku Master
Mix mieszaniny trójfosforanu dezoksyurydyny / trójfosforanu tymidyny jako jednego z dNTP; dlatego
wyłącznie amplikon zawiera dezoksyurydynę. Enzym AmpErase rozpoznaje i katalizuje rozkład nici DNA
zawierającego dezoksyurydynę28 przez otwarcie pierścienia dezoksyrybozy w pozycji C1, przez co DNA
nie może ulegać amplifikacji. DNA zawierający dezoksytymidynę lub RNA zawierający rybourydynę29,30
nie jest rozpoznawany przez enzym. Podczas początkowej fazy odwrotnej transkrypcji enzym AmpErase
katalizuje cięcie produktów poprzedniej reakcji w miejscu reszt dezoksyurydyny. Enzym AmpErase jest
inaktywowany na długo po poddaniu działaniu temperatury powyżej 55°C, dlatego nie niszczy
docelowego amplikonu utworzonego w wyniku przeprowadzanej aktualnie reakcji PCR.
06362265049-06PL
3
Doc Rev. 6.0
Wykrywanie produktów reakcji PCR31,32
Odczynnik cobas® TaqScreen DPX MMX zawiera sondy wykrywające swoiste dla kwasów nukleinowych
HAV, IC, B19V i QS. Każda sonda wykrywająca jest wyznakowana: 1) jednym z czterech barwników
fluorescencyjnych, który działa jako barwnik reporterowy, i 2) drugim barwnikiem, który spełnia rolę
wygaszacza. Każdej sekwencji docelowej przypisany jest określony barwnik reporterowy, a fluorescencję,
której jest źródłem, mierzy się przy określonej długości fali. We wszystkich sondach używa się barwnika
wygaszacza tego samego typu. W tym systemie można wykrywać wszystkie amplifikowane kwasy
nukleinowe przy różnych długościach fal.
Zanim rozpocznie się amplifikacja PCR, sondy są nienaruszone, a fluorescencja reportera jest wytłumiona
bliskością wygaszacza, na zasadzie efektu przenoszenia energii Förstera. Podczas amplifikacji PCR sondy
hybrydyzują z docelowymi jednoniciowymi sekwencjami DNA i są rozszczepiane przez 5'- i 3'-nukleazową
aktywność polimerazy DNA Z05 w tym samym czasie, kiedy zachodzi amplifikacja. Kiedy barwnik
reporterowy i wygaszacz zostaną rozdzielone przez to rozszczepienie, ujawnia się aktywność
fluorescencyjna barwnika reporterowego. Z każdym cyklem PCR generowana jest zwiększająca się liczba
rozszczepionych sond i jednocześnie wzrasta sumaryczny sygnał barwnika reporterowego.
Detekcji produktów PCR w czasie rzeczywistym towarzyszy niezależny pomiar fluorescencji
poszczególnych uwolnionych barwników reporterowych, reprezentujących docelowe wirusy, IC i QS.
Zautomatyzowane zarządzanie danymi przy użyciu programu PDM
Oprogramowanie Roche PDM pozwala użytkownikowi przeglądać i raportować wyniki.
Oprogramowanie Roche PDM interpretuje wyniki testu cobas® TaqScreen DPX jako niereaktywne,
reaktywne lub nieważne dla docelowego HAV bądź < wartości odcięcia, ≥ wartości odcięcia lub
nieważne dla docelowego wirusa B19V. Oprogramowanie Roche PDM pozwala użytkownikowi nie
tylko odbierać i analizować wyniki PCR, ale także drukować raporty, odszukiwać wyniki, akceptować
wyniki dawców i (opcjonalnie) przesyłać dane do LIS.
MATERIAŁY DOSTARCZONE PRZEZ ROCHE
Do wykrywania RNA HAV oraz oznaczania ilościowego DNA wirusa B19V w próbkach osocza są
wymagane i dostarczane trzy zestawy: 1) cobas® TaqScreen DPX Test, 2) zestaw kontrolny cobas®
TaqScreen DPX Control Kit i 3) cobas® TaqScreen Wash Reagent. Karty charakterystyki (ang.
Safety Data Sheet, SDS) są dostępne na żądanie w miejscowym przedstawicielstwie firmy Roche.
(P/N: 05509203 190)
DPX
96 testów
DPX CS1
(kaseta zawierająca szklane cząstki magnetyczne do oznaczeń DPX)
DPX CS2
(kaseta z odczynnikiem lizującym do oznaczeń DPX)
DPX CS3
(kaseta wieloodczynnikowa do oznaczeń DPX)
DPX CS4
(kaseta z odczynnikami swoistymi dla testu do oznaczeń DPX)
®
cobas TaqScreen DPX Control Kit
Zestaw kontrolny cobas® TaqScreen DPX
(P/N: 05509181 190)
DPX CTL
12 zestawów
DPX D(+)C
(kontrola podwójna: dodatnia HAV i nisko dodatnia wirusa B19V)
DPX H(+)C
(kontrola wirusa B19V wysoko dodatnia)
DPX (–) C
(kontrola ujemna cobas® TaqScreen DPX)
06362265049-06PL
4
Doc Rev. 6.0
Odczynnik płuczący cobas® TaqScreen
(P/N: 04404220 190)
TS WR
5,1 l
TS WR
(odczynnik płuczący cobas® TaqScreen)
INNE MATERIAŁY WYMAGANE, LECZ SPRZEDAWANE OSOBNO
(DO NABYCIA W FIRMIE ROCHE)
Ten test jest przeznaczony do użytku z systemem cobas s 201. System cobas s 201 musi być
zainstalowany i używany przy pełnej konfiguracji systemu. Pojedynczych elementów systemu
cobas s 201 nie można używać jako samodzielnych urządzeń, nie można też zastępować innych
elementów. System cobas s 201 wykorzystuje elementy wymienione poniżej.
Przyrządy i oprogramowanie dla systemu cobas s 201
•
Urządzenie pipetujące Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD (opcjonalnie), stacja robocza
i oprogramowanie Pooling Manager
•
Urządzenie COBAS® AmpliPrep
•
Analizator COBAS® TaqMan®
•
Stacja danych z oprogramowaniem AMPLILINK
•
Serwer Roche PDM Data Manager, stacja robocza i oprogramowanie Data Manager
•
Plik definicji testu DPX dla testu cobas® TaqScreen DPX
•
Plik definicji testu do parwowirusa B19 (B19V) dla testu cobas® TaqScreen DPX
•
Podręcznik użytkownika systemu cobas s 201 w konfiguracji D
Statywy i materiały jednorazowe
•
Statywy na próbki COBAS® AmpliPrep (SK24) (P/N: 28122172001)
•
Statywy na jednostki SPU COBAS® AmpliPrep (P/N: 05471664001)
•
Statywy na odczynniki COBAS® AmpliPrep (P/N: 28122199001)
•
Jednostki przetwarzania próbki (SPU): (P/N: 03755525001)
•
Probówki wejściowe na próbki (probówki S) z klipsami z kodem kreskowym
(P/N: 03137040001)
•
Statywy z końcówkami K (P/N: 03287343001)
•
Opakowanie zawierające probówki K, 12 x 96 (P/N: 03137082001)
•
®
®
Nośnik K COBAS TaqMan (P/N: 28150397001)
•
Końcówki CO-RE o dużej pojemności (1000 µl) z filtrem (P/N: 04639642001)
•
Płytki głębokodołkowe, oznaczone etykietami z kodami kreskowymi (P/N: 04639634001)
•
Maty zamykające płytki głębokodołkowe (P/N: 04789288001)
•
Nośnik na próbki na 24 probówki testowe (P/N: 04639502001)
•
Nośnik na próbki na 32 probówki testowe (P/N: 04639529001)
•
Nośnik do końcówek (P/N: 04639545001)
•
Nośnik do płytek głębokodołkowych (P/N: 04639553001)
•
Nośnik na statywy SK24 (P/N: 04639600001)
•
Zestaw aerozolu dezynfekującego Hamilton (P/N: 06254250001)
•
Zestaw detergentu Hamilton MICROLAB (P/N: 06254268001)
•
Rękawice jednorazowe bezpudrowe
06362265049-06PL
5
Doc Rev. 6.0
ODCZYNNIKI
(P/N: 05509203 190)
96 testów
DPX
DPX CS1
MGP
(szklane cząstki magnetyczne)
Szklane cząstki magnetyczne
93% izopropanolu
2 x 48 testów
2 x 7,0 ml
DPX CS2
LYS
(odczynnik lizujący)
Cytrynian sodu dwuwodny
42,5% tiocyjanianu guanidyny
< 14% polidokanolu
0,9% ditiotreitolu
2 x 48 testów
2 x 78 ml
DPX CS3
Pase
(roztwór proteinazy)
Bufor TRIS
< 0,05% EDTA
Chlorek wapnia
Octan wapnia
≤ 7,8% proteinazy
Glicerol
2 x 48 testów
2 x 3,8 ml
EB
(bufor do elucji)
Bufor TRIS
0,2% metylparabenu — środek konserwujący
DPX CS4
DPX MMX-R1
(odczynnik 1 DPX Master Mix)
Octan potasu
Octan manganu
Glicerol
14,4% dimetylosulfotlenku
0,08% azydku sodu
Kwas octowy
2 x 7,0 ml
2 x 48 testów
2 x 3,0 ml
DPX MMX-R2
(odczynnik 2 DPX Master Mix)
Bufor Tricine
Octan potasu
Wodorotlenek potasu
4,1% dimetylosulfotlenku
Glicerol
Tween 20
< 0,09% dATP, dCTP, dGTP, dUTP, dTTP
< 0,01% preparatu starterów sensownych i antysensownych wirusów B19V i HAV
< 0,01% roztworu znakowanych barwnikiem fluorescencyjnym sond
wirusów B19V i HAV
< 0,01% roztworu znakowanych barwnikiem fluorescencyjnym sond
QS wirusa B19V i IC wirusa HAV
< 0,01% aptameru oligonukleotydowego
< 0,01% polimerazy DNA Z05 (bakteryjnej)
< 0,01% enzymu AmpErase® [uracylo-N-glikozylaza] (bakteryjnego)
0,08% azydku sodu
06362265049-06PL
6
2 x 2,5 ml
Doc Rev. 6.0
DPX IC/QS
(standard ilościowy i kontrola wewnętrzna DPX)
Bufor TRIS
≤ 0,002% poli-rA RNA (syntetycznego)
EDTA
0,05% azydku sodu
< 0,001% niezakaźnego syntetycznego RNA IC opłaszczonego
białkiem kapsydowym bakteriofaga MS2
< 0,001% niezakaźnego syntetycznego DNA QS B19V opłaszczonego
białkiem kapsydowym bakteriofaga Lambda
cobas® TaqScreen DPX Control Kit
®
Zestaw kontrolny cobas TaqScreen DPX
(P/N: 05509181 190)
DPX CTL
2 x 13 ml
12 zestawów
DPX D(+)C
12 x 1,6 ml
(podwójna kontrola dodatnia DPX)
< 0,001% niezakaźnego syntetycznego RNA HAV opłaszczonego
białkiem kapsydowym bakteriofaga MS2
< 0,001% niezakaźnego syntetycznego DNA wirusa B19V
opłaszczonego białkiem kapsydowym bakteriofaga Lambda
Osocze ludzkie ujemne, niereaktywne w testach licencjonowanych przez amerykańską
Agencję ds. Żywności i Leków (Food and Drug Administration, FDA) w zakresie
przeciwciał IgG i IgM Ab przeciwko wirusowi B19V, HBsAg, antygenowi
rdzeniowemu HBV Ab, HCV Ab i HIV-1/2 Ab oraz RNA HIV-1. Niereaktywne dla
RNA HAV metodami NAT i dla DNA wirusa B19V ≤ 5 IU/ml metodą PCR.
®
0,1% substancji konserwującej ProClin 300
DPX H(+)C
12 x 1,6 ml
(kontrola silnie dodatnia DPX)
< 0,001% niezakaźnego syntetycznego DNA wirusa B19V opłaszczonego
białkiem kapsydowym bakteriofaga Lambda
Osocze ludzkie ujemne, niereaktywne w testach licencjonowanych przez amerykańską
Agencję ds. Żywności i Leków (Food and Drug Administration, FDA) w zakresie
przeciwciał IgG i IgM Ab przeciwko wirusowi B19V, HBsAg, antygenowi
rdzeniowemu HBV Ab, HCV Ab i HIV-1/2 Ab oraz RNA HIV-1. Niereaktywne dla
RNA HAV metodami NAT i dla DNA wirusa B19V ≤ 5 IU/ml metodą PCR.
0,1% substancji konserwującej ProClin® 300
DPX (–) C
(kontrola ujemna cobas® TaqScreen DPX)
Bufor fosforanu sodu
EDTA
0,002% poli-rA RNA (syntetycznego)
Barwnik amarantowy
0,1% substancji konserwującej ProClin® 300
Odczynnik płuczący cobas® TaqScreen
(P/N: 04404220 190)
12 x 1,6 ml
TS WR
5,1 l
TS WR
(odczynnik płuczący cobas® TaqScreen)
Cytrynian sodu dwuwodny
0,1% metylparabenu — środek konserwujący
WYMAGANIA DOTYCZĄCE PRZECHOWYWANIA I UŻYTKOWANIA
A. Przez temperaturę pokojową rozumie się temperaturę od 15°C do 30°C.
B. Nie zamrażać odczynników ani kontroli.
06362265049-06PL
7
Doc Rev. 6.0
C. Odczynniki DPX CS1, DPX CS2, DPX CS3 i DPX CS4 należy przechowywać w temperaturze od
2°C do 8°C. Nieużywane odczynniki są stabilne aż do upływu podanej daty ważności.
D. Po pierwszym użyciu odczynniki zachowują stabilność przez 30 dni w temperaturze od 2°C do
8°C lub do upływu daty ważności, zależnie od tego, co nastąpi wcześniej.
E. Odczynników można używać w nie więcej niż 6 cyklach pracy urządzenia i w sumie przez
maksymalnie 48 godzin pracy urządzenia COBAS® AmpliPrep. Między kolejnymi cyklami pracy
odczynniki należy przechowywać w temperaturze od 2°C do 8°C. Oprogramowanie AMPLILINK
monitoruje łączną liczbę godzin pracy kaset z odczynnikami w urządzeniu COBAS® AmpliPrep
i uniemożliwia wykorzystanie kaset po osiągnięciu w sumie 48 godzin.
F. Oprogramowanie AMPLILINK nie monitoruje liczby cykli pracy urządzenia ze stosowanymi kasetami.
Za usunięcie kaset z odczynnikami po wykonaniu 6 cykli pracy urządzenia odpowiedzialny jest
użytkownik.
G. Odczynniki DPX D(+)C, DPX H(+)C i DPX (–) C należy przechowywać w temperaturze od 2°C do
8°C. Kontrole są stabilne aż do upływu podanej daty ważności. Po otwarciu opakowania
niewykorzystane do badania odczynniki należy wyrzucić.
H. Odczynnik TS WR należy przechowywać w temperaturze od 15°C do 30°C. Nieotwarty odczynnik
TS WR pozostaje stabilny aż do upływu podanej daty ważności. Po otwarciu odczynnik zachowuje
stabilność przez 30 dni w temperaturze od 15°C do 30°C lub do upływu daty ważności, zależnie od
tego, co nastąpi wcześniej.
ŚRODKI OSTROŻNOŚCI
DO STOSOWANIA W DIAGNOSTYCE IN VITRO.
A. Próbki mogą być zakaźne. Podczas wykonywania badania należy przestrzegać ogólnych środków
ostrożności33,34. Procedurę tę powinien wykonywać tylko personel biegły w używaniu testu cobas®
TaqScreen DPX i przeszkolony w postępowaniu z materiałem zakaźnym. Należy dokładnie oczyścić
i odkazić wszystkie laboratoryjne powierzchnie robocze świeżo przygotowanym roztworem
podchlorynu sodu 0,5% w wodzie dejonizowanej lub destylowanej (10-procentowy roztwór
wybielacza rozcieńczony wodą). Następnie należy przetrzeć powierzchnię etanolem 70%.
B. UWAGA: Odczynniki DPX D(+)C i DPX H(+)C zawierają ludzkie osocze otrzymane z krwi
ludzkiej. Testy wykazały, że zastosowane osocze jest niereaktywne w zakresie przeciwciał
IgG i IgM przeciwko wirusowi B19V, HBsAg, antygenowi rdzeniowemu HBV Ab, HCV Ab,
HIV-1/2 Ab oraz niereaktywne względem RNA HIV-1 w badaniach metodami NAT. Osocze
przebadano również z zastosowaniem testu cobas® TaqScreen DPX i wykazano, że jest
niereaktywne w kierunku RNA HAV i zawiera ≤ 5 IU/ml DNA wirusa B19V. Żadna ze znanych
metod badania nie może zaoferować całkowitej pewności, że produkty otrzymane z ludzkiej
krwi nie będą przenosić czynników zakaźnych. Wszystkie materiały pochodzące z krwi
ludzkiej należy uważać za potencjalnie zakaźne i postępować z nimi z zastosowaniem
ogólnych środków ostrożności. W przypadku wylania materiału należy natychmiast
zdezynfekować świeżo przygotowanym roztworem podchlorynu sodu 0,5% (rozcieńczony wybielacz)
lub postępować zgodnie z procedurami przyjętymi w danej instytucji.
C. Należy stosować rutynowe laboratoryjne środki ostrożności. Nie należy pipetować za pomocą ust.
Nie jeść, nie pić ani nie palić w obszarach roboczych. Podczas pracy z próbkami i odczynnikami
zestawu należy stosować ochronne rękawice jednorazowe, fartuchy laboratoryjne oraz osłonę oczu.
Po zakończeniu pracy z próbkami i odczynnikami testowymi należy dokładnie umyć ręce.
D. Odczynniki DPX MMX-R1, DPX MMX-R2 i DPX IC/QS zawierają jako środek konserwujący azydek
sodu. Jeśli roztwory zawierające azydki są usuwane do kanalizacji, należy je rozcieńczyć i spłukać
dużą ilością bieżącej wody. Te środki ostrożności są zalecane w celu uniknięcia odkładania się
złogów w metalowych rurach, co może spowodować zagrożenie wybuchem.
E. Wykazano, że heparyna hamuje reakcję PCR. Do tej procedury nie należy stosować osocza
heparynizowanego.
F. Zaleca się używanie jałowych jednorazowych pipet oraz końcówek pipet wolnych od nukleazy. Jeżeli
w trakcie obsługi i przetwarzania próbek nie jest możliwa odpowiednia kontrola kontaminacji między
próbkami, może dojść do wystąpienia wyników fałszywie dodatnich.
G. Aby uzyskać optymalną skuteczność testu, należy stosować tylko dostarczone lub wymienione
potrzebne materiały jednorazowego użytku.
06362265049-06PL
8
Doc Rev. 6.0
H. Aby uniknąć krzyżowego zanieczyszczenia próbek lub kontroli, z wszystkimi materiałami
zawierającymi próbki lub kontrole należy postępować zgodnie z zasadami dobrej praktyki
laboratoryjnej.
I.
Przed użyciem należy ocenić wzrokowo każdą kasetę z odczynnikami, probówkę z kontrolą
i odczynnik płuczący, aby się upewnić, że nie ma choćby najmniejszego wycieku. W razie
wystąpienia wycieku nie wolno używać tego materiału do badania.
J.
Należy usuwać wszystkie materiały, które przypadkowo weszły w kontakt z próbkami i odczynnikami,
zgodnie z przepisami krajowymi, federalnymi, stanowymi i lokalnymi.
K. Nie należy używać zestawu testowego cobas® TaqScreen DPX, zestawu kontrolnego cobas®
TaqScreen DPX ani odczynnika płuczącego cobas® TaqScreen po upływie daty ważności. Nie
wolno zamieniać, mieszać ani łączyć odczynników z różnych zestawów ani z różnych serii. Nie
należy umieszczać jednocześnie różnych serii odczynników w urządzeniu COBAS® AmpliPrep.
L. Karty charakterystyki (ang. Safety Data Sheet, SDS) są dostępne na żądanie w miejscowym
przedstawicielstwie firmy Roche.
M. Należy unikać kontaktu odczynników ze skórą, oczami i błonami śluzowymi. Jeżeli dojdzie do
kontaktu, należy natychmiast spłukać dużą ilością wody; w przeciwnym razie mogą powstać
oparzenia. Jeżeli dojdzie do rozlania wymienionych odczynników, przed wytarciem należy rozcieńczyć
je wodą.
N. Nie wolno dopuścić do kontaktu odczynnika LYS zawierającego tiocyjanian guanidyny
z roztworem podchlorynu sodu (wybielaczem). Połączenie to może skutkować wytworzeniem
silnie trującego gazu.
O. Należy ściśle przestrzegać podanych procedur i wytycznych w celu zapewnienia prawidłowego
wykonania testu. Wszelkie odchylenia od procedur i wytycznych mogą mieć wpływ na optymalną
skuteczność testu.
P. Należy unikać użycia nadmiernie zhemolizowanych próbek.
Q. Zanieczyszczenie próbek osocza krwinkami czerwonymi (> 5%) może spowodować zahamowanie
reakcji prowadzonych w teście cobas® TaqScreen DPX.
R. W żadnej fazie testu nie należy używać składników z uszkodzonymi etykietami z kodem kreskowym.
PRZYGOTOWANIE KONTROLI I ODCZYNNIKÓW
A. Wyjąć odczynniki z zestawów cobas® TaqScreen DPX Control Kit i cobas® TaqScreen DPX Test
z lodówki co najmniej 30 minut przed użyciem.
POBIERANIE, PRZECHOWYWANIE I PULOWANIE PRÓBEK
Uwaga:
Ze wszystkimi próbkami należy obchodzić się jak z czynnikami zakaźnymi.
Próbki
A. Z testem cobas® TaqScreen DPX można używać próbek osocza pobranych do próbówek
z antykoagulantem EDTA, CPD, CPDA-1, CP2D, ACD-A i 4-procentowym roztworem cytrynianu
sodu. Należy postępować zgodnie z instrukcjami obchodzenia się z próbkami i ich odwirowywania
umieszczonymi przez producenta na próbówce/worku do pobierania próbek. Podwyższona
temperatura ma wpływ na stabilność próbek.
B. Krew pobrana do próbówek z antykoagulantami EDTA, CPD, CPDA-1, CP2D, ACD-A
i 4-procentowym roztworem cytrynianu sodu może być przechowywana w następujących warunkach:
•
Próbki można przechowywać przez maksymalnie 72 godziny w temperaturze 2–30°C
i maksymalnie przez 48 godzin w temperaturze 2–8°C.
•
Próbki osocza po oddzieleniu komórek można przechowywać w temperaturze 2–8°C do 9 dni.
06362265049-06PL
9
Doc Rev. 6.0
Rysunek 1
Stabilność preparatu krwi pełnej
Temperatura (°C)
30
Krew pełna
(2°C–30°C)
20
10
Osocze
(2°C–8°C)
Krew pełna
(2°C–8°C)
0
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
Liczba dni
C. Krew pobraną do probówek Vacutainer® PPT firmy Becton Dickinson można przed oddzieleniem
osocza przechowywać do 72 godzin w temperaturze 2–30°C. Osocze oddzielone za pomocą
żelu w próbówkach PPT można przechowywać w temperaturze 2–8°C przez dodatkowe
jedenaście dni37.
D. Osocze oddzielone od komórek może być przechowywane w poniższych warunkach:
•
Osocze można przechowywać przez maksymalnie 10 dni w temperaturze 2–30°C i przez
maksymalnie 46 dni w temperaturze 2–8°C.
•
Osocze można przechowywać przez maksymalnie 12 miesięcy w temperaturze <−18°C
i przez maksymalnie 15 dni w temperaturze 2–8°C.
•
Nie obserwowano ujemnego wpływu na skuteczność testu, gdy próbki osocza poddawano
3 cyklom zamrażania i rozmrażania.
E. Następujące wskazówki dotyczące objętości osocza oparte są na pipetowaniu ze szklanych lub
plastikowych probówek 13 x 100 mm zawierających materiał od dawców w urządzeniu
pipetującym Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD. Wymienione objętości dotyczą osocza
powyżej upakowanych czerwonych krwinek i są używane podczas pracy z testem cobas®
TaqScreen DPX.
Tabela 1
Informacje o objętościach przy stosowaniu urządzenia do pipetowania Hamilton
®
MICROLAB STAR/STARlet IVD
Typ puli
Minimalna objętość osocza
Pula główna*
3 ml
Pula powtórzona
1,5 ml
Pula do rozdziału
2 ml
* Uwzględnia tworzenie płytki głębokodołkowej (płytka archiwizacyjna)
F. Nie zamrażać krwi pełnej37.
G. Osocze w zakrytych płytkach z głębokimi dołkami można przechowywać w temperaturze 2–30°C
do 3 dni, w temperaturze < −18°C do 150 dni i w temperaturze 2–8°C do 30 dni.
H. Próbki należy wyjąć z lodówki co najmniej 30 minut przed użyciem.
I.
Inne warunki pobierania i przechowywania musi zweryfikować użytkownik. Jeśli próbki mają być
przesyłane, należy je opakować i oznakować zgodnie z odpowiednimi federalnymi
i międzynarodowymi przepisami dotyczącymi transportu próbek i czynników etiologicznych35.
06362265049-06PL
10
Doc Rev. 6.0
PULOWANIE I PIPETOWANIE PRÓBEK
A. System cobas s 201 wykorzystuje wszystkie możliwości pipetowania i pulowania urządzenia
pipetującego Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD. Za pomocą urządzenia pipetującego
Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD przeprowadza się skanowanie kodów kreskowych
i pulowanie próbek celem wytworzenia puli.
B. System cobas s 201 może być zainstalowany bez urządzenia pipetującego Hamilton MICROLAB
STAR/STARlet IVD, wymagając ręcznego wprowadzania identyfikatorów kodów kreskowych.
Instrukcje można znaleźć w Podręczniku użytkownika systemu cobas s 201.
C. Jeśli w teście cobas® TaqScreen DPX pule wykażą reaktywność wobec HAV lub będą mieć wynik
≥ wartości odcięcia dla wirusa B19V, urządzenie pipetujące Hamilton MICROLAB STAR/STARlet
IVD zostanie użyte do pipetowania pojedynczych próbek z płytki głębokodołkowej lub z oryginalnych
probówek z próbkami do dalszych testów.
UWAGI PROCEDURALNE
A. Wyposażenie
1. Należy przygotować system cobas s 201 do użytku zgodnie z instrukcjami w Podręczniku
użytkownika systemu cobas s 201.
2. Aby zapewnić prawidłowe działanie urządzenia, należy wykonywać zalecane czynności
konserwacyjne.
B. Odczynniki
1. Wyjąć odczynniki z zestawów cobas® TaqScreen DPX Control Kit i cobas® TaqScreen DPX
Test z lodówki co najmniej 30 minut przed użyciem. Odczynnik płuczący cobas® TaqScreen
Wash Reagent musi przed użyciem uzyskać temperaturę pokojową. Informacje na temat
warunków przechowywania można znaleźć w rozdziale „Wymagania dotyczące
przechowywania i użytkowania”.
2. Każdy zestaw cobas® TaqScreen DPX Test zawiera ilość materiału wystarczającą do
wykonania łącznie 96 testów, które zaleca się przeprowadzać w partiach składających się
z maksymalnie 24 testów na statyw SK24. Z każdą partią testową lub każdym statywem SK24
należy przetworzyć po jednym powtórzeniu kontroli ujemnej i dodatniej. W teście cobas®
TaqScreen DPX próbki i kontrole są poddawane tym samym procesom.
3. Wszystkie odczynniki kontrolne służą do jednorazowego użytku.
4. System pozwoli zapobiec użyciu odczynników z różnych serii, odczynników, w przypadku
których została przekroczona dozwolona liczba godzin w urządzeniu, odczynników, których
data ważności upłynęła, lub pomieszanych kaset z zestawu czterech kaset poprzednio
używanych w systemie. Nie należy umieszczać jednocześnie różnych serii odczynników
®
w urządzeniu COBAS AmpliPrep.
C. Przetwarzanie próbek
1. Podczas pracy z próbkami i odczynnikami kontrolnymi należy unikać skażenia rękawiczek.
2. Należy uważać, aby nie doszło do skażenia próbek i kontroli ujemnych dodatnimi odczynnikami
kontrolnymi.
06362265049-06PL
11
Doc Rev. 6.0
INSTRUKCJA UŻYTKOWANIA
W systemie cobas s 201 przeprowadza się cztery główne procesy: pipetowanie próbek i kontroli
w urządzeniu pipetującym Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD, przygotowywanie próbek
w urządzeniu COBAS® AmpliPrep z użyciem zestawu cobas® TaqScreen DPX Test, amplifikację/
®
®
detekcję w analizatorze COBAS TaqMan i zarządzanie danymi.
Każdy zestaw cobas® TaqScreen DPX Test zawiera osiem kaset: dwie kasety DPX CS1 ze
szklanymi cząstkami magnetycznymi, dwie kasety DPX CS2 z odczynnikiem lizującym, dwie kasety
DPX CS3 z proteazą i buforem do elucji oraz dwie kasety DPX CS4 z kontrolą wewnętrzną oraz
odczynnikiem 1 i 2 MMX. Ten zestaw jest używany łącznie z zestawem cobas® TaqScreen DPX
®
Control Kit i odczynnikiem płuczącym cobas TaqScreen Wash Reagent.
Uwaga:
Nie należy otwierać kaset.
Uwaga:
Nie należy łączyć odczynników z różnych serii ani z różnych butelek z tej samej serii.
Uwaga:
Nie należy umieszczać jednocześnie kaset z różnych serii w urządzeniu COBAS®
AmpliPrep.
Uwaga:
Nie oddzielać probówek kontrolnych od adapterów (plastikowy uchwyt probówek
kontrolnych).
Uwaga:
Oprogramowanie PDM kontroluje badane partie i wymusza przeprowadzenie przebiegu
partii na pojedynczym urządzeniu COBAS® AmpliPrep i analizatorze COBAS® TaqMan®
podłączonym do tej samej stacji roboczej AMPLILINK.
Uwaga:
Nie dzielić partii pomiędzy różne urządzenia COBAS® AmpliPrep i analizatory COBAS®
TaqMan®.
Należy wykonywać wszystkie wymagane czynności zgodnie z opisem podanym w Podręczniku
użytkownika systemu cobas s 201.
Dokładne instrukcje dotyczące użytkowania można znaleźć w Podręczniku użytkownika systemu
cobas s 201.
A. Pipetowanie próbek i kontroli przy użyciu urządzenia pipetującego Hamilton MICROLAB
STAR/STARlet IVD
Uwaga: Podczas przygotowywania próbek i kontroli należy unikać skażenia rękawic.
Uwaga: Wymieszać kontrole w sposób opisany poniżej, odwracając je trzykrotnie i unikając
powstania pęcherzyków powietrza.
• Każdorazowe odwrócenie określa się jako odwrócenie kontroli w pionie o 180°,
a następnie powrót do pozycji wyjściowej.
• Podczas odwracania kontroli należy ją utrzymywać przez co najmniej 2 sekundy
w każdym ustawieniu (tzn. po odwróceniu w pionie o 180° należy pozostawić
kontrolę w tej pozycji przez co najmniej 2 sekundy. Następnie należy ponownie
odwrócić kontrolę o 180° w pionie i również pozostawić ją w tej pozycji przez co
najmniej 2 sekundy).
Uwaga: Wirusy docelowe w kontrolach, próbkach pojedynczych i w pulach są stabilne na
systemie (do 30°C) przynajmniej przez 18 godzin przed umieszczeniem w urządzeniu
®
COBAS AmpliPrep.
1. Należy wykonać procedury startowe w urządzeniu pipetującym Hamilton MICROLAB
STAR/STARlet IVD, a następnie uruchomić zgodnie z instrukcjami na ekranie program Roche
PDM Pooling Wizard.
2. Należy uważać, aby nie uszkodzić identyfikacyjnego kodu kreskowego na probówkach na próbki
i adapterach probówek z kontrolami. W razie uszkodzenia system nie będzie mógł rozpoznać
próbek ani kontroli.
3. Należy odkręcić probówki kontrolne i włożyć próbki, materiały eksploatacyjne i odczynniki
kontrolne do urządzenia pipetującego Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD. Po włożeniu
próbek, materiałów eksploatacyjnych i odczynników kontrolnych urządzenie przenosi odczynniki
kontrolne i próbki do probówek S.
06362265049-06PL
Doc Rev. 6.0
12
4. Po zakończeniu pipetowania należy przejrzeć alarmy i wydrukować raport (raporty) pulowania.
Należy sprawdzić pule i dołki płytki głębokodołkowej. Należy unieważnić pule i/lub dołki w razie
zaobserwowania zabrudzenia czerwonymi krwinkami lub w przypadku różnych objętości.
5. Zamknij ponownie zatyczkami probówki S i przenieś statyw (statywy) SK24 do urządzenia
COBAS® AmpliPrep w celu wykonania ekstrakcji kwasów nukleinowych.
6. Należy zakryć i przechować płytki głębokodołkowe (jeśli płytki zostały utworzone podczas
pipetowania).
7. Należy usunąć i przechować probówki od dawców. Warunki przechowywania zostały opisane
w rozdziale „Pobieranie, przechowywanie i pulowanie próbek”.
8. Należy usunąć i wyrzucić probówki z odczynnikami kontrolnymi. (Probówki z kontrolami służą
wyłącznie do jednorazowego użytku).
9. Wszystkie zlecenia testu są tworzone automatycznie i przekazywane do wszystkich stacji
danych AMPLILINK w sieci.
B. Przygotowywanie i wkładanie odczynników do testu cobas® TaqScreen DPX
Uwaga: Należy uważać, aby nie uszkodzić etykiet kaset. Czytnik kodów kreskowych
w urządzeniu COBAS® AmpliPrep służy do automatycznego odczytywania kodu
kreskowego na etykiecie każdej z kaset, gdy statywy z odczynnikami są wkładane
do urządzenia.
®
1. Należy wyjąć odczynniki testowe cobas TaqScreen DPX z lodówki co najmniej 30 minut przed
ich użyciem. Nie jest wymagane żadne inne przygotowywanie odczynników.
2. Przed rozpoczęciem należy włożyć odpowiednią liczbę kaset, aby dostosować ich liczbę do
całkowitej liczby próbek, które będą przetwarzane podczas ciągłej pracy urządzenia COBAS®
AmpliPrep. Każda kaseta zawiera ilość odczynników wystarczającą do przeprowadzenia
48 testów. Informacje na temat wkładania odczynników do pracy ciągłej można znaleźć
w Podręczniku użytkownika systemu cobas s 201.
3. Należy umieścić kasetę DPX CS1 w statywie na odczynniki; należy się upewnić, że kod
kreskowy kasety znajduje się w jednej linii z kodem kreskowym statywu, umieszczonym po
prawej stronie statywu. Kasety DPX CS1 należy włożyć razem w osobnym statywie na
odczynniki, oddzielnie od innych kaset.
4. Należy umieścić statyw z odczynnikami zawierający kasety DPX CS1 w pozycji A, wsuwając go
aż do kołka blokującego w urządzeniu COBAS® AmpliPrep, następnie zaczekać, aż dioda
statywu na odczynniki stanie się zielona, i dopiero wtedy wsunąć statyw we właściwe miejsce w
tylnej części urządzenia. Nie należy umieszczać jednocześnie różnych serii odczynników
w urządzeniu.
5. Należy umieścić po jednym zestawie kaset DPX CS2, DPX CS3 i DPX CS4 na każdą kasetę
DPX CS1 w statywie (statywach) na odczynniki; należy się upewnić, że kody kreskowe kasety
znajdują się w jednej linii z kodem kreskowym statywu umieszczonym po prawej stronie statywu.
6. Należy umieścić statyw (statywy) na odczynniki w pozycjach B, C, D lub E, wsuwając je aż do
kołka w urządzeniu COBAS® AmpliPrep, następnie zaczekać, aż dioda statywu na odczynniki
stanie się zielona, i dopiero wtedy wsunąć statyw we właściwe miejsce w tylnej części
urządzenia.
7. Diody na pasku stanu urządzenia COBAS® AmpliPrep staną się zielone, gdy wszystkie
wymagane składniki zestawu zostaną włożone i rozpoznane przez system.
C. Ekstrakcja kwasów nukleinowych z pipetowanych próbek i kontroli
Uwaga: Przedstawione poniżej czynności należy wykonać na czystej powierzchni stołu.
1. Należy usunąć opakowanie z pakietu jednostek przetwarzania próbek (SPU), pozostawiając
nietkniętą taśmę i plastikową pokrywę.
2. Mając uchwyt statywu na SPU skierowany do użytkownika, należy włożyć pakiet jednostek SPU
z prawej strony statywu na SPU.
06362265049-06PL
13
Doc Rev. 6.0
3. Należy usunąć taśmę i plastikową pokrywę z jednostek SPU znajdujących się w statywie. Należy
się upewnić, że wszystkie jednostki SPU są wciśnięte, wyrównane i dokładnie umieszczone
w statywie. Uniesione jednostki SPU mogą spowodować uszkodzenie urządzenia. Nie należy
naciskać na końcówkę S w SPU.
4. Należy umieścić statywy z SPU w urządzeniu COBAS® AmpliPrep statywy na SPU w pozycjach
J, K lub L w taki sposób, aby były do końca wsunięte i rozpoznane. Jednocześnie w urządzeniu
może znajdować się do 72 jednostek SPU. Należy włożyć wymaganą do testu liczbę jednostek
SPU lub w razie potrzeby większą.
5. Należy usunąć opakowanie celofanowe z zapakowanych przez producenta statywów
z probówkami K i końcówkami K, uważając przy tym, aby nie przewrócić statywów. Należy się
upewnić, że wszystkie są prawidłowo osadzone.
6. Należy umieścić jak najmniejszą wymaganą liczbę statywów z probówkami K i końcówkami K
w pozycjach M, N, O lub P urządzenia COBAS® AmpliPrep.
7. Statywy SK24 zawierające próbki i kontrole napipetowane w urządzeniu pipetującym Hamilton
MICROLAB STAR/STARlet IVD należy umieścić w urządzeniu COBAS® AmpliPrep w pozycjach F,
G lub H. Należy wsunąć statyw aż do zablokowania. Należy sprawdzić status zakładki Sample,
aby się upewnić, że wszystkie próbki w każdym statywie zostały rozpoznane.
8. Należy sprawdzić w oprogramowaniu AMPLILINK, czy do wymaganego przygotowania próbek
włożone są odpowiednie ilości odczynników i materiałów eksploatacyjnych.
9. Należy nacisnąć przycisk Start w oprogramowaniu AMPLILINK, aby rozpocząć procedurę
przygotowania próbek przez urządzenie COBAS® AmpliPrep.
10. Wszystkie nieużywane końcówki K i probówki K będą śledzone w urządzeniu COBAS®
AmpliPrep i będą używane w następnym przebiegu, jeśli nie zostaną rozładowane.
D. Amplifikacja i detekcja
1. Przy stosowaniu bez stacji dokującej należy przenieść statyw SK24 zawierający
przetworzone próbki i odczynnik Master Mix do analizatora COBAS® TaqMan®, aby
rozpocząć amplifikację i detekcję automatycznie. Oprogramowanie AMPLILINK kontroluje,
czy do każdej przetwarzanej próbki dodano odczynnik Master Mix i oznaczy próbkę jako
nieważną, jeśli amplifikacja nie rozpocznie się po odstępie czasu określonym w pliku definicji
testów (Test Definition File) (120 minut). Dla ułatwienia przebiegu pracy przenieś ramkę
SK24 do analizatora COBAS® TaqMan® w ciągu 1 godziny od zakończenia przygotowania
próbek na tej ramce.
2. Po zakończeniu amplifikacji i detekcji w analizatorze COBAS® TaqMan® analizowane próbki
są automatycznie usuwane do pojemnika na odpady.
3. Wyniki są automatycznie akceptowane i przesyłane do oprogramowania PDM.
E. Przeglądanie i drukowanie wyników
1. Należy uruchomić stację roboczą Roche PDM.
2. Należy odszukać nieprzeglądane partie w zakładce „Review Batches” w stacji roboczej Data
Manager.
3. Należy przejrzeć alarmy, podświetlając partię, a następnie klikając przycisk „Next”.
4. Należy przejrzeć wyniki dla kontroli w zakładce „Controls Review”. Kryteria ważności kontroli
można znaleźć w rozdziale „Kontrola jakości”.
5. Należy przejrzeć wyniki puli w zakładce „Alarms Review” dla wybranej partii. W razie
konieczności użytkownik może ręcznie unieważnić pule niereaktywne dla HAV i z wynikiem
< wartości odcięcia dla wirusa B19V. Próbki od dawców z nieważnych pul należy przebadać
ponownie.
6. Należy przejrzeć i zwolnić wyniki dawców w zakładce „Donor Review” dla wybranej partii.
7. Należy wydrukować raporty i w razie potrzeby przesłać je do laboratoryjnego systemu
informatycznego (LIS).
06362265049-06PL
14
Doc Rev. 6.0
KONTROLA JAKOŚCI
1. W każdej partii należy uwzględnić jedną kontrolę ujemną (DPX (–) C) i po jednej z dwóch kontroli
dodatnich (DPX D(+)C i DPX H(+)C).
2. Status partii. Status partii jest opisany jako „Complete, Valid”, gdy kontrole partii są ważne. Jeśli
którakolwiek z kontroli w partii jest nieważna, cała partia jest nieważna. Unieważnienie wyników na
podstawie błędów kontroli jest przeprowadzane automatycznie przez oprogramowanie PDM.
a. Kontrola ujemna
Ważność kontroli ujemnej jest weryfikowana zgodnie z przeprowadzanym testem.
Test DPX (HAV i B19V). Aby kontrola ujemna (DPX (–) C) była ważna, interpretowany wynik
musi być niereaktywny zarówno dla HAV, jak i dla wirusa B19V, a kontrola IC i standard QS
muszą być ważne. Jeśli interpretowany wynik dla kontroli ujemnej jest nieważny, cała partia jest
nieważna i należy ją powtórzyć.
Test tylko na wirusa B19V. Aby kontrola ujemna (DPX (–) C) była ważna, interpretowany wynik
musi być niereaktywny dla wirusa B19V, a odpowiedni standard QS musi być ważny. Jeśli
interpretowany wynik dla kontroli ujemnej jest nieważny, cała partia jest nieważna i należy ją
powtórzyć.
b. Podwójna kontrola dodatnia DPX
Ważność podwójnej kontroli dodatniej DPX jest weryfikowana zgodnie z przeprowadzanym
testem.
Test DPX (HAV i B19V). Aby podwójna kontrola dodatnia (DPX D(+)C) była ważna,
interpretowany wynik musi być reaktywny dla HAV, stężenie wirusa B19V musi wynosić od
1,20 x 102 do 1,20 x 103 IU/ml, a odpowiednia kontrola IC i standard QS muszą być ważne.
Jeśli interpretowany wynik dla HAV jest nieważny lub stężenie wirusa B19V jest poza
akceptowalnym zakresem, cała partia jest nieważna i należy ją powtórzyć.
Test tylko na wirusa B19V. Aby podwójna kontrola dodatnia (DPX D(+)C) była ważna,
interpretowany wynik musi wskazywać stężenie wirusa B19V od 1,20 x 102 do 1,20 x 103 IU/ml,
a odpowiedni standard QS musi być ważny. Jeśli interpretowany wynik wskazuje na stężenie
wirusa B19V poza akceptowalnym zakresem, cała partia jest nieważna i należy ją powtórzyć.
c.
Kontrola wysoko dodatnia DPX
Aby kontrola wysoko dodatnia DPX (DPX H(+)C) była ważna, stężenie wirusa B19V musi
wynosić od 2,40 x 105 do 2,40 x 106 IU/ml, a odpowiadający jej standard QS musi być ważny.
Jeśli stężenie wirusa B19V jest poza akceptowalnym zakresem, cała partia jest nieważna
i należy ją powtórzyć.
3. IC dla próbek od dawców
a. Aby próbka od dawcy miała ważny niereaktywny (–) wynik testu dla HAV, odpowiednia
kontrola IC musi być ważna; w przeciwnym razie wynik niereaktywny jest nieważny i należy
ponownie zbadać próbkę dawcy.
b. Ważny wynik dla próbki od dawcy reaktywnej wobec HAV może mieć ważny lub nieważny
wynik przeprowadzonej kontroli IC.
4. QS dla próbek od dawców
a. Aby próbka od dawcy miała ważny wynik testu dla wirusa B19V, odpowiedni standard QS musi
być ważny; w przeciwnym razie wynik jest nieważny i należy ponownie zbadać próbkę dawcy.
06362265049-06PL
15
Doc Rev. 6.0
WYNIKI
1. Wyniki próbek są ważne tylko wówczas, gdy zawierająca je partia jest ważna. Kryteria kontroli
jakości można znaleźć w rozdziale Kontrola jakości. Dla każdej próbki mierzone są cztery parametry:
po jednym dla docelowych wirusów HAV i B19V oraz po jednym dla IC i QS.
Test tylko na wirusa B19V. Dla każdej próbki mierzone są dwa parametry: docelowy wirus B19V i QS.
2. Ostateczne wyniki testu mogą być niereaktywne, reaktywne lub nieważne dla docelowego HAV bądź
< wartości odcięcia, ≥ wartości odcięcia lub nieważne dla docelowego wirusa B19V.
3. Ostateczny status próbki od dawcy w teście cobas® TaqScreen DPX jest przedstawiany przez
oprogramowanie PDM następująco:
Tabela 2
Opis końcowego stanu próbki od dawcy
Końcowy status
próbki od dawcy
Completed
Accepted
Completed Unresolved
Accepted Unresolved
Opis
Uzyskano ostateczne wyniki dla każdego docelowego wirusa.
Zaakceptowano ukończony test dla próbki od dawcy.
Termin ważności upłynął, zanim test został zaakceptowany.
Zaakceptowano nierozstrzygnięty ukończony test próbki od dawcy.
Powtarzanie testu dla danej próbki
Probówki z próbkami od dawców z ostatecznym wynikiem nieważnym dla jednego z docelowych
wirusów wymagają powtórnego badania, niezależnie od końcowego wyniku dla drugiego
z docelowych wirusów. Użytkownik może jednak wybrać opcję „Force Unresolve”, aby zakończyć
pracę z próbką danego dawcy. Zastosowanie funkcji „Force Unresolve” powoduje przypisanie stanu
„Accepted Unresolved” próbce od dawcy, dla której nie uzyskano ostatecznego wyniku reaktywności
wobec HAV lub ≥ wartości odcięcia dla wirusa B19V, bądź przypisanie stanu „Accepted”, jeśli
uzyskano wynik reaktywności wobec HAV lub ≥ wartości odcięcia dla wirusa B19V.
Badanie puli wtórnej
Probówki z próbkami od dawców w zawierającej wiele próbek puli z ostatecznym wynikiem
nieważnym dla jednego z wirusów docelowych wymagają powtórnego badania, jeśli ostateczny
wynik drugiego z docelowych wirusów jest niereaktywny dla HAV lub < wartości odcięcia dla
wirusa B19V.
Uwaga: Rekursywne wyniki nieprawidłowe można uzyskać z kilku przyczyn, m.in.
w przypadku donacji z bardzo wysokimi mianami wirusowymi. Jeżeli nieprawidłowe
wyniki rekursywne wystąpią w puli składającej się z więcej niż 1 donacji, należy
przejść do rozdzielczości puli, aby wyodrębnić donację składową, która
spowodowała uzyskanie takiego wyniku. Testy należy zakończyć po wyodrębnieniu
takiej donacji składowej, ponieważ przeprowadzenie dodatkowych testów
prawdopodobnie nie spowoduje uzyskania prawidłowego wyniku. Dawca powinien
w dalszym ciągu mieć status „Complete, Unresolved”.
W przypadku gdy zebrany materiał obejmujący wiele próbek zostanie oznaczony jako reaktywny
wobec HAV lub ≥ wartości odcięcia dla wirusa B19V, nastąpi przydzielenie przez system cobas
s 201 wszystkim próbkom od dawców, których materiał znalazł się w puli, żądania pulowania do
badania puli wtórnej. Próbki od tych dawców są pipetowane za pomocą urządzenia Hamilton
MICROLAB STAR/STARlet IVD (zarówno z płytek głębokodołkowych, jak i z pierwotnych probówek
zawierających materiał od dawców) do uzyskania mniejszych pul, zawierających próbki mniejszej
liczby dawców lub pojedynczego dawcy, a następnie badane ponownie za pomocą testu cobas®
TaqScreen DPX jako element procesu rozstrzygania, który ma na celu zidentyfikowanie próbek od
poszczególnych dawców, reaktywnych wobec HAV lub z wynikiem ≥ wartości odcięcia dla
wirusa B19V. Dokładne instrukcje na temat przeprowadzania testów rozstrzygających można
znaleźć w Podręczniku użytkownika systemu cobas s 201.
06362265049-06PL
16
Doc Rev. 6.0
Jeżeli subpula zawierająca wiele próbek jest raportowana jako niereaktywna dla HAV
i z wynikiem < wartości odcięcia dla wirusa B19V, poszczególne próbki są oznaczane jako
„Completed” z ostatecznym wynikiem niereaktywnym dla HAV i < wartości odcięcia dla
wirusa B19V.
Uwaga: Użytkownik może przeprowadzić dodatkowe badanie, jako element ogólnego
programu kontroli jakości, aby stwierdzić przyczynę początkowego dodatniego
wyniku dla puli.
OGRANICZENIA METODY
1. Test ten zaprojektowano wyłącznie do użytku z zestawem cobas® TaqScreen DPX Test, zestawem
®
®
kontrolnym cobas TaqScreen DPX Control Kit oraz z odczynnikiem płuczącym cobas TaqScreen
Wash Reagent i systemem cobas s 201.
2. Wykazano, że heparyna hamuje reakcję PCR. Do tej procedury nie należy stosować osocza
heparynizowanego.
3. Wiarygodne wyniki są zależne od zachowania odpowiednich procedur pobierania próbek oraz
transportu.
4. Do zautomatyzowanego przygotowywania pul osocza do testu cobas® TaqScreen DPX wolno
używać wyłącznie urządzenia pipetującego Hamilton MICROLAB STAR/STARlet IVD. Należy
przestrzegać instrukcji sprzętowych i środków ostrożności opisanych w Podręczniku użytkownika
systemu cobas s 201 i w Podręczniku użytkownika urządzenia pipetującego Hamilton MICROLAB
STAR/STARlet IVD.
5. Detekcja RNA HAV i oznaczanie ilościowe DNA wirusa B19V zależy od liczby cząsteczek wirusa
obecnych w próbce, na którą wpływać mogą metody pobierania próbek, czynniki związane
z pacjentem (tj. wiek, obecność objawów) i/lub faza zakażenia oraz wielkość puli.
6. Mutacje w obrębie wysoce konserwatywnych regionów genomu wirusowego, z którym wiążą się
startery i/lub sondy używane w teście cobas® TaqScreen DPX, chociaż rzadkie, mogą
spowodować niewykrycie HAV lub nieprawidłowe oznaczanie ilościowe DNA wirusa B19V.
7. Z uwagi na różnice między technologiami zaleca się, aby przed zmianą stosowanych metod
użytkownik przeprowadził w laboratorium badanie korelacji stosowanych metod w celu określenia
występujących między nimi różnic jakościowych. Użytkownicy powinni postępować zgodnie
z własnymi określonymi zasadami/procedurami.
06362265049-06PL
17
Doc Rev. 6.0
CHARAKTERYSTYKA SKUTECZNOŚCI
Badanie odtwarzalności klinicznej
Odtwarzalność testu cobas® TaqScreen DPX do stosowania z systemem cobas s 201 była oceniana dla
DNA wirusa B19V i RNA wirusa HAV w 3 różnych zewnętrznych ośrodkach. Oprócz ośrodka, zmienne
badania ujęte w ocenie były następujące: partia odczynników, data wykonania badania, cykl pracy
i wyniki w obrębie cyklu. Do oceny czułości oznaczenia użyto panelu obejmującego różne stężenia
2 docelowych wirusów.
Czynniki wpływające na precyzję oznaczenia wirusa B19V przedstawiono w tabeli 3. Tabela 4
przedstawia wyniki oznaczenia dodatnich dla wirusa HAV elementów panelu według serii, ośrodka, daty
i cyklu pracy.
Tabela 3
Czynniki wpływające na precyzję oznaczenia ilościowego wirusa DNA B19V (log10 IU/ml)
Przewidywane
stężenie
wirusa B19V
(log10 IU/ml)
Średnie
stężenie
wirusa B19V
(log10 IU/ml)
2,60
2,48
3,00
3,05
4,00
SD
Liczba
testów*
Całkowite
SD jako
log10 ze
stężenia
wirusa
B19V
Seria Ośrodek
Dzień
Cykl W obrębie
pracy
cyklu
179
0,009
0,081
0,065
0,035
0,168
0,201
175
0,042
0,054
0,043
0,000
0,138
0,160
3,87
178
0,023
0,156
0,030
0,022
0,083
0,182
5,00
4,74
180
0,026
0,057
0,034
0,039
0,059
0,101
6,00
5,75
177
0,072
0,085
0,000
0,051
0,097
0,156
7,00
6,84
179
0,057
0,258
0,042
0,076
0,075
0,288
* Liczba ważnych testów. Planowano co najmniej 180 testów/elementów panelu. Nieważnych testów
nie powtarzano.
06362265049-06PL
18
Doc Rev. 6.0
Tabela 4
Wyniki oznaczenia dodatnich dla wirusa HAV elementów panelu według
serii, ośrodka, daty i cyklu pracy
Liczba dodatnich wyników testów/całkowita liczba ważnych testów
Stężenie Średnia Odch. Ct
HAV w. Ct* stand. CV%
(SD) Ct
Seria
ReakID tywne /
ważne
Ośrodek
%
ReakID tywne /
ważne
Dzień
%
0,5xLOD 37,9 1,35
3,6
1
2
3
49/60
40/56
40/60
81,7
71,4
66,7
1
2
3
40/59
46/60
43/57
67,8
76,7
75,4
1,0xLOD 37,4 1,26
3,4
1
2
3
59/60
56/59
58/60
98,3
94,9
96,7
1
2
3
56/60
60/60
57/59
93,3
100,0
96,6
3,0xLOD 35,9 0,87
2,4
1
2
3
60/60
58/58
60/60
100,0
100,0
100,0
1
2
3
60/60
60/60
58/58
100,0
100,0
100,0
Cykl pracy
ReakID tywne /
ważne
1
2
3
4
5
1
2
3
4
5
1
2
3
4
5
25/35
27/35
23/36
25/34
29/36
35/36
34/36
34/36
35/35
35/36
36/36
35/35
36/36
35/35
36/36
%
71,4
77,1
63,9
73,5
80,6
97,2
94,4
94,4
100,0
97,2
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
ReakID tywne /
ważne
%
1
2
62/87
67/89
71,3
75,3
1
2
84/89
89/90
94,4
98,9
1
2
88/88
90/90
100,0
100,0
*Próg cyklu
W badaniu uzyskano jeden fałszywie dodatni wynik na 177 ważnych testów DPX wykonanych na
panelu elementów ujemnych. Wynik fałszywie reaktywny uzyskano przy reaktywności wirusa B19V
poniżej progu oceny ilościowej. W tabeli 5 przedstawiono swoistość analityczną szacowaną na
podstawie panelu elementów ujemnych.
Tabela 5
Swoistość analityczna szacowana na podstawie panelu elementów ujemnych
Liczba testów
Wynik dodatni
Wyniki ujemne
Swoistość (%)
95% CI* (%)
177
1
176
99,4
96,9–100,0
Uwaga:
Wynik określa się jako ogólnie ujemny, gdy wynik dla wirusa B19V to „Target not Detected” (Nie
wykryto wirusa docelowego), a dla wirusa HAV — „Non-reactive” (Próbka niereaktywna).
*95% dokładny przedział ufności
Badanie rozdzielczości puli klinicznej
Rozdzielczość puli klinicznej przy identyfikacji RNA HAV i DNA B19V oceniano niezależnie na podstawie
5 pul po 96 elementów i 5 pul po 480 elementów predefiniowanych jako próbki dodatnie lub ujemne dla
wirusów HAV i B19V.
Wszystkie znane próbki dodatnie i ujemne zostały zidentyfikowane poprawnie w obu badaniach
wykazując 100% czułości i 100% swoistości.
Zgodność wyników i znane wyniki próbek w pulach 96 i 480 ukazano odpowiednio w tabeli 6 i tabeli 7.
Tabela 6
Zgodność rozdzielczości puli w puli o 96 elementach
Wyniki rozdzielczości puli
06362265049-06PL
Dodatnie
27
0
27
Reaktywne
Niereaktywne
Ogółem
19
Ujemne
0
453
453
Ogółem
27
453
480
Doc Rev. 6.0
Tabela 7
Zgodność rozdzielczości puli w puli o 480 elementach
Reaktywne
Niereaktywne
Ogółem
Wyniki rozdzielczości puli
Dodatnie
Ujemne
Ogółem
27
0
27
0
2370
2370
27
2370
2397*
*W przypadku 3 spośród 2400 próbek nie otrzymano jednoznacznych wyników z powodu
niedostatecznej objętości.
Powtarzalność
Powtarzalność testu cobas® TaqScreen DPX przy wykrywaniu HAV określono, badając panele osocza
składające się z 8 próbek, w tym jednej ujemnej dla HAV i 7 o znanych stężeniach HAV wynoszących
0,35, 0,5, 0,71, 1, 1,41, 2,5 i 3,75 IU/ml.
Badanie zostało przeprowadzone przez 9 operatorów przy użyciu 3 serii zestawu cobas® TaqScreen
DPX Test w ciągu dwóch dni, z zastosowaniem 6 zestawów urządzeń.
Wszystkie ważne wyniki określono, obliczając procent dodatnich wyników testu dla każdego elementu
panelu. Dane były analizowane według daty przeprowadzenia i serii zestawu.
Badanie to wykazało powtarzalność testu cobas® TaqScreen DPX niezależnie od serii zestawu
(tabela 8) i daty badania (tabela 9).
Tabela 8
Powtarzalność między seriami
Stężenie HAV (IU/ml)
Wyniki dodatnie według serii odczynnika
Seria nr 1
Seria nr 2
Seria nr 3
3,75
100,0% (63/63)
100,0% (63/63)
100,0% (63/63)
2,50
100,0% (63/63)
100,0% (63/63)
100,0% (62/62)
1,41
100,0% (62/62)
100,0% (63/63)
96,8% (61/63)
1,00
93,7% (59/63)
90,5% (57/63)
95,2% (60/63)
0,71
85,7% (54/63)
90,5% (57/63)
81,0% (51/63)
0,50
74,6% (47/63)
74,6% (47/63)
76,2% (48/63)
0,35
63,5% (40/63)
69,8% (44/63)
69,8% (44/63)
0,00
0,0% (0/63)
0,0% (0/63)
0,0% (0/63)
Tabela 9
Powtarzalność między dniami
Stężenie HAV (IU/ml)
3,75
2,50
1,41
1,00
0,71
0,50
0,35
0,00
06362265049-06PL
Wyniki dodatnie według daty
Dzień 1
Dzień 2
100,0%
100,0% (63/63)
(126/126)
100,0%
100,0% (63/63)
(125/125)
100,0% (62/62)
98,4% (124/126)
93,7% (59/63)
92,9% (117/126)
85,7% (54/63)
85,7% (108/126)
74,6% (47/63)
75,4% (95/126)
63,5% (40/63)
69,8% (88/126)
0,0% (0/63)
0,0% (0/126)
20
Doc Rev. 6.0
Dokładność oznaczenia ilościowego wirusa B19V
Dokładność oznaczenia ilościowego wirusa B19V w przy użyciu testu cobas® TaqScreen DPX określono,
3
badając panele osocza składające się z 4 próbek o znanych stężeniach wirusa B19V wynoszących 10 ,
104, 105 i 106 IU/ml.
Wszystkie ważne wyniki określono, obliczając odchylenie standardowe miana wirusa B19V (log10 IU/ml)
dla każdego elementu panelu. Dane z 2 serii zestawu były analizowane osobno i łącznie.
Badanie to wykazało powtarzalność testu cobas® TaqScreen DPX niezależnie od serii zestawu
(tabela 10).
Tabela 10
Odchylenie standardowe miana wirusa B19V log10 IU/ml (n = 20) dla różnych serii zestawu
Elementy panelu
wirusa B19V (IU/ml)
Seria zestawu
nr 1
Seria zestawu
nr 2
Serie 1 i 2 łącznie
6
10
0,073
0,103
0,088
105
0,051
0,083
0,070
104
0,071
0,071
0,070
103
0,218
0,112
0,176
Ogółem (103–106)
0,123
0,094
0,110
Czułość analityczna — międzynarodowy standard WHO
®
Granice wykrywalności (Limit of Detection, LOD) 95% dla testu cobas TaqScreen DPX zostały
określone dla RNA HAV i DNA wirusa B19V z zastosowaniem międzynarodowego standardu WHO
36
27
odpowiednio dla HAV (kod NIBSC 00/560) i dla wirusa B19V (kod NIBSC 99/800) .
Trzy niezależne serie rozcieńczeń każdego standardu wirusowego zostały przygotowane w prawidłowym,
ujemnym pod względem obecności wirusów, ludzkim osoczu. Wszystkie serie rozcieńczeń badano przy
użyciu trzech różnych serii zestawu testowego cobas® TaqScreen DPX z 21 kopiami na serię, co daje
w sumie 189 kopii na dane stężenie. W tabelach 11 i 12 przedstawiono analizę częstości wyników
reaktywnych odpowiednio dla HAV i B19V.
Tabela 11
Międzynarodowy standard WHO dla HAV (00/560)
Podsumowanie częstości wyników reaktywnych
Stężenie
RNA HAV
(IU/ml)
3,75
Liczba
wyników
dodatnich
189
Liczba
badań
% wyników
dodatnich
189
100,0%
Dolny zakres przedziału
ufności 95%
(jednostronny)
98,1%
2,50
188
188
1,41
100,0%
98,1%
186
188
98,9%
96,2%
1,00
176
189
93,1%
88,5%
0,71
162
189
85,7%
79,9%
0,50
142
189
75,1%
68,3%
0,35
128
189
67,7%
60,6%
0,00
0
189
0,0%
0,0%
06362265049-06PL
21
Doc Rev. 6.0
Tabela 12
Międzynarodowy standard WHO dla wirusa B19V (99/800)
Podsumowanie częstości wyników reaktywnych
Stężenie DNA
wirusa B19V
(IU/ml)
Liczba
wyników
dodatnich
Liczba
badań
%
wyników
dodatnich
Dolny zakres
przedziału ufności
95% (jednostronny)
75,00
189
189
100,0%
98,1%
50,00
188
188
100,0%
98,1%
28,28
189
189
100,0%
98,1%
20,00
187
189
98,9%
96,2%
14,14
189
189
100,0%
98,1%
10,00
170
189
89,9%
84,7%
7,07
142
189
75,1%
68,3%
0,00
0
189
0,0%
0,0%
Do oszacowania granicy wykrywalności (Limit of Detection, LOD) 95% i dwustronnego znacznikowego
przedziału ufności 95% (tabela 13) została użyta analiza PROBIT łącznych danych ze wszystkich kopii
badanych dla każdego wirusa.
Tabela 13
LOD 95% na podstawie analizy PROBIT
Wirus
LOD (IU/ml)
95% CL (IU/ml)
HAV
B19V
1,06
11,48
0,94–1,24
10,56–12,91
Liniowość oznaczenia ilościowego wirusa B19V
Liniowość oznaczenia ilościowego wirusa B19V w teście cobas® TaqScreen DPX określono, badając
seryjne rozcieńczenia genotypu 1 wirusa B19V kalibrowane według międzynarodowego standardu
WHO (kod NIBSC 99/800). Badanie przeprowadzono z użyciem 2 serii odczynników. Określono, że
test jest liniowy w zakresie od 75 do 3,0 x 108 IU/ml zgodnie z wytycznymi CLSI EP6-A (rysunek 2).
Rysunek 2
Liniowość testu cobas® TaqScreen DPX w oznaczaniu wirusa B19V
Wynik testu (log10 IU/ml)
8
7
6
5
y = 1,060x---0,442
R2 = 0,996
4
3
2
1
1
2
3
4
5
6
7
8
Nominalne stężenie parwowirusa B19 (log10 IU/ml)
06362265049-06PL
22
Doc Rev. 6.0
Liniowość oznaczenia ilościowego wirusa B19V według genotypu
Liniowość testu cobas® TaqScreen DPX określono dla poszczególnych genotypów wirusa B19V,
badając 5–6 rozcieńczeń próbek klinicznych każdego genotypu wirusa B19V. Z zastosowaniem jednej
serii odczynników przeprowadzono 4–6 powtórzeń dla każdej próbki i każdego rozcieńczenia (tabela 14).
Tabela 14
Oznaczenie ilościowe genotypów wirusa B19V
IU/ml
log10 IU/ml
Średnie
obserwowane
stężenie
wirusa B19V
log10 IU/ml
5 x 102
2,70
2,49
–0,21
1 x 104
4,00
3,94
–0,08
1 x 105
5,00
4,77
–0,23
1 x 106
6,00
5,73
–0,27
1 x 107
7,00
6,84
–0,16
5 x 102
2,70
3,00
0,30
1 x 104
4,00
4,14
0,14
1 x 105
5,00
4,96
–0,04
3 x 105
5,48
5,32
–0,16
1 x 106
6,00
5,72
–0,28
1 x 107
7,00
6,44
–0,56
5 x 102
2,70
3,04
0,34
1 x 104
4,00
4,24
0,24
1 x 105
5,00
5,03
0,03
3 x 105
5,48
5,44
–0,04
1 x 106
6,00
5,83
–0,17
1 x 107
7,00
6,53
–0,47
Stężenie wejściowe
wirusa B19V
Genotyp
1
2
3a
Średnia różnica:
log10 z obserwowanego
stężenia wirusa B19V –
log10 z wejściowego
stężenia wirusa B19V
Reprezentatywność genotypu
Określono skuteczność testu cobas® TaqScreen DPX w oznaczaniu różnych genotypów HAV i wirusa B19V.
HAV
Badano próbki kliniczne i transkrypty RNA różnych genotypów HAV rozcieńczone do ok. 0,3-,
1- i 3-krotności wartości granicy oznaczalności (Limit of Detection, LOD) testu cobas® TaqScreen
DPX. Analiza PROBIT wykazała, że wartość LOD dla próbek poszczególnych genotypów była
równoważna z LOD dla międzynarodowego standardu WHO (00/560) (tabela 15).
Tabela 15
Reprezentatywność genotypów HAV
Genotyp
Częstość wyników
reaktywnych przy
0,3 x LOD
reaktywnych przy
1 x LOD
reaktywnych przy
3 x LOD
LOD (C.I. 95%)
IU/ml
65,8% (158/240)
96,3% (231/240)
100,0% (240/240)
0,92 (0,77–1,18)
41,7% (30/72)
86,1% (62/72)
100,0% (72/72)
1,58 (1,18–2,51)
79,2% (19/24)
91,7% (22/24)
100,0% (24/24)
1,18 (0,61–257)
79,2% (19/24)
100,0% (24/24)
100,0% (24/24)
0,37 (brak danych*)
73,6% (53/72)
97,2% (70/72)
100,0% (72/72)
0,80 (0,59–1,56)
43,8% (21/48)
91,7% (44/48)
100,0% (48/48)
1,25 (0,91–2,27)
Zastosowano jedenaście próbek klinicznych (10 próbek genotypu IA i 1 genotypu IB) oraz 9 transkryptów
(2 genotypu IB, 1 genotypu IIA, 1 genotypu IIB, 3 genotypu IIIA i 2 genotypu IIIB).
* Nie udało się uzyskać przedziałów ufności za pomocą analizy PROBIT.
IA
IB
IIA
IIB
IIIA
IIIB
06362265049-06PL
23
Doc Rev. 6.0
B19V
Badano próbki kliniczne i plazmidy z różnymi genotypami wirusa B19V rozcieńczonymi do ok. 0,3-,
®
1- i 3-krotności wartości granicy oznaczalności (Limit of Detection, LOD) testu cobas TaqScreen
DPX. Analiza PROBIT wykazała, że wartość LOD dla próbek poszczególnych genotypów była
równoważna z LOD dla międzynarodowego standardu WHO (99/800) lub korzystniejsza (tabela 16).
Tabela 16
Reprezentatywność genotypów wirusa B19V
Genotyp
1
2
3A
3B
Częstość
wyników
reaktywnych
przy 0,3 x LOD
15,6% (15/96)
88,5% (85/96)
83,3% (40/48)
91,7% (44/48)
Częstość
wyników
reaktywnych
przy 1 x LOD
90,6% (87/96)
100,0% (96/96)
100,0% (48/48)
97,9% (47/48)
Częstość
wyników
reaktywnych
przy 3 x LOD
100,0% (97/97)
99,0% (95/96)
100,0% (48/48)
100,0% (48/48)
LOD (C.I. 95%)
IU/ml
13,57 (11,39–17,27)
6,07 (brak danych*)
3,94 (brak danych*)
5,31 (brak danych*)
Zastosowano trzy próbki kliniczne (genotypy 1A, 3A i 3B) i 2 plazmidy (genotyp 2).
* Nie udało się uzyskać przedziałów ufności za pomocą analizy PROBIT.
Drobnoustroje mogące wywoływać reaktywność krzyżową i zakłócenia testu
Oceniano możliwą reaktywność krzyżową i zakłócenia testu cobas® TaqScreen DPX wywoływane przez
inne mikroorganizmy, badając panel 19 mikroorganizmów, w tym 13 izolatów wirusowych, 5 szczepów
bakteryjnych i 1 izolatu drożdżaków (tabela 17). Mikroorganizmy dodano do prawidłowego osocza
ludzkiego i przebadano testem cobas® TaqScreen DPX przy nieobecności HAV i w stężeniu równym
3-krotności wartości jego granicy oznaczalności, jak również 5-krotności wartości dolnej granicy oceny
ilościowej wirusa B19V.
®
Uzyskano w teście cobas TaqScreen DPX wyniki niereaktywne dla wszystkich próbek zawierających
mikroorganizmy, lecz niezawierających HAV ani wirusa B19V. Badane mikroorganizmy nie dają reakcji
krzyżowej w teście cobas® TaqScreen DPX. Uzyskano wyniki reaktywne dla wszystkich próbek
zawierających mikroorganizmy i wirus HAV oraz wirus B19V. Badane mikroorganizmy nie zakłócają
®
działania testu cobas TaqScreen DPX.
Tabela 17
Badane mikroorganizmy
Swoistość analityczna — badane mikroorganizmy
Adenowirus 5
WNV
Cytomegalowirus (CMV)
HIV-1 (grupa M)
Wirus Epsteina–Barr (EBV)
Wirus ospy wietrznej–
półpaśca (VZV)
Ludzki wirus T-limfotropowy
typu I (HTLV I)
Wirus grypy typu A
HCV
06362265049-06PL
Staphylococcus aureus
(BMTU 2947)
Koagulazoujemny
Staphylococcus epidermidis
HIV-2
Propionibacterium acnes
HBV
Streptococcus viridans
Wirus opryszczki pospolitej typu 1
(HSV-1)
Wirus opryszczki pospolitej typu 2
(HSV-2)
Escherichia coli
Candida albicans (BMTU 2949)
24
Doc Rev. 6.0
Próbki kliniczne od osób z innymi schorzeniami mogące wywoływać reaktywność krzyżową
i zakłócenia testu
Oceniano możliwą reaktywność krzyżową i zakłócenia testu cobas®TaqScreen DPX, badając próbki
kliniczne od osób z innymi schorzeniami, zawierające cytomegalowirus, wirus WZW typu B, wirus WZW
typu C i ludzki wirus niedoboru odporności typu 1 z grupy M. Próbki kliniczne od osób z innymi
schorzeniami przebadano testem cobas® TaqScreen DPX przy nieobecności wirusów i w stężeniu
równym 3-krotności wartości granicy oznaczalności wirusa HAV oraz 5-krotności wartości dolnej granicy
oceny ilościowej wirusa B19V.
Uzyskano w teście cobas® TaqScreen DPX wyniki niereaktywne dla wszystkich próbek klinicznych od
osób z innymi schorzeniami i niezawierających wirusów HAV i B19V. Badane próbki kliniczne od osób
z innymi schorzeniami nie dają reakcji krzyżowej w teście cobas® TaqScreen DPX. Uzyskano wyniki
reaktywne dla wszystkich próbek od osób z innymi schorzeniami zawierających wirusy HAV i B19V.
Badane próbki kliniczne od osób z innymi schorzeniami nie zakłócają testu cobas® TaqScreen DPX.
Substancje potencjalnie wpływające na wynik testu
Endogenne substancje wpływające na wynik testu
Próbki osocza z nieprawidłowo wysokim poziomem trójglicerydów (33 g/l), hemoglobiny (2 g/l),
niezwiązanej bilirubiny (200 mg/dl), albuminy (60 g/l), ludzkiego DNA (4 mg/l) lub krwinek czerwonych
(5% obj.) zostały przebadane testem cobas® TaqScreen DPX przy nieobecności HAV i w stężeniu
równym 3-krotności wartości jego granicy oznaczalności, jak również 5-krotności wartości dolnej granicy
oceny ilościowej wirusa B19V. Wymienione powyżej substancje endogenne i krwinki czerwone (5% obj.)
nie wpłynęły na czułość ani swoistość testu cobas® TaqScreen DPX.
Substancje egzogenne wpływające na wynik testu
Prawidłowe próbki ludzkiego osocza zawierające podwyższone stężenie acetaminofenu (1324 µmol/l),
kwasu acetylosalicylowego (3,62 mmol/l), kwasu askorbinowego (342 µmol/l), atorwastatyny (600 eq/l),
fluoksetyny (11,2 µmol/l), ibuprofenu (2425 µmol/l), loratadyny (0,78 µmol/l), nadololu (3,88 µmol/l),
naproksenu (2170 µmol/l), paroksetyny (3,04 µmol/l), chlorowodorku fenylefryny (491 µmol/l) i sertraliny
(1,96 µmol/l) zostały przebadane testem cobas® TaqScreen DPX przy nieobecności HAV i w stężeniu
równym 3-krotności wartości jego granicy oznaczalności, jak również 5-krotności wartości dolnej granicy
oceny ilościowej wirusa B19V. Wymienione powyżej substancje egzogenne nie wpłynęły na czułość ani
swoistość testu cobas® TaqScreen DPX.
Swoistość
Przebadano pięćset trzydzieści osiem pochodzących od różnych dawców próbek osocza ujemnego dla
wirusa B19V z zastosowaniem jednej z dwóch serii zestawu testowego cobas® TaqScreen DPX.
Odnotowano swoistość na poziomie odpowiednio 96,3% i 99,8% dla wirusa B19V i HAV. Można
oczekiwać niższej swoistości dla wirusa B19V, wynikającej z endemicznego występowania wirusa B19V
w populacji ogólnej2, 3 i czułości zestawu testowego cobas® TaqScreen DPX.
06362265049-06PL
25
Doc Rev. 6.0
PIŚMIENNICTWO
1. Servant A, Laperche S, Lallemand F, Marinho V, De Saint Maur G, Meritet JF, Garbarg-Chenon A.
Genetic diversity within human Erythroviruses: identification of three genotypes. J Virol 2002;
76:9124–34.
2. Anderson MJ, Tsou C, Parker RA, Chorba TL, Wolfe H, Tattersal P, Mortimer PP. Detection of
antibodies and antigen of human parvovirus B18 by enzyme-linked immunosorbent assay. Journal of
Clinical Microbiology 1986;24:522 526.
3. Cohen BJ, Buckley MM. The prevalence of antibody to human parvovirus B19V in England and
Wales. Journal of Medical Microbiology 1988;25:151-153.
4. Young NS, Brown KE. Mechanisms of disease: parvovirus B19V. New England Journal of medicine
2004;350:586-597.
5. Yoto Y, Kudoh T, Haseyama K, Suzuki N, Oda T, Katoh T, Takahashi T, Sekiguchi S, Chiba S.
Incidence of human parvovirus B19V DNA detection in blood donors. British Journal of Haematology
1995;91:1017-1018.
6. McOmish F, Yap PL, Jordan A, Hart H, Cohen BJ, Simmonds P. Detection of parvovirus B19V in
donated blood: a model system for screening by polymerase chain reaction. Journal of Clinical
Microbiology 1993;31:323-328.
7. Wu CG, Mason B, Jong J, Erdman D, McKernan L, Oakley M, Soucie M, Evatt B, Yu MY. Parvovirus
B19V transmission by a high-purity factor VIII concentrate. Transfusion 2005;45:1003-1010.
8. Saldanha J, Minor P. Detection of human parvovirus B19V in plasma pools and blood products
derived from these pools: implications for efficiency and consistency of removal of B19V DNA during
manufacture> British Journal of Haematology 1996;93:714-719.
9. Eis-Hubinger AM, Sasowski U, Brackmann HH. Parvovirus B19V DANN contamination in
coagulation factor VIII products. Thrombosis and Haemostasis 1999;81:476-477.
10. Schmidt I, Blumel J, Seitz H, Wilkommen H, Lower J. Parvovirus B19V DNA in plasma pools and
plasma derivatives. Vox Sanguinis 2001;81:228-235.
11. Azzi A, Moefini M, Mannucci PM. The transfusion-associated transmission of parvovirus B19V.
Transfusion Medicine Reviews 1999;13:194-204.
12. Yee TT, Cohen BJ, Pasi KL, Lee CA. Transmission of symptomatic parvovirus B19V infection by
clotting factor concentrate. British Journal of Haematology 1996;93:457-459.
13. Blümel J., Schmid, I., Effenberger W., Seitz H., Willkommen H., Brackmann H. H., Löwer J. EisHübinger AM. Parvovirus B19V transmission by heat treated clotting factor concentrates. Transfusion
2002;42:1473-1481.
14. Francki RIB, Fauquet CM, Knudson DL, Brown F. Classification and nomenclature of viruses.
Archives of Virology 1991;Suppl. 2:320-326.
15. Gust ID. Epidemiology patterns of hepatitis A in different parts of the world. Vaccine 1992;10:856-862.
16. Shapiro CN, Margolis HS. Worldwide epidemiology of hepatitis A virus infection. Journal of
Hepatology 1993;18:11-14.
17. Hadler SC. Global impact of hepatitis A virus infection changing patterns. In: Hollinger FB, Lemon SM,
and Margolis HS, eds. Viral Hepatitis and Liver Disease. Baltimore, Williams & Wilkins, 1991: 14-20.
18. Robertson BH, Jansen RE, Khanna B, Totsuka A, Nainan OV, Siegl G, Widell A, Margolis H,
Isomura S, Ito K, Ishizu T, Moritsugu Y, Lemon, SM. Genetic relatedness of hepatitis A virus strains
recovered from different geographical regions. Journal of General Virology 1992;73:1365-1377.
19. Costa-Mattioli M, Cristina J, Romero H, Perez-Bercof R, Casane D, Colina R, Garcia L, Vega I,
Glikman G, Romanowsky V, Castello A, Nicand E, Gassin M, Billaudel S, Ferre V. Molecular
evolution of hepatitis A virus: a new classification based on the complete VP1 protein. Journal of
Virology 2002;76:9516-9525.
20. Bower WA, Nainan OV, Han X, Margolis HS. Duration of viremia in hepatitis A virus infection. Journal
of Infectious Diseases 2000;182:12-17.
21. Gowland P, Fontana S, Niederhauser C, Manouri Taleghani B. Molecular and serologic tracing of a
transfusion-transmitted hepatitis A virus. Transfusion 2004;44:1555-1561.
06362265049-06PL
26
Doc Rev. 6.0
22. Soucie JM, Robertson BH, Bell BP, McCaustland KA, Evatt BL. Hepatitis A virus infections
associated with clotting factor concentrate in the United States. Transfusion 1998;38:573-579.
23. Chudy M, Budek I, Keller-Stanislawski B, McCaustland KA, Neidhold S, Robertson BH, Nübling CM,
Seitz R, Löwer J. A new cluster of hepatitis A infection in haemophiliacs traced to a contaminated
plasma pool. Journal of Medical Virology 1999;57:91-99.
24. US Food and Drug Administration. Nucleic acid testing (NAT) to reduce the possible risk of
parvovirus B19V transmission by plasma-derived products, Rockville, MD:FDA Center for Biologics
Evaluation and Research 2008. FDA draft guidance for industry.
25. “OMCL Guideline for Validation for Nucleic Acid Amplification Techniques (NAT) for Quantitation of
B19V Virus DNA in Plasma Pools” Strasbourg, France: European Directorate for the Quality of
Medicines and HealthCare 2008.
26. Human plasma (pooled and treated for virus inactivation). Strasbourg, France: European Directorate
for the Quality of Medicines and HealthCare 2009. Ph Eur monograph 1646.
27. Saldanha J, Lelie N, Yu M-Y, Heath A and the B19V Collaborative Study group. Establishment of the
first World Health Organisation international standard for human parvovirus B19V DNA nucleic acid
amplification techniques. Vox Sanguinis 2002;82:24-31.
28. Longo MC, Berninger MS, Hartley JL. Use of uracil DNA glycosylase to control carry-over
contamination in polymerase chain reactions. Gene. 1990; 93:125-128.
29. Savva R, McAuley-Hecht K, Brown T, Pearl L. The structural basis of specific base-excision repair by
uracil-DNA glycosylase. Nature. 1995; 373:487-493.
30. Mol CD, Arvai AS, Slupphaug G, Kavli B, Krokan HE, Mosbaugh DW, Tainer JA. Crystal structure
and mutational analysis of human uracil-DNA glycosylase: structural basis for specificity and
catalysis. Cell. 1995; 80:869-878.
31. Higuchi R, Dollinger G, Walsh PS, Griffith, R. Simultaneous amplification and detection of specific
DNA sequences. Biotechnology (NY). 1992; 10:413-417.
32. Heid CA, Stevens J, Livak JK, Williams PM. Real time quantitative PCR. Genome Res. 1996; 6:986994.
33. Richmond, J.Y. and McKinney, R.W. (eds.). 1999. Biosafety in Microbiological and Biomedical
Laboratories HHS Publication Number (CDC) 93-8395.
34. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Protection of Laboratory Workers from
Occupationally Acquired Infections. Approved Guideline-Third Edition. CLSI Document M29-A3
Wayne, PA:CLSI, 2005.
35. International Air Transport Association. Dangerous Goods Regulations. 41st ed. Quebec, Canada.
2000.
36. Saldanha J, Heath A, Lelie N, Pisani G, Yu M-Y, and the Collaborative Study Group. A World Health
organisation international standard for hepatitis A virus RNA nucleic acid amplification technology
assays. Vox Sanguinis 2005;89:52-58.
37. BD Vacutainer® PPT™ Plasma Preparation Tube Package Insert 5/2012 VPD40162-01web.
06362265049-06PL
27
Doc Rev. 6.0
Informacje dotyczące wersji dokumentu
Doc Rev. 6.0
4/2015
06362265049-06PL
Z części ODCZYNNIKI usunięto symbole ostrzegające o niebezpieczeństwie,
hasła ostrzegawcze i kody.
Dodano symbol GTIN oraz jego opis na stronie z ujednoliconymi symbolami.
Zaktualizowano część dotyczącą znaków towarowych i patentów w celu
odzwierciedlenia tylko źródeł internetowych.
W razie jakichkolwiek pytań prosimy o kontakt z miejscowym przedstawicielstwem
firmy Roche.
28
Doc Rev. 6.0
Roche Molecular Systems, Inc.
1080 US Highway 202 South
Branchburg, NJ 08876 USA
Roche Diagnostics (Schweiz) AG
Industriestrasse 7
6343 Rotkreuz, Switzerland
Roche Diagnostics
2, Avenue du Vercors
38240 Meylan, France
Roche Diagnostics GmbH
Sandhofer Strasse 116
68305 Mannheim, Germany
Distributore in Italia:
Roche Diagnostics S.p.A.
Viale G. B. Stucchi 110
20052 Monza, Milano, Italy
Distributed by
Roche Diagnostics, SL
Avda. Generalitat, 171-173
E-08174 Sant Cugat del Vallès
Barcelona, Spain
Distribuidor em Portugal:
Roche Sistemas de Diagnósticos Lda.
Estrada Nacional, 249-1
2720-413 Amadora, Portugal
Roche Diagnostics
201, boulevard Armand-Frappier
H7V 4A2 Laval, Québec, Canada
(For Technical Assistance call:
Pour toute assistance technique,
appeler le: 1-877-273-3433)
Roche Diagnostica Brasil Ltda.
Av. Engenheiro Billings, 1729
Jaguaré, Building 10
05321-010 São Paulo, SP Brazil
Znaki towarowe i patenty
Patrz http://www.roche-diagnostics.us/patents
©2015 Roche Molecular Systems, Inc.
04/2015
Doc Rev. 6.0
06362265049-06PL
(05509220001-06ENGL)
06362265049-06
29
Doc Rev. 6.0
Na etykietach produktów diagnostycznych Roche PCR stosuje się obecnie
następujące oznaczenia.
Oprogramowanie pomocnicze
Wyrób do diagnostyki in vitro
Autoryzowany Przedstawiciel we
Wspólnocie Europejskiej
Dolna granica przypisanego zakresu
Arkusz kodów kreskowych
Wytwórca
Kod partii
Przechowywać z dala od światła
SW
Zagrożenie biologiczne
Zawartość wystarczająca na
<n> testów
Numer katalogowy
Przestrzegać zakresu temperatury
Sprawdź w instrukcji obsługi
Plik definicji testów
TDF
Zawartość zestawu
Górna granica przypisanego zakresu
Dystrybucja
Użyć przed
Wyłącznie do oceny działania
w badaniach IVD
Numer pozycji handlu globalnego
Ten produkt spełnia wymogi dyrektywy Wspólnoty Europejskiej 98/79/WE dotyczącej
diagnostycznych urządzeń medycznych do stosowania in vitro.
Linia pomocy technicznej dla klientów w Stanach Zjednoczonych 1-800-526-1247
06362265049-06PL
30
Doc Rev. 6.0

cobas® TaqScreen DPX Test

Transkrypt

Podobne dokumenty

PODSTAWA REGULOWANA DO DPX 630 WYSUWANY POZIOMA

WYZWALACZ PODNAPIĘCIOWY 400 V AC DPX 125, DPX

ISE Deproteinizer

Wyzwalacz wzrostowy DPX³ 200-277V AC/DC

Informacja o odczynnikach Analizatory, w których mogą być

Męska antykoncepcja w pigułce,Nowy marker wczesnego stadium

wirus zika - WSSE Szczecin

WIRUS ZIKA: objawy choroby i źródła zakażenia Doniesienia o