Academic Year

Academic Year:
2015/2016
Group of subjects: basic /
professional
Module title1):
Veterinary microbiology
Polish Translation3):
Faculty4):
Person in charge of the module5):
Mikrobiologia weterynaryjna
Teachers responsible for laboratory
classes, workshops and seminars6):
Unit responsible for the module7):
Faculty in charge8):
Module status9):
Teaching cycle10):
Objectives of the module12):
Teaching forms and number of
hours13):
Teaching methods14):
Detailed module
description15):
Catalogue
number:
ECTS 2)
10
Faculty of Veterinary Medicine
Prof. dr hab. Marian Binek
Prof. dr hab. Marian Binek, dr hab. Marcin Bańbura prof. nadzw. SGGW, dr
hab. Bożena Dworacka-Kaszak prof. nadzw. SGGW, dr hab. Danuta
Klimuszko, prof. nadzw. SGGW, dr Małgorzata Biegańska, dr Dorota Chrobak,
dr Joanna Cymerys, dr Małgorzata Gieryńska, dr Anna Golke, dr Magdalena
Kizerwetter-Świda, dr Magdalena Rzewuska, dr Agnieszka SałamaszyńskaGuz, dr Ada Schollenberger, dr Joanna Struzik, dr Lidia Szulc , and PhD
students
Department of Preclinical Science, Faculty of Veterinary Medicine
Faculty of Veterinary Medicine
a) mandatory
b) stage 1
Year: second
Semester: winter /
Module language11):
summer
English
The purpose of the veterinary microbiology module is to give the prospective
veterinary surgeon adequate knowledge and skills that are applicable to
veterinary medicine. Emphasis is placed on understanding the nature of
infectious organisms, mechanisms by which they cause disease and how
the host responds to infection. Veterinary medicine students are expected to
learn the role of microbiota in health and disease, recognize the importance
of biosecurity, public health threat posed by zoonotic diseases, and
microbial contamination of food of animal origin. The program is designed to
integrate bacteriology, mycology and virology. Also an opportunity is
provided for student to practice basic laboratory techniques and procedures
used in diagnostics of microbial disease. The course is designed to enable
the student fulfil the national and EU educational requirements and achieve
competence in veterinary microbiology.
a) Lectures – 60 hours
b) Laboratory exercises – 90 hours
Lectures: the lectures emphasize selected aspects in basic and pathogenic
bacteriology, mycology and virology presented in Power Point format, deal
with the basic characteristics of animal pathogens, mechanisms of
pathogenesis and how these relate to symptoms and laboratory diagnosis.
Lectures are intended to provide illustration, clarification and update
information that is further reinforcement with laboratory exercises.
Laboratory exercises: individual students carry out scheduled tasks under
instruction and supervision of qualified teaching staff. Exercises are
performed in adequately equipped laboratories to ensure full training in all
areas of veterinary microbiology.
Lectures: Introduction to microbiology. An overview of microbial life.
Microbial diversity, natural environments. Cell structure and evolutionary
history. Bacterial cell structural organization and function.
Microbial physiology: Bacterial sources of energy. Major catabolic pathways,
aerobic respiration, anaerobic energy transformation (anaerobic respiration,
fermentation), biosynthesis.
Control of microorganisms: Physical methods of controlling microorganisms.
Use of chemicals in antisepsis, disinfection and sterilization. Characteristics,
modes of action and selection of chemical disinfectants.
Microbial genetics – selected aspects.
Microbial DNA and RNA as material for in vitro manipulation. Vectors used
in molecular cloning, gene bank construction. Molecular biology methods for
laboratory diagnostics and prophylaxis in bacterial diseases.
Microorganisms and infectious diseases: pathogenesis of bacterial
infections. Antimicrobial agents and chemotherapy. Antimicrobial drug
resistance.
Microbial systematics, nomenclature and Bergey’s Manual.
Bacteria of veterinary importance. Rickettsiales, Chlamydia and
Chlamydophila, Spirochaetes. Genera: Treponema, Serpulina, Leptospira
and Borrelia.
Microaerophilic, motile helical/vibrioid Gram-negative rods. Genera:
Campylobacter and Helicobacter.
Gram-negative, aerobic/microaerophilic rods and cocci. Genera: Bartonella,
Bordetella, Brucella, Burkholderia, Coxiella, Francisella, Moraxella,
Pseudomonas, Taylorella.
Facultatively anaerobic Gram-negative rods. Family: Enterobacteriaceae,
Genera: Salmonella, Shigella, Yersinia, Escherichia, Klebsiella, Proteus,
Enterobacter,
Family: Vibrionaceae, Genera: Aeromonas, Plesiomonas, Vibrio .
Family: Pasteurellaceae. Genera: Pasteurella, Mannheimia, Actinobacillus,
Haemophilus and Histophilus.
Obligatory anaerobic Gram-negative rods. Genera: Dichelobacter,
Bacteroides, Porphyromonas, Prevotella, Fusobacterium and
Streptobacillus.
Infrequently encountered Gram-negative rods. Genera: Gallibacterium,
Ornithobacterium, Riemerella and Lawsonia. Synergic interaction.
Taxonomy; General characteristics, habitat and epidemiology, pathogenicity
and pathogenesis, clinical infections, diagnostic procedures.
Gram-positive cocci. Genera: Staphylococcus, Streptococcus,
Enterococcus and Peptostreptococcus.
Bovine mastitis caused by bacteria. Mammary gland defense mechanisms
natural barriers, soluble non specific antibacterial factors. Somatic cell
counts. Mastitis designation (contagious, environmental, summer mastitis).
Laboratory diagnosis, treatment of mastitis, prevention and control.
Non-spore-forming, regular, and irregular, facultatively anaerobic
Grampositive rods. Genera: Listeria, Erysipelotrix, Actinomyces,
Arcanobacterium and Trueperella. Taxonomy, general characteristics,
habitat and epidemiology, pathogenicity and pathogenesis, clinical
infections, diagnostic procedures.
Anaerobic Gram-positive rods and cocci. Genus Clostridium (neurotoxic,
histotoxic, enteric and enterotoxemic clostridia).
Aerobic and facultatively anaerobic, Gram-positive spore-forming rods.
Genera: Bacillus and Paenibacillus. Taxonomy, general characteristics,
habitat and epidemiology, pathogenicity and pathogenesis, clinical
infections, diagnostic procedures.
Diptheroidal and acid fast Gram-positive rods. Genera: Corynebacterium
and Mycobacterium. Taxonomy, general characteristics, habitat and
epidemiology, pathogenicity and pathogenesis, clinical infections, diagnostic
procedures.
Gram-positive, branching, filamentous rods. Actinomycete group. Genera:
Nocardia, Rhodococcus, Dermatophilus, Streptomyces. Bacteria without a
cell wall. Genera: Mycoplasma and Ureaplasma. Taxonomy, general
characteristics, habitat and epidemiology, pathogenicity and pathogenesis,
clinical infections, diagnostic procedures
Ruminants and swine intestinal tract autochthonic microflora. Rumen
bacteria, and their function.
Introduction to mycology; general fungal biology, ecology and morphology.
Fungal spreading and sexual or asexual reproduction. Taxonomy and
classification of fungi.
Pathogenesis of fungal diseases. Dermatomycoses. Pathological
mechanisms of fungal systemic mycoses.
Further cases of opportunistic mycoses - exotic and rare mycoses.
Mycotoxins and mycotoxicoses. Sick building syndrome and fungal Volatile
Organic Compounds
Introduction to virology – virus as a subcellular, infectious biological
microstructure. Basic definitions. Viruses vs microorganisms. Virion
morphology.
Virus replication – types of infection and their consequences on cells.
Productive and non-productive infection. Latency.
Viral oncogenesis. Characteristics of viral transformatiom of the cell.
Properties of transformed cells. Reverse transcribing viruses – retro- and
hepadna – replication and transforming potential.
Subviral infectious agents – basic biological properties. Prions – basic
properties and „replication”. Basic properties of selected important viruses
infecting animals.
Laboratory Exercises: Course organization. Safety in the Laboratory:
laboratory design and safety procedures. Techniques used in bacteriological
examination. Microscopes and microscopy. Application of the light
microscope. Observing bacteria with the light microscope.
Staining: simple stains and differential stains. Gram stain, acid-fast stain
procedure, spore stain, dark field microscopy, phase-contrast microscopy.
Microbial growth and cultivation techniques: chemical and physical factors
affecting growth, inoculation and transfer techniques, isolation of pure
bacterial cultures. Primary identification of bacteria.
Measuring microbial growth. Direct measurements of microbial growth: total
and viable counts. Indirect measurements of microbial growth: turbidity.
Biochemical tests for the identification of bacteria. Conventional and
miniaturized methods for the identification of bacteria
Physical and chemical methods of controlling microorganisms: sterilization,
disinfection and antisepsis
Laboratory animal bioassays. Dosis minima letalis (minimum lethal dose;
MLD, LD100, median lethal dose LD50), Dosis minima infectiosa (DMI,
ID100,ID50)
Modern methods in laboratory diagnostics of bacterial infections based on
the nucleic acid analysis, plasmid DNA isolation, gel electrophoresis, PCR
method, Hybridization (molecular probes). DNA sequencing.
Recognition and differentiation of members of the Rickettsiales and
Chlamydiales
Spirochaetes: Diagnostic procedures for leptospirosis, boreliosis and swine
dysentery.
Differentiation of campylobacter species, diagnosis of intestinal
campylobacteriosis
Laboratory diagnosis of disease caused by Brucella – serological tests.
Laboratory identification of nonfermentative Gram-negative rods.
Pseudomonas and other Pseudomonas species.
Laboratory identification of Enterobacteriaceae. Isolation of
Enterobacteriaceae from clinical material. General phenotypic features
shared by Enterobacteriaceae. Differentiation of Enterobacteriaceae, tests
on conventional media and API 20E strip. General antigenic features of
Enterobacteriaceae, serological characterization of Salmonella species.
Indicators of fecal pollution of water. Contamination detection.
Diagnostic procedures for pasteurellosis, actinomycosis and diseases
caused by Haemophilus species. Specimen collection, direct microscopy,
isolation, identification, biochemical profiles.
Gram-negative anaerobic bacteria of veterinary importance. Growth
requirement, choice of specimens, collection and transport, methods for
Formal prerequisites16):
Initial requirements17):
Learning outcomes18):
anaerobic culture, identification.
Differentiation of staphylococci and streptococci. Conventional tests (growth
characteristics, colony morphology, pattern of haemolysis, catalase, OFtest, coagulase, Lancefield grouping and others) and miniaturized
biochemical system (API). Diagnostic procedures for pyoderma and
mastitis.
Morphology and growth characteristics of Listera species, Erysipelothrix
rhusiopatiae, Actinomyces viscosus and Arcanobacterium pyogenes.
Microscopic appearance, biochemical and other tests. Collection and
transportation of specimens.
Diagnostic procedures for listeriosis, erysipelas, actinomycosis and
diseases caused by Trueperella pyogenes.
Morphology of Clostridium species. Microscopic appearance, biochemical
and other tests. Collection and transportation of specimens.
Methods and techniques for laboratory diagnosis of clostridial
neurointoxications, histotoxic and gastrointestinal infections.
Morphology and growth characteristics of Bacillus. Diagnosis of anthrax.
Morphology and growth characteristics of Mycobacterium and
Corynebacterium species. Microscopic appearance, biochemical and other
tests. Collection and transportation of specimens.
Diagnostic procedures for caseous lymphadenitis and tuberculosis.
Morphology and growth characteristics of Rhodococcus equi and
Mycoplasma spp. Microscopic appearance, biochemical and other tests.
Collection and transportation of specimens.
Diagnostic procedures for rhodococcosis and mycoplasmosis.
Morphology and growth characteristics of rumen and intestinal tract
bacteria.
Basic techniques employed in mycology routine diagnostics: specimen
collection. Diagnosis of dermatophytoses; direct slides in investigation of
skin scraping (alkaline KOH method). Co-cultivating and Micro-cultures of
hyphae producing fungi. Hair perforation test, Hair coat testing under
Wood’s UV lamp. Slides from dermatophyte colonies.
Differentiation of hyphae and spore morphology type (micro- and
macroconidia, artrospores). Molds and mycotoxins. Investigation of
environmental or food samples for molds, qualitative and quantitative
methods. Review of techniques useful for mycotoxin detection and
identification, example of biological testing for mycotoxin toxicity.
Morphology of molds. Genetic and serological methods for identification and
differentiation of fungi and fungal infections (review). Yeast, yeast-like and
dimorphic fungi. Techniques used in cultivation and biochemical
differentiation: Germ tube test, chlamydospore formation, ascus formation,
utilization of sugars and chromogenic substrates, latex serology test, rapid
tests from API family, drug sensitivity tests including e-tests.
Investigation of smears from otitis externa cases – ear canal (dogs or cats)
Direct slide and cultivation, investigation of milk samples from mastitis
cases.
Bacterial viruses, phage-typing.
Basic virological techniques – virus propagation in cell culture; cell culture
preparation and infection; outcome of infection – cytopathic effect
Basic virological techniques – virus propagation in the embryonated egg;
embryo infection and outcome; viral hemagglutination; inclusion bodies.
Laboratory practical examination
Completed and passed exams from chemistry, biophysics, histology, cell
biology and genetics.
Basic knowledge and skills from chemistry, biophysics, histology, cell
biology
Conceptual objectives:
Laboratory skills:
01 - Knowledge of the structure of
06 – Able to follow safety rules for
Assessment methods19):
Formal documentation of the
learning outcome20):
Elements impelling final grade21):
Teaching base22):
bacterial and fungal cells, virus
handling clinical or laboratory
particles as well as how the genetic
specimens contain pathogens.
material is organized, and what
07 – Acquisition of skill to aseptically
implications this has for virulence
and properly process clinical
and chemotherapeutics resistance.
specimens.
02 - Understanding the physiology of 08 - Performs and interprets
microbial growth including how this
microbiology testing in the
is influenced by changes in the local microbiology laboratory.
environment.
09 – Recognition of the unique
03 - Understanding the continuum
identifying characteristics of
from microbial colonization to
pathogens and names of the
infection to disease. Be familiar with associated agent(s).
microbial virulence. Understanding
10 - Competence in detection and
the role of microbes in health
identification of microorganisms and
maintenance.
determination of epidemiologic links
04 - Knowledge of principals of
between isolates.
antimicrobial function, understanding 11 - Ability to perform and interpret
the specifics of antibiotic usage and
an antibiotic susceptibility test.
how antibiotic resistance is acquired. 12 - Ability to interpret
05 - Knowledge of scientific names
microbiological testing of air, water,
of the most significant disease
animal environment and animal feed.
causing agents and the associated
diseases. Understanding the
epidemiology of infectious diseases
and the role of microbes in public
health issues.
Student performance will be evaluated by 3 in-class progressive
assessments in each semester, laboratory practical examination in the
fourth semester and a final exam (Conceptual and Laboratory skills: 01, 02,
03, 04, 05, 06, 07, 08, 09, 10, 11, 12).
In-class progressive assessments: 6 questions worth 2 points each.
Final exam: 3 questions worth 2 points each.
The examination consists of review questions.
The examination must be completed as scheduled. Re-scheduling will be
allowed only in serious, unavoidable circumstances.
Grades for the course will be assigned as follows:
S= ≥ 58%, U = ≤ 58%, S = satisfactory, U = unsatisfactory
The grades are based on the points earned.
Grade Points
3,0
7,0
3,5
8,0-9,0
4,0
10,0
4,5
11,0
5,0
12,0
Signed written tests, laboratory practical examination protocol, exam
protocol and exam papers signed by students
To obtain a positive grade the student should fulfill the conditions listed
below: 58 -100% of the total number of points scored on each of the 6 inclass progressive assessments, obtain at least grade 3,0 from laboratory
practical examination and 58 -100% of the total number of points from the
final exam. Students who did not obtain a positive grade from the verification
tests and did not pass practical exam are not allowed to take the final exam
The final course grade will be the average of class test scores, positive
practical examination score and positive final examination grade"
Lecture hall at the Faculty of Veterinary Medicine, laboratories in the
Department of Preclinical Sciences
Obligatory and supportive materials23):
There are many reference books that may be helpful as supplemental material to lectures and laboratory exercises.
A wide variety of general, allied health and health profession microbiology textbooks are available in the Faculty
and University libraries. Various veterinary medical textbooks have large sections devoted to infectious diseases.
Within these discussions, disease, ecology, pathogenic mechanisms and other characteristics of agents are
frequently reviewed.
The following microbiology textbooks are suggested for further reading:
1. Markey B., Leonard F., Archambault M., Cullinane A., Maguire D.: Clinical Veterinary Microbiology, Mosby
Elsevier, 2013.
2. Quinn P.J., Carter M.E., Markey B., Carter G.R. : Clinical Veterinary Microbiology. Published in1994
by Wolf.
3. Quinn P.J., Markey B.K., Carter M.E., Donelly W.J., Leonard F.C.: Veterinary Microbiology and
Microbial Disease. Blackwell Publishing, 2002.
4. Quinn P.J., Markey B.K, Leonard F.C., Hartigan P., Fanning S., FitzPatrick E.S.: Veterinary Microbiology
and Microbial Disease. Wiley-Blackwell, 2011.
5. Songer G.J., Post K.W.: Veterinary microbiology: bacterial and fungal agents of animal disease.
Elsevier, 2005.
6. Madigan M.T., Martinko J.M., Stahl D., Clark D.: Brock Biology of microorganism. Pearson, 2012
7. Salyers A.A., Whiet D.D. : Bacterial pathogenesis, a molecular approach. ASM Press, Washington,
D.C. 2002.
8. Gyles C.L., Prescott J.F., Songer J.G., Thoen Ch.O.: Pathogenesis of bacterial infections in animals.
Wiley-Blackwell, 2010
9. Giguere S., Prescott J.F., Baggot J.D., Walker R.D., Dowling .: Antimicrobial Therapy in Veterinary
Medicine. Wiley-Blackwell, 2007.
Annotations
24)
:
Quantitative summary of the module25):
Estimated number of work hours per student (contact and self-study) essential to achieve presumed learning outcomes of the
18)
2
module
- base for quantifying ECTS :
Total ECTS points, accumulated by students during contact learning:
Total ECTS points, accumulated by student during practical classes (laboratories, projects, seminars, etc.):
300 h
5 ECTS
5 ECTS
Learning outcomes of the module relative to the learning outcomes of the subject26):
Outcome
No / symbol
Learning outcomes:
Relative to the learning
outcomes of the subject:
01
Knowledge of the structure of bacteria, fungus and virus particles. Organization of genetic
material and its implication on virulence and chemotherapeutics resistance.
WW_NP8, K_KP1,
02
Understanding the physiology of microbial growth including how this is influenced by changes in
the local environment.
WW_NP6, WW_NP7,
WW_NP8
03
Understanding the continuum from microbial colonization to infection to disease. Be familiar with
microbial virulency. Understanding the role of microbes in health maintenance
WW_NP6, WW_NP7,
WW_NP8, K_KP2,
K_KP6
04
Knowledge of principals of antimicrobial function, understanding the specifics of antibiotic usage
and how antibiotic resistance is acquired.
WW_NP8, WW_NP11,
K_KP2, K_KP6
05
Knowledge of scientific names of the most significant disease causing agents and the associated
diseases. Understanding the epidemiology of infectious diseases and the role of microbes in
public health issues.
WW_NP6, WW_NP7,
WW_NP8, UO_Z15,
K_KP2, K_KP6
06
Following safety rules for handling clinical or laboratory specimens containing pathogens.
U_OZ1, UO_Z12, ,
U_PUZ6
07
Acquisition of skills to aseptically and properly process clinical specimens.
U_OZ1, UO_Z12,
U_PUZ6, U_PUZ13,
08
Performs and interprets microbiological testing in the microbiology laboratory.
U_OZ1, UO_Z12,
UO_Z15, U_PUZ6
U_PUZ7, W_NK7,
09
Recognition of unique identifying characteristics of pathogens and names associated with the
agent(s).
U_OZ1, UO_Z12,
UO_Z15
10
Competence in detection and identification of microorganisms, and determination of the
epidemiologic links between isolates.
U_OZ1, UO_Z12,
UO_Z15,
11
Ability to perform and interpret an antibiotic susceptibility test.
U_OZ1, UO_Z12
12
Ability to interpret microbiological testing of air, water, animal environment and animal feed.
U_OZ1, UO_Z12,
W_NK9, W_HŻ1, K_KP2,
K_KP6
Instrukcja wypełniania pól opisu modułu kształcenia/przedmiotu
Opis przedmiotu kształcenia jest dokumentem ogólnodostępnym. Wypełnienie opisu przedmiotu stanowi zobowiązanie, że treści
przedmiotu, jego zaliczenie (wpływ poszczególnych elementów na ocenę ostateczną), dokumentowanie osiąganych efektów kształcenia
i inne zawarte w nim elementy będą prowadzone zgodnie z opisem.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
„Nazwa przedmiotu” - dokładna, jednoznaczna nazwa modułu/przedmiotu. Wpisana do formularza nazwa zostanie umieszczona w
systemie HMS i będzie powielana w dokumentach dot. przebiegu studiów (protokoły zaliczeń, karty przebiegu studiów, wykazy
zajęć, itp.) oraz wydrukowana w suplemencie do dyplomu.
„Punkty ECTS” - liczba całkowita, należy wpisać liczbę punktów ECTS przyporządkowaną przedmiotowi wynikającą
z sumarycznej liczby godzin pracy studenta potrzebnych do osiągnięcia efektów kształcenia dla modułu/przedmiotu (sumy godzin
wymagających bezpośredniego udziału nauczyciela akademickiego oraz godzin pracy własnej studenta) Objaśnienia dot. punktów
25)
ECTS znajdują się w punkcie dotyczącym wskaźników ilościowych charakteryzujących przedmiot .
1)
„Tłumaczenie nazwy na język angielski” - informacja ta, podobnie jak „Nazwa przedmiotu” , będzie powielana
w dokumentach pochodnych oraz wydrukowana w suplemencie do dyplomu w tłumaczeniu na jęz. angielski.
„Kierunek studiów” - kierunek studiów w ramach którego realizowany jest moduł/przedmiot.
„Koordynator przedmiotu” - należy wpisać osobę odpowiedzialną za moduł/przedmiot - imię, nazwisko wraz ze stopniem i tytułem
naukowym. Koordynator modułu/przedmiotu prowadzi zajęcia ze studentami z opisywanego modułu/przedmiotu. Osoba ta będzie
wpisana do Systemu Elektronicznej Obsługi Studentów jako odpowiedzialna za przedmiot, wprowadzenie oceny i będzie podlegała
studenckiej ocenie.
„Prowadzący zajęcia” - na etapie projektowania programu kształcenia dopuszczalny jest zapis - „pracownicy katedry/zakładu”.
7)
Kierownik jednostki realizującej przedmiot zobowiązany jest do określenia składu zespołu realizującego przedmiot w każdym roku
akademickim. Wszystkie osoby prowadzące zajęcia ze studentami będą podlegały studenckiej ocenie.
„Jednostka realizująca” - należy podać pełną nazwę jednostki realizującej przedmiot. Należy podać nazwę Wydziału, Katedry,
Zakładu.
„Wydział, dla którego przedmiot jest realizowany” - pole wypełniane wyłącznie w przypadku, gdy moduł/przedmiot jest realizowany
dla Wydziału innego niż macierzysty.
„Status” - należy zamieścić informacje: a) czy przedmiot jest podstawowy, kierunkowy, fakultatywny, itp.,
b) na którym stopniu i roku studiów jest realizowany, c) dla jakiej formy studiów jest realizowany (studia stacjonarne,
niestacjonarne).
„Cykl dydaktyczny” - należy wpisać informację w jakim cyklu dydaktycznym przedmiot jest realizowany,
np. semestr zimowy (jeżeli przedmiot jest realizowany wyłącznie w semestrze zimowym); semestr letni (jeżeli przedmiot jest
realizowany wyłącznie w semestrze letnim).
„Język wykładowy” - należy podać w jakim języku przedmiot jest realizowany - w języku polskim, w jęz. angielskim, lub jednocześnie
w jęz. polskim i angielskim (np. dla potrzeb programów wymiany).
„Założenia i cele przedmiotu” - należy umieścić krótki opis treści modułu/przedmiotu, rozszerzający sformułowania zawarte w
1)
„Nazwie przedmiotu” . Wskazane jest pokazanie powiązań z innymi przedmiotami lub dziedzinami.
„Formy dydaktyczne, liczba godzin” - należy podać informacje, w jakiej formie dydaktycznej przedmiot jest realizowany (wykład,
ćwiczenia audytoryjne / ćwiczenia laboratoryjne / ćwiczenia projektowe / ćwiczenia terenowe / ćwiczenia seminaryjne / praktyka
zawodowa itp., zgodnie z normatywami wewnętrznymi SGGW). Jeżeli przedmiot jest realizowany w kilku formach dydaktycznych,
należy wskazać wszystkie. W polu tym należy również podać liczbę godzin zajęć dla danej formy dydaktycznej (odrębnie dla
każdej).
„Metody dydaktyczne” - należy wpisać informacje o stosowanych przez prowadzących zajęcia metodach dydaktycznych np.
dyskusja, projekt, rozwiązywanie problemu, doświadczenie/eksperyment, studium przypadku, gry symulacyjne, analiza i
interpretacja tekstów źródłowych, indywidualne projekty studenckie, konsultacje itp.
12)
„Pełny opis przedmiotu” - należy rozszerzyć informacje zawarte w polu „Założenia i cele przedmiotu” . Umieszczamy w miarę
możliwości
zwięzły
opis
treści
modułu/przedmiotu.
Jeżeli
przedmiot
realizowany
jest
w
kilku
formach
(np. wykład i ćwiczenia), należy zwięźle opisać każdą z tych form. Sposób opisu przedmiotu (tekst ciągły/punktory
i numeracja) w ramach kierunku powinien być jednolity.
„Wymagania formalne (przedmioty wprowadzające)” - należy podać ewentualne nazwy przedmiotów, których wcześniejsze formalne
zaliczenie jest niezbędne do realizacji opisywanego modułu/przedmiotu.
„Założenia wstępne” - należy podać zakres wiedzy i umiejętności, jakie powinien posiadać student przed rozpoczęciem
modułu/przedmiotu (o ile występują).
„Efekty kształcenia” - należy zamieścić efekty kształcenia (opisane za pomocą tzw. „czasowników akcji”) - wiedza, umiejętności,
kompetencje społeczne, które student nabywa poprzez realizację danego modułu/przedmiotu. Jeżeli przedmiot jest realizowany w
kilku formach (np. wykład i ćwiczenia), należy w tym polu przedstawić zdefiniowane efekty kształcenia wspólnie dla wszystkich form.
Efekty kształcenia należy przyporządkować do tabeli zgodności efektów dla programu kształcenia (efektów kierunkowych),
26)
znajdującej się pod tabelą opisu modułu/przedmiotu . Zalecana liczba efektów kształcenia dla modułu/przedmiotu to 4-8.
„Sposób weryfikacji efektów kształcenia” - należy przedstawić, w jaki sposób weryfikowane będzie osiąganie przez studenta efektów
kształcenia dla modułu/przedmiotu - dla każdego z wymienionych w polu nr 18 efektów; dopuszczalne jest weryfikowanie w dany
sposób kilku efektów (Przykład: efekt 01, 03 - kolokwium na zajęciach ćwiczeniowych / praca pisemna przygotowywana w ramach
pracy własnej studenta / ocena eksperymentów wykonywanych w trakcie zajęć / ocena wystąpień i prezentacji w trakcie zajęć /
ocena wykonanie zadania projektowego na zdefiniowany temat / ocena wynikająca z obserwacji w trakcie zajęć / przygotowanie
zespołowej analizy zdefiniowanego problemu / obserwacja w trakcie dyskusji zdefiniowanego problemu (aktywność)/ egzamin
pisemny / test komputerowy / egzamin ustny… itp.). Zawartość tego pola powinna korespondować z zawartością pól „Forma
20)
21)
dokumentacji osiągniętych efektów kształcenia ” oraz „Elementy i wagi mające wpływ na ocenę końcową ).
20. „Forma dokumentacji osiągniętych efektów kształcenia” - należy wpisać sposoby dokumentowania osiąganych przez studenta
efektów (np. okresowe prace pisemne, złożone projekty, imienne karty oceny studenta, treść pytań egzaminacyjnych z oceną, itp.),
które będą przechowywane i udostępniane w procesie oceny rezultatów realizacji programu, kształcenia, akredytacji itp.
21. „Elementy i ich wagi mające wpływ na ocenę końcową” - Uwaga! Student z każdego modułu/przedmiotu realizowanego w
dowolnych formach zajęć (jednej lub wielu) uzyskuje jedną ocenę. Ocena ta wpisywana jest do elektronicznego systemu obsługi
5)
studentów/indeksu przez koordynatora , prowadzącego zajęcia ze studentami i wskazanego w opisie. Student zaliczając dany
18)
moduł/przedmiot (po osiągnięciu wszystkich zakładanych dla modułu/przedmiotu efektów kształcenia
w minimalnym
akceptowalnym
stopniu
(ocena
dostateczna
3),
co
jest
wykazane
20)
2)
i udokumentowane we właściwej formie ) otrzymuje pełną liczbę określonych dla modułu/przedmiotu punktów ECTS . Nie stosuje
się ocen binarnych (zaliczone/niezaliczone).
W polu tym należy przyporządkować elementom służącym weryfikacji wszystkich osiąganych efektów kształcenia wagi niezbędne
do ustalenia oceny końcowej.
Przykład: do weryfikacji efektów kształcenia służy: 1. ocena eksperymentów w trakcie zajęć, 2. ocena wykonanie zadania
projektowego, 3. pisemna analiza studium przypadku, 4. egzamin; dla każdego z tych elementów określona jest maksymalna liczba
punktów do uzyskania, np. 100 (razem 400); przyporządkowując odpowiednią wagę do każdego z tych elementów odpowiednio 125%, 2-20%, 3-15%, 4-40% uzyskuje się liczbę punktów, za które przyznaje się ocenę wg podanych kryteriów - punkty/ocena.
Student, który nie złożył analizy studium przypadku / nie uzyskał wcześniej określonej minimalnej akceptowalnej liczby punktów z
oceny eksperymentów w trakcie zajęć, mimo uzyskania najwyższych not z pozostałych elementów, nie powinien uzyskać zaliczenia
modułu/przedmiotu.
22. „Miejsce realizacji przedmiotu” - należy podać informację, czy moduł/przedmiot jest realizowany w sali dydaktycznej, laboratorium, w
terenie, w formie kształcenia na odległość, w sposób „mieszany” (blended learning).
23. „Literatura” - należy podać literaturę wymaganą lub zalecaną do ostatecznego zaliczenia modułu/przedmiotu. Zalecana literatura
powinna być czytelnie opisana i osiągalna dla studentów.
24. „Uwagi” - w polu tym można podać wszystkie uwagi o charakterze informacyjno-organizacyjnym dotyczące modułu/przedmiotu (np.
opisaną w przykładzie z pkt. 21 punktację i przyporządkowane punktom oceny).
25. Wskaźniki ilościowe - należy wpisać wyliczone wskaźniki dla modułu kształcenia/przedmiotu.
Wskaźniki ilościowe dla modułu/przedmiotu są podstawą dokumentacji wskaźników ilościowych dla całego programu kształcenia.
Dla wskaźników ilościowych dopuszczalne jest podawanie liczby ECTS w zaokrągleniu do 0,5 pkt ECTS.
Przyporządkowanie ECTS - 1 punkt ECTS odpowiada 25-30 godzinom pracy studenta (sumy godzin wymagających
bezpośredniego udziału nauczyciela akademickiego oraz godzin pracy własnej studenta) potrzebnej do osiągnięcia zakładanych
efektów kształcenia. Roczny wymiar nakładu pracy studenta wynosi 1500-1800 godzin, co odpowiada 60 punktom ECTS.
Semestralnie 750 - 900 godzin, co odpowiada 30 punktom ECTS. Nakład pracy potrzebny do zaliczenia przedmiotu, któremu
przypisano 3 ECTS (75-90 godz.), stanowi ok.10% semestralnego obciążenia studenta.
Przykład:
Moduł (przedmiot) prowadzony jest przez cały semestr (15 tygodni), składa się z wykładów (1h/tydzień x 15 tygodni), ćwiczeń
laboratoryjnych (2h/tydzień x 15 tygodni), dodatkowych ćwiczeń terenowych (4 h - jednorazowo, na początku semestru). Ponadto
jest możliwość korzystania z konsultacji - również praktycznych - 1h/tydzień x 15 tygodni (student korzysta z 1/3 wszystkich
dostępnych konsultacji).
Weryfikacja efektów kształcenia odbywa się poprzez: kolokwia (2/semestr), ocenę realizacji eksperymentów w trakcie ćwiczeń ocena
sprawozdania,
ocena
z
przygotowanej
pisemnej
pracy
po
odbyciu
ćwiczeń
terenowych.
Po zakończeniu cyklu odbywa się 2 godzinny egzamin pisemny - problemowy, stanowiący 50% wagi oceny końcowej. W trakcie
egzaminu student może korzystać z dowolnych materiałów dydaktycznych.
2)
Całkowity nakład czasu pracy - przyporządkowania ECTS :
Wykłady
15h
Ćwiczenia laboratoryjne + terenowe
30h + 4h - 34h
Udział w konsultacjach (1/3 wszystkich konsultacji)
5h
Obecność na egzaminie
2h
Dokończenie sprawozdań z zadań prowadzonych w trakcie ćwiczeń laboratoryjnych
0,5h x15 - 7,5h
Przygotowanie do kolokwium
2 x 2 h - 4h
Przygotowanie pracy pisemnej
18h
Przygotowanie do egzaminu
8h
Razem:
93,5 h
3 ECTS
W ramach całkowitego nakładu czasu pracy studenta - łączna liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach
wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich:
Wykłady
15h
Ćwiczenia laboratoryjne + terenowe
30h + 4h - 34h
Udział w konsultacjach (1/3 wszystkich konsultacji)
5h
Egzamin
2h
Razem:
56 h
1,8 (2) ECTS
W ramach całkowitego nakładu czasu pracy studenta - łączna liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o
charakterze praktycznym:
Ćwiczenia laboratoryjne
30h
Dokończenie sprawozdań z zadań prowadzonych w trakcie ćwiczeń laboratoryjnych
0,5h x15 - 7,5h
Udział w konsultacjach (1/3 wszystkich konsultacji)
5h
Razem:
42,5h
1,4 (1,5) ECTS
26. Tabela zgodności kierunkowych efektów kształcenia efektami kształcenia określonymi dla modułu/przedmiotu. W tabeli należy, dla
18)
każdego z efektów określonych dla modułu/przedmiotu , przyporządkować odpowiadające im efekty zdefiniowane dla programu
kształcenia, z zastosowaniem stosownych oznaczeń:
W kolumnie „Nr/Symbol efektu”:
01, 02, … - numer efektu dla modułu/przedmiotu
W kolumnie „Odniesienie do efektów dla programu kształcenia na kierunku”:
K - (przez podkreślnikiem „ _” - zdefiniowany efekt dla programu kształcenia;
W - wiedza; U - umiejętności; K - (po podkreślniku „ _” ) kompetencje społeczne;
01 - cyfra przy oznaczeniu kategorii efektów (W,U,K) - numer efektu dla programu kształcenia (w określonej kategorii wiedza,
umiejętności, kompetencje społeczne), do którego odnosi się dany efekt opisywanego modułu/przedmiotu
Nr /symbol
efektu
01
Wymienione w wierszu efekty kształcenia:
zna podstawowe…
Odniesienie do efektów dla
programu kształcenia na kierunku
K_W07, K_W10
02
projektuje…
K_W18, K_U09, K_U10,
03
pracuje w zespole
K_U03, K_K02
04
05