Informacja o zamówieniach Analizatory, w których mogą
Transkrypt
Informacja o zamówieniach Analizatory, w których mogą
0020737836322COINV13.0 DIG Digoksyna Monitorowanie terapii Informacja o zamówieniach 20737836 322 03375790 190 04521536 190 Digoxin (250 testów) ID systemowe 07 3783 6 Preciset TDM I Calibrators A-F (6 × 1 × 5 mL) Diluent (1 × 10 mL) TDM Control Set Level I (2 × 5 mL) Level II (2 × 5 mL) Level III (2 × 5 mL) ID systemowe 07 6830 8 Analizatory, w których mogą być używane odczynniki cobas c pack COBAS INTEGRA 400 plus COBAS INTEGRA 800 ID systemowe 07 6900 2 ID systemowe 07 6901 0 ID systemowe 07 6902 9 Polski Przechowywanie i trwałość Informacja o aplikacjach Test DIGM, test ID 0-283 W temp. 2‑8 °C Zastosowanie Diagnostyczny test in vitro do ilościowych oznaczeń digoksyny w surowicy lub heparynizowanym osoczu w systemach COBAS INTEGRA. System COBAS INTEGRA 400 plus Podsumowanie Digoksyna jest glikozydem naparstnicy dającym dodatni efekt inotropowy, który powoduje wzrost kurczliwości włókien mięśnia sercowego u pacjentów z zastoinową niewydolnością serca.1 Glikozydy nasercowe mogą dawać również różne efekty elektrofizjologiczne wywierające ujemny efekt chronotropowy na ludzkie serce.2 Efekt ten powoduje zwolnienie i regulację szybkości w nieregularnej akcji serca, jaką spotyka się u pacjentów z arytmią.3 System COBAS INTEGRA 800 Zasada pomiaru Kinetyczna interakcja mikrocząstek w roztworze (KIMS) i pomiar zmian światła transmitowanego. COBAS INTEGRA Digoxin jest homogenną metodą immunoenzymatyczną opartą na zasadzie pomiaru zmian światła rozproszonego lub absorbancji powstałej w wyniku agregacji aktywowanych mikrocząstek. Mikrocząstki opłaszczone digoksyną, w obecności roztworu zawierającego przeciwciało przeciwko digoksynie, ulegają gwałtownej agregacji. Podczas wprowadzenia próbki zawierającej digoksynę, reakcja agregacji ulega częściowemu zahamowaniu, proces agregacji zostaje spowolniony. Przeciwciało związane z substancją badaną pochodzącą z próbki przestaje pobudzać agregację mikrocząstek, a w rezultacie ustaje tworzenie ich sieci. Otrzymuje się klasyczną krzywą inhibicji dla digoksyny, gdzie największy stopień agregacji występuje przy najniższym stężeniu digoksyny. Poprzez monitorowanie zmian światła rozproszonego bądź absorbancji otrzymuje się krzywą zależną od stężenia. Odczynniki - roztwory robocze R1 Odczynnik z przeciwciałami Monoklonalne przeciwciała (mysie) przeciwko digoksynie oraz materiały pochodzenia ludzkiego w buforze z konserwantem. SR Odczynnik z mikrocząstkami Skoniugowane mikrocząstki pochodnej digoksyny, materiał pochodzenia ludzkiego i konserwant. R1 jest w pozycji B, a SR jest w pozycji C. Zalecenia i środki ostrożności Należy przestrzegać wszelkich zaleceń oraz środków ostrożności zawartych w rozdziale 1, "Wstęp". Dla USA: Wyłącznie na osobne zalecenie Postępowanie z odczynnikami Analizatory COBAS INTEGRA 400 plus Kasetę cobas c pack należy codziennie mieszać przed użyciem. Kasetę cobas c pack należy wówczas na 1 minutę umieścić w mieszalniku do kaset. Analizatory COBAS INTEGRA 800 Odczynnik jest automatycznie mieszany przez 2 minuty po nakłuciu kasety cobas c pack oraz przez pół minuty podczas rozpoczęcia dnia pracy. 2016-12, V 13.0 Polski Do daty ważności na etykiecie cobas c pack W analizatorze w temperaturze 10‑15 °C W analizatorze w temp. 8 °C 10 tyg. 26 tyg. Pobieranie i przygotowanie materiału W celu pobrania i przygotowania materiału należy stosować jedynie przeznaczone do tego probówki lub pojemniki. Sprawdzono i zaakceptowano możliwość stosowania jedynie materiałów biologicznych wymienionych poniżej. Niezhemolizowana surowica Niezhemolizowane heparynizowane osocze: Podane rodzaje próbek oznaczono przy użyciu wybranych probówek do pobierania materiału dostępnych na rynku w czasie wykonywania oznaczeń. Oznacza to, że nie przetestowano probówek od wszystkich producentów. Systemy pobierania próbek pochodzące od różnych producentów mogą zawierać różniące się materiały, co w pewnych przypadkach może mieć wpływ na wynik oznaczeń. W przypadku stosowania probówek pierwotnych (systemów pobierania krwi) należy ściśle przestrzegać zaleceń ich producenta. Przed oznaczeniem odwirować próbki z widocznym zmętnieniem lub obecnością strątów. Próbki należy pobrać 6‑8 godzin po ostatnim doustnym przyjęciu digoksyny. Do tego czasu stężenie digoksyny w surowicy powinno osiągnąć stan równowagi ze stężeniem w tkankach i korelować ze skutkami farmakologicznymi. Surowicę można przechowywać schłodzoną (2‑8 °C) przez 24 godz, lub w temp. ‑20 °C przez 1‑2 tyg.4 Nie należy wielokrotnie zamrażać i rozmrażać próbek. Po rozmrożeniu, przed wykonaniem oznaczeń, materiał należy dokładnie wymieszać, ewentualnie usunąć poprzez odwirowanie skrzepy lub strąty powstałe na skutek zamrażania. Jeżeli próbki były zamrażane, przed oznaczeniem należy je wymieszać. Materiały dostarczone w zestawie Patrz "Odczynniki - roztwory robocze" w części o odczynnikach. Oznaczenie W celu optymalnego działania testu należy stosować się do zaleceń zawartych w niniejszej ulotce dotyczących konkretnego analizatora. Należy postępować zgodnie z poniższą instrukcją obsługi dla operatora, uwzględniając typ aparatu. Aplikacja dla surowicy i osocza Definicja testu COBAS INTEGRA 400 plus Rodzaj pomiaru Absorbancja Rodzaj reakcji R1-S-SR Długość fali A 652 nm Odczyt próby ślepej/testu 34/65 Jednostka ng/mL 1/4 DIG 0020737836322COINV13.0 DIG Digoksyna Monitorowanie terapii Parametry pipetowania Rozcieńczalnik (H2O) R1 84 µL 6 µL Próbka 5.5 µL 6 µL SR 22 µL 6 µL Całkowita objętość 129.5 µL Definicja testu COBAS INTEGRA 800 Rodzaj pomiaru Absorbancja Rodzaj reakcji R1-S-SR Długość fali A 659 nm Odczyt próby ślepej/testu 45/98 Jednostka ng/mL Wyliczenie Analizatory COBAS INTEGRA automatycznie obliczają stężenie oznaczanej substancji dla każdej próbki. Więcej informacji zawarto w rozdziale "Dane Analityczne" na stronie internetowej Online Help (analizatory COBAS INTEGRA 400 plus/800). Współczynnik przeliczeniowy: ng/mL × 1.28 = nmol/L Parametry pipetowania Rozcieńczalnik (H2O) R1 84 µL 6 µL Próbka 5.5 µL 6 µL SR 22 µL 6 µL Całkowita objętość 129.5 µL Kalibracja Kalibratory Preciset TDM I Kalibratory A-F Tryb kalibracji Logit/log 4 Powtórzenia kalibracji Zalecana w duplikacie Odchylenie dolne/górne < 10 % przy poziomie 1 ng/mL (1.3 nmol/L) Częstotliwość kalibracji Analizatory COBAS INTEGRA 400 plus Dla każdej serii oraz co 14 dni, jak również zgodnie z procedurami kontroli jakości Analizatory COBAS INTEGRA 800 Dla każdej serii oraz co 12 tygodni, jak również zgodnie z procedurami kontroli jakości Krzywa kalibracyjna musi być sporządzona za pomocą Preciset TDM I Calibrators. Kalibratory należy umieścić w statywie CAL/QC według gradientu stężeń: od najwyższego (F) do najniższego (A). Krzywa kalibracji zapisywana jest w pamięci analizatora COBAS INTEGRA i wywoływana w trakcie późniejszych analiz. Spójność pomiarowa: Kalibratory Preciset TDM I Calibrators zawierają znane ilości digoksyny w prawidłowej surowicy ludzkiej i są zgodne ze standardami referencyjnymi USP. Uwaga Pomiar kalibratorów powinien być wykonany w ciągu 2 godzin od umieszczenia ich w analizatorze. Kontrola jakości Kontrola jakości TDM Control Set Częstotliwość kontroli Zalecana co 24 godz. Sekwencja kontroli Definiowana przez użytkownika Kontrola po kalibracji Zalecana Do kontroli należy używać materiałów wyszczególnionych w części "Informacja o odczynnikach". Można stosować również inny odpowiedni materiał kontrolny. DIG Częstotliwość i zakres przeprowadzania kontroli muszą być dostosowane do indywidualnych wymogów danego laboratorium. Uzyskane wartości winny zawierać się w wyznaczonych granicach. Wskazane jest, by każde laboratorium opracowało procedury naprawcze, które należy wdrożyć, gdy wyniki uzyskane dla materiałów kontrolnych znajdą się poza podanym zakresem. Procedury kontroli jakości należy stosować zgodnie z właściwymi zaleceniami organów państwowych oraz lokalnymi wytycznymi. Uwaga Pomiar kontroli powinien być wykonany w ciągu 2 godzin od umieszczenia ich w analizatorze. Ograniczenia - substancje interferujące Informacje dotyczące substancji badanych na występowanie reakcji krzyżowych w teście znajdują się w części "Swoistość analityczna". Istnieje prawdopodobieństwo, że także inne substancje i/lub czynniki (np. awarie techniczne lub błędy proceduralne) mogą zakłócić przebieg testu i spowodować uzyskanie błędnych wyników. Próbki o wartościach wyższych od najwyższej wartości kalibratora zostaną zaznaczone przez analizator. W takim wypadku należy powtórzyć oznaczenie digoksyny, po uprzednim manualnym rozcieńczeniu próbki za pomocą rozcieńczalnika Preciset TDM I Diluent (0 ng/mL), a wynik pomnożyć przez odpowiedni współczynnik rozcieńczenia. W niektórych próbkach oznaczanych metodą COBAS INTEGRA Digoxin odnotowano nieswoistą agregację mikrocząstek. Próbki oznakowane jako < 0.2 ng/mL (< 0.26 nmol/L) TEST RANGE we wszystkich analizatorach COBAS INTEGRA i uzyskaną zmianę jednostki absorbancji (ΔA) należy oznaczyć ponownie. Instrukcje dotyczące uzyskania danych pierwotnych zawarte są w instrukcji obsługi analizatorów COBAS INTEGRA w rozdziale "Działania-Wyniki" Uzyskaną ΔA należy porównać z ΔA kalibratora 0 ng/mL, uzyskaną poprzez zaznaczenie (zgodnie z powyższym opisem) kalibratora w wynikach krzywej. W celu pokazania danych kalibracyjnych okienko wyników musi znajdować się w pozycji “View - By Time Complete”. Przed podaniem wyników, próbki o zmianie absorbancji ΔA większej niż 0.020 powyżej wartości dla kalibratora 0 ng/mL należy ponownie oznaczyć inną uznaną metodą. W rzadkich przypadkach (<1 %) nieswoista agregacja może powodować błędnie niskie rezultaty, które nie zostaną oflagowane. Wyniki oznaczeń digoksyny, które nie są zgodne z objawami klinicznymi należy potwierdzić poprzez ponowne oznaczenie próbki inną metodą. Uzara i pentoksyfilina w stężeniach uzyskanych przy stosowaniu zalecanej dawki dziennej powodują fałszywie zawyżone wyniki digoksyny. Hydrokortyzon nie interferuje przy stosowaniu zalecanej dawki dziennej, niemniej w wyższych stężeniach (np. podawany w sytuacjach ratujących życie (we wstrząsie) hydrokortyzon może spowodować podwyższenie wyniku digoksyny. Substancje endogenne, takie jak DLIF (digoksynopodobne czynniki immunoreaktywne) mogą interferować z testem powodując uzyskanie wyników nieznacznie podwyższonych.5,6,7 Czynniki DLIF występują głównie w próbkach pobranych od noworodków, kobiet w ciąży i u poddanych intensywnej opiece medycznej pacjentów z niewydolnością nerek lub wątroby. Producent Digoxin Immune Fab (terapia fragmentem przeciwciała) ostrzega, że żadna z metod immunologicznych służących do oznaczania digoksyny w surowicy nie jest właściwa u pacjentów poddanych tej terapii.8 Fałszywie wysokie stężenia digoksyny mogą wystąpić u pacjentów leczonych digitoksyną. Wiele testów opartych na monoklonalnych mysich przeciwciałach, w tym z kasetą COBAS INTEGRA Digoxin cobas c pack może interferować z próbkami zawierającymi ludzkie przciwciała przeciw antygenom mysim (HAMA). Próbki z podejrzeniem obecności HAMA (np. od pacjentów po ekspozycji na mysie antygeny monoklonalne) należy oznaczyć metodą alternatywną. Surowica/osocze Kryterium: Odzysk w ± 10 % wartości początkowej digoksyny w stężeniu 1 ng/mL (1.28 nmol/L). 2/4 2016-12, V 13.0 Polski 0020737836322COINV13.0 DIG Digoksyna Monitorowanie terapii Żółtaczka:9 Brak istotnej interferencji do stężenia bilirubiny wynoszącego 431 µmol/L lub 25.2 mg/dL. Hemoliza:9 Brak istotnej interferencji do stężenia hemoglobiny 2000 mg/dL. Lipemia:9 Brak istotnej interferencji do poziomu triglicerydów 2400 mg/dL. Białko całkowite: Brak istotnej interferencji do poziomu białka całkowitego wynoszącego 14 g/dL. Próbki zawierające bilirubinę, triglicerydy i/lub hemoglobinę na poziomie wyższym niż podany poniżej, powinny być rozcieńczone za pomocą Preciset TDM I Diluent (0 ng/mL), oznaczone, a wynik pomnożony przez współczynnik rozcieńczenia. W bardzo rzadkich przypadkach gammapatii, szczególnie typu IgM (makroglobulinemia Waldenströma), wyniki mogą być niemiarodajne.10 Dla celów diagnostycznych wyniki powinny być interpretowane z uwzględnieniem historii choroby, badań klinicznych oraz innych danych o pacjencie. WYMAGANA CZYNNOŚĆ Programowanie specjalnego cyklu mycia: W odniesieniu do pewnych kombinacji testów przeprowadzanych jednocześnie w analizatorach COBAS INTEGRA obowiązkowe jest stosowanie specjalnych cykli mycia. Dalsze instrukcje oraz najnowsza wersja Dodatkowych Cykli Mycia, zob. ulotka metodyczna odczynnika CLEAN. Tam, gdzie to konieczne, przed podaniem wyników testu należy wprowadzić mający na celu uniknięcie efektu przeniesienia specjalny program dodatkowego cyklu mycia. W oparciu o aktualne, nowe wytyczne ESC dotyczące diagnozy i leczenia ostrej oraz przewlekłej niewydolności serca z r. 2008 zalecany zakres stężeń digoksyny wynosi 0.6‑1.2 ng/mL (0.77‑1.5 nmol/L).17 Zwiększone ryzyko wypadków śmiertelnych występuje przy stężeniu digoksyny wynoszącym 1.2 ng/mL (1.5 nmol/L) i wyższym.18 W interpretacji wyniku testu oprócz otrzymanej wartości digoksyny należy brać również pod uwagę dodatkowe czynniki, takie jak: wiek, funkcjonowanie nerek oraz objawy kliniczne u pacjenta.13,14,15 Badania przeprowadzone w analizatorze COBAS FARA II, z użyciem odczynników z kasety COBAS INTEGRA Digoxin wykazały, jednakowy wpływ digoksyny i jej pierwotnych metabolitów (digoksygenino-bisdigitoksozydu, digoksygenino mono-digitoksozydu i digoksygeniny) na aktywność mięśnia sercowego.19 W oparciu o populację pacjentów każde laboratorium powinno określić poziom wartości oczekiwanych lub wyznaczyć własne zakresy wartości referencyjnych. Szczegółowe dane o teście Dane wyznaczone przy użyciu analizatorów COBAS INTEGRA podano poniżej. Wyniki uzyskane w poszczególnych laboratoriach mogą się różnić. Precyzja Precyzję określono za pomocą kontroli zgodnie z wymogami NCCLS EP5‑T220, przy powtarzalności (n = 80) i precyzji pośredniej (2 oznaczenia w serii, 2 serie w ciągu dnia, 20 dni).W analizatorze COBAS INTEGRA 700 uzyskano następujące wyniki: Granice i zakresy Zakres pomiarowy 0.3‑5.0 ng/mL (0.38‑6.4 nmol/L) (określony granicą wykrywalności i górną granicą liniowości). Dolna granica pomiarowa Granica próby ślepej, Granica wykrywalności oraz Granica oznaczalności/czułość funkcjonalna Granica próby ślepej = 0.2 ng/mL (0.26 nmol/L) Granica wykrywalności = 0.3 ng/mL (0.38 nmol/L) Granica oznaczalności = 0.4 ng/mL (0.51 nmol/L) Granice próby ślepej i wykrywalności określono zgodnie z wymogami EP17‑A CLSI (Instytutu Standardów Klinicznych i Laboratoryjnych; dawniej NCCLS). Granicę oznaczalności określono za pomocą oznaczania wyników czułości funkcjonalnej. Granica próby ślepej jest 95. percentylem wartości z n ≥ 60 pomiarów próbek nie zawierających analizowanych substancji w kilku niezależnych seriach. Granica dla próby ślepej jest równa stężeniu, poniżej którego próbki wolne od substancji badanej znajdowane są z prawdopodobieństwem 95 %. Granica wykrywalności jest określona na podstawie granicy dla próby ślepej i odchylenia standardowego próbek o niskim stężeniu. Granica wykrywalności odnosi się do najniższego dającego się oznaczyć stężenia substancji analizowanej (wartość ponad granicę próby ślepej z 95 % prawdopodobieństwem). Granica oznaczalności to najniższe stężenie substancji analizowanej, mierzone w powtórnych oznaczeniach ze współczynnikiem zmienności pomiędzy seriami ≤ 20 %. Została ona wyliczona przez oznaczenie próbek o niskich stężeniach digoksyny. Wartości oczekiwane Dokładne oznaczanie stężenia digoksyny w próbkach jest niezbędne ze względu na jej bardzo wąski zakres terapeutyczny. Jednocześnie znaczna różnorodność reakcji na lek nawet przy podobnych dawkach, często powoduje nieprzewidywalny poziom digoksyny w surowicy.11 Proporcje stężenia digoksyny w sercu/surowicy mogą wahać się od 17:1 do 35:1.12 Zależności pomiędzy poziomem digoksyny w surowicy a efektem terapeutycznym czy toksycznym są podane w licznych opracowaniach.13,14, 15 Skutki lecznicze zauważalne są przy stężeniach pomiędzy 0.8‑2 ng/mL (1.0‑2.6 nmol/L). Poziomy digoksyny w surowicy powyżej 2 ng/mL (2.6 nmol/L) wiążą się z występowaniem objawów toksycznych, natomiast stężenie poniżej 0.8 ng/mL (1.0 nmol/L) z reguły nie jest skuteczne.16 2016-12, V 13.0 Polski Powtarzalność Średnia ng/mL (nmol/L) OS ng/mL (nmol/L) WZ % Poziom 1 0.9 (1.1) 0.06 (0.08) 6.8 Poziom 2 1.6 (2.1) 0.08 (0.10) 5.0 Poziom 3 2.8 (3.6) 0.10 (0.13) 3.4 Precyzja pośrednia Średnia ng/mL (nmol/L) OS ng/mL (nmol/L) WZ % Poziom 1 0.9 (1.1) 0.08 (0.10) 9.7 Poziom 2 1.6 (2.1) 0.10 (0.13) 6.1 Poziom 3 2.8 (3.6) 0.11 (0.14) 3.9 Porównanie metod Wartości digoksznz w surowicy ludzkiej oznaczone w analizatorze COBAS INTEGRA 700 przy pomocy odczynnika COBAS INTEGRA Digoxin (y) porównano z wynikami otrzymanymi przy zastosowaniu innej dostępnej na rynku metody (x). AxSYM Digoxin II TDx 88 63 min. 0.37 ng/mL 0.08 ng/mL max. 2.94 ng/mL 2.90 ng/mL Nachylenie 0.858 0.981 Przesunięcie 0.142 ng/mL 0.281 ng/mL Współczynnik korelacji 0.959 0.967 Ilość próbek (n) Zakres wartości Swoistość analityczna W analizatorze COBAS INTEGRA oznaczono następujące substancje wywołujące reakcje krzyżowe, w prawidłowej surowicy z dodatkiem 1.9 ng/mL (2.4 nmol/L) digoksyny. Każda substancja została przetestowana w 10-krotnie wyższym stężeniu niż jej zakres terapeutyczny lub normalny, jak to opisano w protokole NCCLS.21 Przy badaniu reakcji krzyżowych brano także pod uwagę precyzję oznaczeń. R. krzyżowa (%) = 3/4 100 x (wynik pomiaru – stęż. bad. substancji) stęż. substancji interferującej DIG 0020737836322COINV13.0 DIG Digoksyna Monitorowanie terapii Oznaczane stężenie ng/mL Reaktywność krzyżowa % β-Acetylodigoksyna 2.0 84.0 Digitoksyna 48.8 7.7 Digitoksygenina 39 1.2 Digoksygenina 25 6.2 Digoksygenino-bis-digitoksozyd 2 115.0 Digoksygenino-mono-digitoksozyd 2 112.2 Dihydrodigoksyna 20 3.0 β-Metylodigoksyna 1 110.3 Badany związek W analizatorze COBAS FARA II oznaczono następujące leki o podobnej strukturze lub, które potencjalnie mogą być podawane równolegle z digoksyną. Do badań wykorzystano prawidłową surowicę ludzką z dodatkiem digoksyny w stężeniu 2 ng/mL (2.6 nmol/L). Oznaczane stężenie ng/mL Reaktywność krzyżowa % Kanrenon 10000 < 0.001 Dehydroizoandrosteron 10000 < 0.03 Digitoksoza 10000 < 0.03 Estradiol 10000 < 0.03 Estriol 10000 < 0.03 Hydrokortyzon 10000 < 0.03 11-Hydroksyprogesteron 10000 < 0.03 17-Hydroksyprogesteron 10000 < 0.03 Prednizolon 10000 < 0.03 Prednizon 10000 < 0.03 Progesteron 10000 < 0.03 Spironolakton 10000 < 0.03 Badany związek Jakakolwiek modyfikacja ustawień analizatora wymaga walidacji przez laboratorium. Literatura 1 Lee KS, Klaus W. The subcellular basis for the mechanism of inotropic action of cardiac glycosides Pharmacol Rev 1971;23:193-261. 2 Hoffman BF. In: Fisch C, Surawicz B, eds. Effects of digitalis on electrical activity of cardiac fibers. Digitalis. New York, NY: Grune and Stratton 1969;93-109. 3 Moe GK, Farah AE. In: Goodman LS, Gilman A, eds. Digitalis and allied cardiac glycosides. The Pharmacologist Basis of Therapeutics. New York, NY: MacMillan Company 1970. 4 Valdes R Jr, Jortani S, Gheorghiade M. Standards of laboratory practice: cardiac drug monitoring. Clin Chem 1998;44(5):1096-1109. 5 Keys PW, Stafford RW. In: Taylor WJ, Finn AL, eds. Individualizing Drug Therapy: Practical Applications of Drug Monitoring. New York, NY: Gross Townsend Frank Inc 1981;vol 3:1-21. 6 Valdes R Jr. Endogenous digoxin-like immunoreactive factors: Impact on digoxin measurements and potential physiological implications. Clin Chem 1985;31:1525-1532. 7 Scholer A, Boecker J, Engelmayer U, et al. Comparability of a new turbidimetric digoxin test with other immunochemical tests and with HPLC - a multicenter evaluation. Clin Chem 1997;43:92-99. 8 Digibind Product Information. Burroughs Wellcome Co. Research Triangle Park, NC 1990. 9 Glick MR, Ryder KW, Jackson SA. Graphical Comparisons of Interferences in Clinical Chemistry Instrumentation. Clin Chem 1986;32:470-475. DIG 10 Bakker AJ, Mücke M. Gammopathy interference in clinical chemistry assays: mechanisms, detection and prevention. Clin Chem Lab Med 2007;45(9):1240-1243. 11 Lindenbaum J, Mellow MH, Blackstone MO, et al. Variation in the biologic availability of digoxin from four preparations. New Engl J Med 1971;285:1344-1347. 12 Doherty JE, Perkins WH, Flanigan WJ. The distribution and concentration of titrated digoxin in human tissues. Ann Intern Med 1967;66:116. 13 Reuning RH, Sams RA, Notari RE. Role of pharmacokinetics in drug dosage adjustment. I. Pharmacokinetic effect and apparent volume of distribution of digoxin. J Clin Pharmacol 1973;13:127-141. 14 Whiting B, Sumner DJ, Goldberg A. An assessment of digoxin radioimmunoassay. Scott Med J 1973;18:69-74. 15 Huffman DH, Crow JW, Pentikaimen P, et al. Clinical cardiac status, laboratory parameters and digoxin usage. Am Heart J 1976;91:28. 16 Smith TW, Haber E. Digoxin intoxication: the relationship of clinical presentation to serum digoxin concentration. J Clin Invest 1970;49:2377-2386. 17 Dickstein K, Cohen-Solal A, Filippatos G, et al. ESC Guidelines for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure 2008: the Task Force for the Diagnosis and Treatment of Acute and Chronic Heart Failure 2008 of the European Society of Cardiology. Developed in collaboration with the Heart Failure Association of the ESC (HFA) and endorsed by the European Society of Intensive Care Medicine (ESICM). Eur Heart J 2008;29:2388-2442. 18 Rathore SS, Curtis JP, Wang Y, et al. Association of serum digoxin concentration and outcomes in patients with heart failure. JAMA 2003;289(7):871-878. 19 Bongura E, Law T, Rifai N. Assessment of the immunoreactivity of digoxin metabolites and the cross-reactivity with digoxin-like immunoreactive factors in the Roche-TDM OnLine digoxin assay. Ther Drug Monit 1995;17:532-537. 20 National Committee for Clinical Laboratory Standards. User Evaluation of Precision Performance of Clinical Chemistry Devices; Tentative Guideline. Villanova, PA.: NCCLS;1992;4(12). NCCLS Publication EP5-T2. 21 National Committee for Clinical Laboratory Standards. Interference Testing in Clinical Chemistry; Proposed Guideline. Villanova, PA.: NCCLS; 1986;6(13). NCCLS Publication EP7-P. W niniejszej ulotce metodycznej jako separatora dziesiętnego, oddzielającego liczbę całkowitą od części dziesiętnych ułamka dziesiętnego stosuje się zawsze kropkę. Separatorów oddzielających tysiące nie używa się. Symbole Oprócz znaków zawartych w standardzie ISO 15223‑1, firma Roche Diagnostics używa następujących symboli i znaków. Zawartość zestawu Objętość po rekonstytucji lub wymieszaniu Globalny handlowy numer identyfikacyjny GTIN Dodatki, usunięte fragmenty oraz zmiany zostały oznaczone na marginesie. © 2016, Roche Diagnostics Roche Diagnostics GmbH, Sandhofer Strasse 116, D-68305 Mannheim www.roche.com Dystrybucka w USA: Roche Diagnostics, Indianapolis, IN US Customer Technical Support 1-800-428-2336 4/4 2016-12, V 13.0 Polski