FBP-Farmacja analityczna
Transkrypt
FBP-Farmacja analityczna
Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia Fakultatywny blok programowy Farmacja analityczna 1. Metryczka Nazwa Wydziału: Program kształcenia (kierunek studiów, poziom i profil kształcenia, forma studiów, np. Zdrowie publiczne I stopnia profil praktyczny, studia stacjonarne): Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej Farmacja, jednolite studia magisterskie, forma studiów: stacjonarne i niestacjonarne, profil ogólnoakademicki Rok akademicki: 2016/2017 Nazwa modułu/przedmiotu: Farmacja analityczna Kod przedmiotu (z systemu Pensum): -4195; -4201 Jednostka/i prowadząca/e kształcenie: Kierownik jednostki/jednostek: 1. Zakład Badania Środowiska (ZBŚ) 2. Zakład Bioanalizy i Analizy Leków (ZBiAL) 3. Zakład Bromatologii (ZB) 4 .Zakład Chemii Leków (ZChL) 5, Katedra i Zakład Chemii Nieorganicznej i Analitycznej (KiZChNiA) 6 Zakład Farmakodynamiki (ZFd) 7. Zakład Farmakoekonomiki (ZFe) 8. Katedra Farmakognozji i Molekularnych Podstaw Fitoterapii (KFiMPF) 9. Pracownia Matematyczna (PM) 10. Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej (ZMF) 11. Katedra i Zakład Technologii Leków i Biotechnologii Farmaceutycznej (KiZTLiBF) 12. Zakład Toksykologii (ZT) 13. Visiting profesor 14. Narodowy Instytut Leków 15. Pracownia Farmakologii Klinicznej Instytutu Kardiologii w Warszawie (PFKIK) 1.prof.dr hab. G. Nałęcz-Jawecki (ZBŚ) 2.prof.dr hab. P. Wroczyński (ZBiAL) 3.dr hab. A. Tokarz (ZB) 4.dr hab. T. Pawiński (ZChL) 5.prof.dr hab. W. Kołodziejski (KiZChNiA) 6.dr hab. M. Bujalska-Zadrożny (ZFd) 7.dr hab. T. Hermanowski (ZFe) 8.prof.dr hab. M. Naruszewicz (KFiMPF) 9.dr J. Chmaj (PM) Strona 1 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia 10.prof.dr hab. S. Tyski (ZMF) 11.dr hab. J. Turło (KiZTLiBF) 12.prof dr hab. I. Grudziński (ZT) 13. dr A. Stec 14. prof. dr hab. Z. Fijałek 15. dr P. Kunicki Rok studiów (rok, na którym realizowany jest przedmiot): IV, V Semestr studiów (semestr, na którym realizowany jest przedmiot): VII, VIII, IX Typ modułu/przedmiotu (podstawowy, kierunkowy, fakultatywny): fakultatywny Osoby prowadzące (imiona, nazwiska oraz stopnie naukowe wszystkich wykładowców prowadzących przedmiot): Zakład Badania Środowiska - prof. dr hab. G. Nałęcz-Jawecki Zakład Bioanalizy i Analizy Leków - prof. dr hab. Z. Fijałek - dr Z. Szrajber - mgr Sylwia Sołobodowska Zakład Bromatologii - dr hab. A. Tokarz - dr A. Białek - dr B. Bobrowska-Korczak - dr M. Jelińska - dr A. Stawarska Zakład Chemii Leków - dr hab. T. Pawiński - dr A. Dzierzgowska-Szmidt - dr A. Goldnik - dr M. Grudzień - dr P. Jaworski - dr Dorota Marszałek - dr E. Pirianowicz-Chaber - dr G. Rostafińska-Suchar - dr M. Strupińska - dr I. Szlaska - dr I. Winiecka Katedra i Zakład Chemii Nieorganicznej i Analitycznej - prof. dr hab. W. Kołodziejski - dr A. Kaflak - dr J. Kolmas - dr M. Kuras - dr M. Zielińska Pisklak - mgr A. Lis-Cieplak - mgr Ł. Pajchel Zakład Farmakodynamiki - mgr E. Gąsińska Zakład Farmakoekonomiki - mgr U. Cegłowska . Katedra Farmakognozji i Molekularnych Podstaw Fitoterapii - dr hab. A. Kiss - dr A. Bazylko - dr A. Parzonko Strona 2 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia - mgr M. Czerwińska - mgr A. Filipek - mgr S. Granica Pracownia Matematyczna - dr J. Chmaj - dr J. Kurkowiak Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej - prof. dr hab. S. Tyski - dr A. Laudy - dr B. Starościak - dr J. Stefańska - dr R. Wolinowska - mgr I. Maciąg - mgr I. Makuch Katedra i Zakład Technologii Leków i Biotechnologii Farm. - dr hab. J. Turło Zakład Toksykologii - prof. dr hab. I. Grudzinski - dr hab. M. Szutowski - dr M. Bambrowicz- Klimkowska - dr M. Łukasik - dr A. Małkowska - dr T. Szost Visiting profesor - dr A. Stec Narodowy Instytut Leków - prof. dr hab. Z. Fijaek + dr hab. J. Maurin + dr A. Błażewicz - mgr M. Kilian - mgr M. Popławska Pracownia Farmakologii Klinicznej Instytutu Kardiologii - dr P. Kunicki Erasmus TAK/NIE (czy przedmiot dostępny jest dla studentów w ramach programu Erasmus): NIE Osoba odpowiedzialna za sylabus (osoba, do której należy zgłaszać uwagi dotyczące sylabusa): Dr hab. Tomasz Pawiński Liczba punktów ECTS: 27 2. Cele kształcenia Strona 3 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia 1. Zapoznanie z różnymi metodami analizy chemicznej produktów leczniczych prostych i złożonych, w różnych postaciach leku (analiza jakościowa i ilościowa metodami klasycznymi i nowoczesnymi metodami instrumentalnymi). 2. Zapoznanie z metodami oceny jakości produktów leczniczych zgodnie z wymogami farmakopealnymi i normami producenta. 3. Zdobycie umiejętności samodzielnego wyboru metod analitycznych oraz interpretacji wyników. 4. Zdobycie wiedzy na temat procedur rejestracji leków w Polsce. 5. Zapoznanie ze specyfiką analizy substancji, ekstraktów roślinnych (metody izolacji, analizy jakościowej i ilościowej klasycznymi i nowoczesnymi metodami instrumentalnymi) oraz z metodami oceny jakości produktów roślinnych leczniczych zgodnie z wymogami farmakopealnymi. 6. Poznanie celu, założeń, terminologii i kryteriów dla prowadzenia terapii monitorowanej. 7. Poznanie podstaw farmakokinetyki klinicznej-parametrów farmakokinetycznych, losu leku w organizmie (system LADME), farmakokinetyki liniowej nieliniowej na wybranych przykładach. 8. Poznanie uwarunkowań dotyczących rodzaju materiału biologicznego użytego w analizie stężenia leku, czasu pobrania próbki, objętości próbki, jej przechowywania i transportu, laboratorium, treści formularza skierowania i zakresu informacji dotyczącej wyniku badań. 9. Poznanie praktycznych metod optymalizacji dawkowania. 10. Poznanie genetycznych uwarunkowań dotyczących polimorficznego potencjalnych interakcji będących m. in. wynikiem polimorfizmu. metabolizmu oraz 11. Poznanie metod analitycznych wykorzystywanych w terapii monitorowanej stężeniem leku w organizmie i technik izolacji leku z materiału biologicznego. 12. Poznanie kryteriów walidacji metod analitycznych stosowanych w terapii monitorowanej. 13. Poznanie zasad i uwarunkowań prowadzenia kontroli jakości w terapii monitorowanej. 14. Poznanie zasad prowadzenia terapii monitorowanej stężeniem leków przeciwpadaczkowych. 15. Poznanie zasad prowadzenia terapii monitorowanej stężeniem leków przeciwdepresyjnych. 16. Poznanie zasad prowadzenia terapii monitorowanej stężeniem antybiotyków aminoglikozydowych i glikopeptydowych. 17. Poznanie zasad prowadzenia terapii monitorowanej stężeniem wybranych cytostatyków. 18. Poznanie zasad prowadzenia terapii monitorowanej stężeniem leków antyretrowirusowych. 19. Poznanie zasad prowadzenia terapii monitorowanej stężeniem leków immunosupresyjnych. 20. Zdobycie wiedzy na temat stosowania wybranych metod biologicznych w badaniach leków. 21. Dostarczenie wiedzy z zakresu wybranych zagadnień dotyczących bezpieczeństwa żywności – organizacja kontroli w Polsce – obowiązujące przepisy prawne. 22. Dostarczenie wiedzy na temat składu chemicznego podstawowych artykułów żywności oraz poznanie nowoczesnych metod stosowanych w analizie żywności. 23. Zapoznanie z zanieczyszczeniami podstawowych artykułów żywności będącymi następstwem stosowanych technologii oraz skażeń środowiska podlegającymi stałemu monitoringowi w ramach kontroli bezpieczeństwa żywności. 24. Uświadomienie potrzeby rozwoju nowoczesnej analityki żywnościowej będącej w stanie nadążyć za postępem technologicznym w zakresie wytwarzania żywności. 25. Dostarczenie wiedzy na temat nowych idei oddziaływania składników diety na poprawę stanu zdrowotnego społeczeństwa. 26. Zapoznanie z problematyką analityczną substancji toksycznych naturalnie występujących w żywności. 27. Zdobycie wiedzy na temat wykorzystania metod spektroskopowych w farmaceutycznej analizie instrumentalnej (ASA, WD-XRF, UV/Vis, FT-IR, NMR). Strona 4 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia 28. Zdobycie praktycznych spektroskopowymi. umiejętności wykonywania analizy farmaceutyków metodami 29. Zdobycie umiejętności samodzielnego wyboru metody analitycznej, interpretacji wyników. 30. Poznanie elementów analizy toksykologicznej, izolowanie z różnego rodzaju materiału biologicznego, wykrywanie i identyfikacja poszczególnych grup leków. 31. Doskonalenie umiejętności oznaczenia oraz interpretacji uzyskanych wyników badań leków oraz ocena narażenia na ksenobiotyki. 32. Pogłębienie wiedzy z zakresu nowoczesnych instrumentalnych metod analitycznych. 33. Rozszerzenie wiedzy i umiejętności z zakresu mikrobiologicznej kontroli produktów leczniczych i wyrobów medycznych. 34. Poznanie zasad mikrobiologicznej kontroli kosmetyków. 35. Rozszerzenie wiedzy i umiejętności z zakresu mikrobiologicznej oceny środków dezynfekcyjnych w określonych obszarach ich zastosowania. 36. Poznanie drobnoustrojów, przeciwdrobnoustrojowych. które mogą stanowić źródło nowych związków 37. Poznanie metod określania antagonizmu i synergizmu związków przeciwdrobnoustrojowych. 38. Zapoznanie studentów z molekularnymi podstawami działania leków ze szczególnym uwzględnieniem aktywności receptorowej i procesu przekazywania sygnału w obrębie komórki. 39. Zapoznanie studentów z wpływem ekspresji genów na aktywność receptorową leków. 40. Zapoznanie studentów z metodami stosowanymi w badaniach przedklinicznych in vitro. 41. Utrwalenie materiału dotyczącego podstawowych metod wnioskowania statystycznego. 42. Opanowanie metod analizy zależności zmiennych. 43. Zdobycie wiedzy na temat metod diagnostycznych wykorzystujących przeciwciała monoklonalne (mAb) in vitro i in vivo. 44. Zdobycie wiedzy na temat metod pozyskiwania i produkcji przeciwciał o określonej swoistości. 45. Zdobycie wiedzy na temat technik obrazowania z wykorzystaniem mAb. 46. Zdobycie wiedzy na temat mAb i ich fragmentów sprzęgniętych z radioizotopami w diagnostyce, obrazowaniu i leczeniu nowotworów. 47. Zdobycie wiedzy na temat zastosowania mAb jako odtrutki np. w zatruciach glikozydami naparstnicy 48. Zdobycie wiedzy na temat zastosowani przeciwciał monoklonalnych w wykrywaniu substancji występujących w bardzo niskich stężeniach np.: toksyn, farmaceutyków, narkotyków czy hormonów ciążowych. 49. Zapoznanie z systemem refundacji leków i udział badań klinicznych w procesie refundacji. Strona 5 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia 3. Wymagania wstępne 1. Zna podstawy nomenklatury związków organicznych (zasady ogólne z uwzględnieniem układów heterocyklicznych i kolejności pierwszeństwa grup charakterystycznych) 2. Zna podstawy chemii ogólnej, nieorganicznej i organicznej i podstawy pracy laboratoryjnej. 3. Zna podstawowe metody analizy ilościowej klasycznej i instrumentalnej substancji leczniczych oraz analizy jakościowej. 4. Zna podstawowe pojęcia z dziedziny metod statystycznej oceny otrzymywanych wyników. 5. Zna podstawy biochemii, anatomii i fizjologii człowieka. 6. Umie na podstawie struktury chemicznej określić właściwości chemiczne nieznanej substancji i zaproponować metody określenia tożsamości i metodę oznaczania ilościowego. 7. Zna podstawy badania surowców roślinnych. 8. Zna podstawy nomenklatury związków organicznych oraz struktury związków pochodzenia naturalnego. 9. Zna podstawy metod chromatograficznych ze szczególnym uwzględnieniem chromatografii cieczowej i cienkowarstwowej 10. Zna podstawy identyfikacji związków metodami spektrometrii mas i spektroskopii magnetycznego rezonansu jądrowego. 11. Zna podstawowe mechanizmy decydujące o losie leku w organizmie ludzkim. 12. Zna podstawy fizjologii człowieka i szlaki metaboliczne w organizmie człowieka. 13. Zna podstawy teoretyczne metod analitycznych stosowanych w analizie leków. 14. Zna podstawowe kryteria walidacji metody analitycznej i parametry walidacyjne decydujące o wiarygodności metody. 15. Znajomość podstaw mikrobiologii 16. Znajomość podstaw spektroskopii oraz analizy instrumentalnej metodami spektroskopowymi. 17. Student zna podstawy biologii, mikrobiologii oraz genetyki i immunologii w zakresie I-III roku studiów. 18. Student posiada umiejętności pracy aseptycznej, wykonywania posiewów mikrobiologicznych, preparatów mikroskopowych oraz podstawowych prób diagnostyki mikrobiologicznej w zakresie podstawowego kursu z mikrobiologii na III roku studiów. 19. Student potrafi przeprowadzać kontrolę mikrobiologiczną leków w zakresie badania jałowości i czystości mikrobiologicznej metodą posiewu bezpośredniego oraz oceniać działanie środków dezynfekcyjnych w zakresie działania podstawowego. 20. Zna podstawowe pojęcia statystyki oraz podstawowe statystyki opisowe dla jednej zmiennej. 4. Przedmiotowe efekty kształcenia Lista efektów kształcenia Symbol przedmiotow ego efektu kształcenia Treść przedmiotowego efektu kształcenia Odniesienie do efektu kierunkowego (numer) Symbol tworzony przez osobę wypełniającą sylabus (kategoria: W-wiedza, Efekty kształcenia określają co student powinien wiedzieć, rozumieć i być zdolny wykonać po zakończeniu zajęć. Efekty kształcenia wynikają z celów danego przedmiotu. Osiągniecie każdego z efektów powinno być zweryfikowane, aby student uzyskał zaliczenie. Numer kierunkowego efektu kształcenia zawarty w Rozporządzeni u Ministra Strona 6 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia Nauki bądź Uchwały Senatu WUM właściwego kierunku studiów. Uumiejętności, Kkompetencje oraz numer efektu) W1 Zna metody klasyczne i instrumentalne stosowane w ocenie jakości substancji do celów farmaceutycznych z uwzględnieniem związków chiralnych oraz w analizie ilościowej w produktach leczniczych. BW13, CW6, CW11, CW22 W2 Zna i rozumie metody badań oceny jakości postaci leku. CW6, CW22, CW23, CW29,CW30 W3 U1 U2 U3 Posiada wiedzę na temat walidacji metod, stosowanych analizie preparatów leczniczych. Potrafi zaplanować i przeprowadzić badania precyzując cel i właściwie zinterpretować wyniki. Stosuje techniki komputerowe do interpretacji wyników analizy i zbierania informacji o leku Przeprowadza analizę substancji leczniczych metodami farmakopealnymi oraz dokonuje jej izolacji z produktu leczniczego BW25 CU18 CU19 CU17 W4 Posiada wiedzę w dziedzinie analizy substancji roślinnej oraz leku roślinnego i nowoczesnych metod wykorzystywanych w tej dziedzinie. AW21, CW36, CW37, CW38, CW39 W5 Zna kryteria wymagane dla terapeutycznego monitorowania leków. CW1, DW9, DW13, EW14, EW17 W6 Zna korzyści farmakoterapeutyczne i kliniczne związane z prowadzeniem TDM. DW10, EW11, DW12 W7 W8 Zna uwarunkowania formalno-prawne działalności laboratorium diagnostycznego. Zna zasady związane z wyborem, czasem pobrania, przechowywaniem i transportem próbki do analizy. EW22 CW1, DW9 W9 Zna metody analityczne stosowane w TDM. DW10 W10 Zna zasady i kryteria walidacji metod analitycznych stosowanych w terapii monitorowanej. BW14 W11 Zna techniki izolacji leku z materiału biologicznego. FW1 W12 W13 W14 W15 W16 W17 Rozumie przebieg i konsekwencje terapeutyczne przebiegu farmakokinetyki liniowej i nieliniowej. Posiada podstawową wiedzę o monitorowaniu leków we krwi jako metodzie poprawy skuteczności i bezpieczeństwa farmakoterapii. Dysponuje wiedzą z zakresu możliwych do wystąpienia interakcji zachodzących pomiędzy stosowanymi środkami leczniczymi. Rozumie zasady indywidualizacji farmakoterapii w oparciu o oznaczane wartości stężeń leku i obliczone parametry farmakokinetyczne. Zna metody indywidualizacji dawkowania leków w oparciu o kryteria farmakokinetyczne. Zna zasady prowadzenia terapii monitorowanej podczas stosowania leków kardiologicznych, przeciwpadaczkowych, przeciwdepresyjnych, antybiotyków i leków cytostatycznych, leków przeciwwirusowych i immunosupresyjnych. DW7 CW1, DW7 CW1 DW9, DW13 DW9, DW13 CW1, DW9, DW10 W18 Zna zasady i metody monitorowania biomarkerów. EW11 W19 Rozumie znaczenie monitorowania biomarkerów w optymalizacji leczenia EW11 Strona 7 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia immunosupresyjnego U4 W20 W21 W22 W23 W24 W25 W26 U5 U6 U7 U8 W27 U9 Umie wykorzystać zdobytą wiedzę w interpretacji farmakokinetycznego leku u indywidualnego chorego. profilu Zna nowoczesne metody analityczne służące do oznaczania ilościowego podstawowych składników żywności. Posiada informacje dotyczącą ustawodawstwa żywnościowego obowiązującego w Polsce. Posiada informacje na temat substancji zanieczyszczających żywność. Posiada wiedzę na temat zagrożeń i korzyści wynikających ze stosowania nowoczesnych technologii w procesie wytwarzania żywności. Posiada wiedzę dotyczącą wytwarzania produktów żywnościowych, wobec których istnieje oczekiwanie działania prozdrowotnego. Posiada informacje dotyczące zagrożeń związanych z obecnością naturalnych toksyn w żywności. Student jest świadomy konieczności doskonalenia metod analitycznych stosowanych w zakresie analityki żywnościowej z równoczesnym pogłębianiem wiedzy na temat potencjalnych zagrożeń wynikających z intensywnego rozwoju technologicznego. Oznacza zawartość wybranych składników odżywczych i zanieczyszczeń w produktach spożywczych, interpretuje uzyskane wyniki badań w odniesieniu do obowiązującego ustawodawstwa żywnościowego. Student określa korzyści i potencjalne zagrożenia wynikające ze stosowania nowoczesnych technologii w procesie wytwarzania żywności. Student posiada umiejętności dokonywania analizy chemicznej i teoretycznej wobec produktów działających prozdrowotnie (żywność funkcjonalna). Znajomość eliminowania zagrożeń ze strony produktów zawierających naturalne substancje toksyczne. Zna zalecenia EMA odnośnie analizy ryzyka środowiskowego stosowania leków. Potrafi wykonać biotest z bakteriami luminescencyjnymi oraz zinterpretować wyniki. DU6, DU9 BW13 DW40 DW33 DW33, DW35 DW33, DW36 DW33 DW34, DW37 DU26 DU29 DU27 DU29, DU61 DW31 FU1 U10 Potrafi ocenić działanie mutagenne próbki przy użyciu testu Amesa. FU1 U11 Umie wykonać i zinterpretować analizę fotodegradacji substancji czynnych leków. FU1 W28 Zna problematykę polimorfizmu. U12 Identyfikuje substancje nieorganiczne. U13 U14 U15 U16 U17 CW12 Wykorzystuje wiedzę o właściwościach substancji nieorganicznych w farmacji. Dobiera metodę analityczną do rozwiązania konkretnego zadania analitycznego oraz przeprowadza jej walidację. Wykonuje analizy jakościowe i ilościowe pierwiastków oraz związków chemicznych metodami instrumentalnymi oraz ocenia wiarygodność wyniku analizy w oparciu o metody statystyczne. Opisuje strukturę i właściwości związków organicznych, wie, jak otrzymywać związki organiczne w skali laboratoryjnej oraz analizować wybrane związki organiczne Przeprowadza kontrolę jakości substancji do celów farmaceutycznych oraz leków zgodnie z wymaganiami farmakopealnymi; proponuje odpowiednią metodę analityczną do określonego celu i przeprowadza walidację metody analitycznej. Strona 8 z 22 BU5 BU6 BU7 BU8 BU10 CU2 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia U18 U19 U20 U21 U22 U23 K1 Interpretuje wyniki uzyskane w zakresie oceny jakości substancji do celów farmaceutycznych oraz potwierdza zgodność uzyskanych wyników. Wykorzystuje metody matematyczne w opracowaniu i interpretacji wyników analiz i pomiarów. Obsługuje komputer w zakresie edycji tekstu, grafiki, analizy statystycznej, gromadzenia i wyszukiwania danych oraz przygotowania prezentacji. Wykorzystuje narzędzia informatyczne do opracowywania i przedstawiania wyników doświadczeń. Wykorzystuje technologie informacyjne do wyszukiwania potrzebnych informacji oraz do samodzielnego i twórczego rozwiązywania problemów. Stosuje techniki komputerowe do interpretacji wyników analizy i zebrania informacji o leku. Posiada nawyk korzystania z technologii informacyjnych do wyszukiwania i selekcjonowania informacji. CU18 BU13 BU15 BU16 BU17 CU19 BK1 K2 Wyciąga i formułuje wnioski z własnych pomiarów i obserwacji. BK2 K3 Posiada umiejętność pracy w zespole. BK3 W29 U24 U25 U26 W30 W31 W32 W33 W34 U27 U28 Zna pojęcia związane z toksykologią, w tym zagadnienia dotyczące metod alternatywnych stosowanych w toksykologii. Przewiduje rodzaje, kryteria i znaczenie badań w ocenie toksyczności ksenobiotyków oraz określa wymagania dotyczące tych badań; wyjaśnia sposób prowadzenia badań w celu oceny narażenia na związki toksyczne. Ocenia różnice w zagadnieniach związanych z rodzajem narażenia na trucizny (toksyczność ostra, przewlekła, efekty odległe). Przeprowadza izolację trucizn z materiału biologicznego i wybiera odpowiednią metodę ich detekcji; potrafi uzyskiwać wiarygodne wyniki laboratoryjnych badań toksykologicznych. Zna zasady diagnostyki mikrobiologicznej – w zakresie kontroli mikrobiologicznej produktów leczniczych, wyrobów medycznych i kosmetyków. Zna charakterystykę morfologiczną organizmów prokariotycznych i grzybów dostarczających surowce lecznicze i materiały stosowane w farmacji – w zakresie nowych związków przeciwdrobnoustrojowych. Zna wymagania stawiane różnym postaciom produktów leczniczych, w szczególności wymagania farmakopealne – w zakresie mikrobiologii. Zna i rozumie metody badań oceny jakości postaci leku– w zakresie oceny mikrobiologicznej. Zna i rozumie zasady dopuszczania do obrotu produktów leczniczych, wyrobów medycznych, kosmetyków – w zakresie mikrobiologii. Identyfikuje drobnoustroje na podstawie cech morfologicznych oraz właściwości fizjologicznych i hodowlanych - w zakresie kontroli mikrobiologicznej produktów leczniczych, wyrobów medycznych i kosmetyków. Przeprowadza kontrolę mikrobiologiczną leków oraz wykorzystuje metody mikrobiologiczne w ocenie skuteczności dezynfekcji. DW26 DU20 DU23 DU20 AW20 AW21 CW23 CW23 CW23 AU15. AU16 AU19 U29 Korzysta z farmakopei – w zakresie mikrobiologii. U30 Stosuje odpowiednie metody wnioskowania statystycznego. U31 Potrafi określić zależność cech stosując odpowiednie metody. BU14 U32 Wykorzystuje pakiet Statistica do analiz statystycznych BU14 W35 Rozumie komórkowe i molekularne mechanizmy działania leków oraz wybranych cząsteczek znajdujących się obecnie na etapie oceny przedklinicznej i klinicznej. Strona 9 z 22 FU1 BU13, BU14 CW2, DW17 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia W36 W37 W38 U33 U34 Zna budowę i funkcje poszczególnych receptorów komórkowych dla cząsteczek biologicznie czynnych. . Zna klasyfikację poszczególnych receptorów komórkowych oraz potrafi odróżnić ich poszczególne typy i podtypy. CW2 FW1 Zna metodologię wybranych badań receptorowych in vitro. FW1 Potrafi przypisać działanie receptorowe do aktywności poszczególnych substancji czynnych. Rozumie i potrafi zidentyfikować zależności pomiędzy strukturą chemiczną leku a jego aktywnością receptorową. FU1 FU1 U35 Identyfikuje wpływ ekspresji genów na zależność ligand-receptor. FU1 W39 Zna metody pozyskiwania i produkcji przeciwciał monoklonalnych (mAb) FW1 W40 Zna techniki obrazowania z wykorzystaniem mAb. FW1 W41 Zna techniki immunofluorescencyjne z wykorzystaniem mAb. FW1 W42 W43 W44 W45 Zna zasady stosowania mAb sprzęgniętych z radioizotopami w diagnostyce, obrazowaniu i leczeniu nowotworów. Zna techniki stosowania przeciwciał monoklonalnych w wykrywaniu substancji występujących w bardzo niskich stężeniach. Zna zasady stosowania mAb jako odtrutki np. w zatruciach glikozydami naparstnicy. Zna zasady stosowania mAb jako odtrutki np. w zatruciach glikozydami naparstnicy. Zna system refundacji i zastosowanie badań klinicznych w procesie refundacji. FW1 FW1 FW1 EW36 5. Formy prowadzonych zajęć Forma Liczba godzin Liczba grup Minimalna liczba osób w grupie Wykład 113 1 20 Seminarium 45 1 20 Ćwiczenia 242 4 1 6. Tematy zajęć i treści kształcenia W1-Wykład 1 - Farmakopea Polska i Europejska. W2-Wykład 2 - Enancjoselektywne metody analizy substancji i produktów leczniczych. W3-Wykład 3- Budowa chemiczna i właściwości fizykochemiczne oraz skład i postać leku jako kryterium wyboru metody analitycznej. W4-Wykład 4- Zasady doboru metody rozdzielania i izolacji stosowane w ilościowej i jakościowej analizie leków. W5-Wykład 5- Metody klasyczne i instrumentalne stosowane w ocenie tożsamości, zawartości, czystości substancji leczniczych oraz środków pomocniczych stosowanych do badania określonej postaci leku, ze szczególnym naciskiem położonym na metody nowoczesne i techniki sprzężone. W6-Wykład 6- Identyfikacja nieznanej substancji metodą HPLC-MS/MS. W7-Wykład 7- Metoda XRPD (rentgenowskiej dyfraktometrii proszkowej). W8-Wykład 8- Uniwersalna metoda HPLC z detekcją wyładowań koronowych CORONA CAD oraz z detekcją Strona 10 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia amperometryczną. W9-Wykład 9- Metoda spektroskopii bliskiej podczerwieni (NIR) w produkcji i kontroli produktów leczniczych. W10-Wykład 10- Aktualne wymagania oceny bezpieczeństwa i jakości produktów leczniczych w krajach Wspólnoty Europejskiej i w Polsce. W11-Wykład 11- Problematyka analityczna w ocenie trwałości leków, wpływ różnych czynników na stabilność leku, reakcje zachodzące w leku w różnych warunkach przechowywania. W12-Wykład 12- Globalna koncepcja certyfikacji i badań w krajach Unii Europejskiej i w Polsce. W13-Wykład 13- Analiza jakościowa i ilościowa produktów leczniczych wieloskładnikowych, zawierających substancje o różnej budowie. W14-Wykład 14- Walidacja metod analitycznych stosowanych w badaniach produktów leczniczych W15-Wykład 15- Badanie składu substancji i ekstraktów roślinnych. Walidacja metod analitycznych. W16-Wykład 16- Badanie składu substancji i ekstraktów roślinnych. Metody badań związków polifenolowych. W17-Wykład 17- Badanie składu substancji i ekstraktów roślinnych. Zastosowanie metod NMR. W18-Wykład 18- Badanie aktywności substancji i ekstraktów roślinnych. Metodyka badań in vitro w hodowlach komórkowych. W19-Wykład 19- Substancje toksyczne występujące naturalnie w żywności. W20-Wykład 20- Nanotechnologia w żywności – korzyści i zagrożenia. W21-Wykład 21- Nowe spojrzenie na kwasy tłuszczowe i ich metabolity – w nawiązaniu do ich działania przeciwzapalnego. W22-Wykład 22- Introduction to analytical methods. W23-Wykład 23- Spectrophotometry (UV-VIS). W24-Wykład 24- Spectroscopy (AAS, AES, ICP). W25-Wykład 25- Separation method (HPLC, LCMSMS, GCMS,SPE). W26-Wykład 26- Advanced analytical methods-research papers W27-Wykład 27- Absorpcyjna spektrometria atomowa (ASA) i spektroskopia fluorescencji rentgenowskiej z dyspersją długości fali (WD-XRF). W28-Wykład 28- Zaawansowane metody spektrofotometrii UV/Vis. W29-Wykład 29- Spektroskopia oscylacyjna IR i Ramana. W30-Wykład 30- Spektroskopia NMR węgla-13 i azotu-15 w roztworach i w fazie stałej. W31-Wykład 31- Metody instrumentalne w analizie toksykologicznej. W32-Wykład 32- Specyfika analizy toksykologicznej. W33-Wykład 33- Badania antydopingowe. Strona 11 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia W34-Wykład 34- OMICS w toksykologii: toksykogenomika, toksykoproteomika, toksykometabolomika. W35-Wykład 35- Metody obrazowania molekularnego. W36-Wykład 36- Wprowadzenie do nanotoksykologii. W37-Wykład 37- Toksykologia alternatywna „3R”. W38-Wykład 38- Produkty lecznicze, wyroby medyczne, produkty biobójcze, kosmetyki – wymagania mikrobiologiczne, dokumenty normatywne. W39-Wykład 39- Walidacja metod badania jałowości i czystości mikrobiologicznej produktów leczniczych. W40-Wykład 40- Ochrona przeciwdrobnoustrojowa produktów leczniczych, kosmetyków. W41-Wykład 41- Środki dezynfekcyjne i antyseptyczne, badanie aktywności – II faza, obszary stosowania. W42-Wykład 42- Drobnoustroje (także GMO) jako źródło nowych związków przeciwdrobnoustrojowych W43-Wykład 43- ABC wnioskowania statystycznego W44-Wykład 44- Zależność i niezależność cech. Korelacja Pearsona i Spearmana W45-Wykład 45- Regresja liniowa W46-Wykład 46- Walidacja metod analitycznych W47-Wykład 47- Testy nieparametryczne W48-Wykład 48- Receptory i mechanizmy przekazywania sygnału w komórce. Klasyfikacja receptorów. W49-Wykład 49- Wpływ cząsteczek biologicznie czynnych na aktywność receptorów. Zależność między strukturą chemiczną leku a działaniem receptorowym . W50-Wykład 50- Metodologia badań receptorowych in vitro. W51-Wykład 51- Ekspresja genów a zależność ligand – receptor. W52-Wykład 52- Znaczenia badań receptorowych dla projektowania nowatorskich strategii terapeutycznych. W53-Wykład 53- Przegląd metod diagnostycznych wykorzystujących przeciwciała monoklonalne (mAb) In vitro i In vivo. Metody pozyskiwania i produkcji przeciwciał o określonej swoistości. W54-Wykład 54- Techniki obrazowania z wykorzystaniem mAb (mikroskopia, cystometria przepływowa, techniki z wykorzystaniem znaczników fluorescencyjnych, kropki kwantowe). W55-Wykład 55- mAb i fragmenty przeciwciał sprzęgnięte z radioizotopami w diagnostyce, obrazowaniu i leczeniu nowotworów. W56-Wykład 56- Metody immunofluorescencyjne oparte o wykorzystanie mAb. W57-Wykład 57- Zastosowanie przeciwciał monoklonalnych oparte na wykrywaniu substancji występujących w bardzo niskich stężeniach np.: toksyn, farmaceutyków, narkotyków czy hormonów ciążowych. Zastosowanie jako odtrutki np. w zatruciach glikozydami naparstnicy. W58-Wykład 58- Specyfikacja produktu leczniczego W59-Wykład 59- Procedury rejestracji leków w Polsce i UE. Strona 12 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia C1-Ćwiczenia 1- Badanie tożsamości, czystości i zawartości leków jednoskładnikowych dostępnych w obrocie aptecenym w różnych postaciach (stała, półstała i plynna. C2-Ćwiczenia 2- Metoda spektrofluorymetryczna – dobór warunków oznaczania, wybór zakresu stężeń, gaszenie fluorescencji stężeniowe, zależne od pH i obecności innych związków. Wykorzystanie metody do oznaczania substancji leczniczych w postaci leku i suplementach diety. C3-Ćwiczenia 3- Rozdział i oznaczanie ilościowe enancjomerów leków chiralnych. C4-Ćwiczenia 4- Wykorzystanie pośrednich metod rozdziału enencjomerów do oznaczania leków techniką HPLC. C5-Ćwiczenia 5- Określanie czystości enancjomerycznej substancji leczniczych i leków z uwzględnieniem kontroli stereochemicznych procesów zachodzących w czasie przechowywania. C6-Ćwiczenia 6- Oznaczanie zanieczyszczeń specyficznych występujących w substancjach leczniczych oraz lekach techniką HPLC – walidacja metody. C7-Ćwiczenia 7- Identyfikacja nieznanej substancji metodą HPLC-MS/MS. C8-Ćwiczenia 8- Identyfikacja składu fazowego mieszaniny przy pomocy metody XRPD (rentgenowskiej dyfrakcji proszkowej. C9-Ćwiczenia 9- Oznaczanie zawartości pochodnych syldenafilu i tadalafilu metodą HPLC-CAD (detekcja wyładowań koronowych) oraz Oznaczanie paracetamolu i p-aminofenolu metodą HPLC z detekcją amperometryczną C10-Ćwiczenia 10- Oznaczanie elektrolitów w roztworach przeznaczonych do żywienia pozajelitowego z wykorzystaniem techniki elektroforezy kapilarnej (CE). C11-Ćwiczenia 11- Oznaczanie wybranych pierwiastków metodą spektrometrii mas z plazmą indukcyjnie sprzężoną (ICP-MS). C12-Ćwiczenia 12- Pełna analiza złożonych produktów leczniczych o różnej budowie, występujących w różnych formach (stała, płynna, rozproszona), obejmująca również metody stosowane w ocenie trwałości leków, ze zwróceniem uwagi na dobór metod oznaczania środków lec zniczach w obecności ich produktów rozkładu, jak również oznaczanie zanieczyszczeń występujących w lekach (met.TLC, HPTLC i HPLC). C13-Ćwiczenia 13- Praktyczne przeprowadzenie walidacji wybranej metody analitycznej. Studenci samodzielnie przygotowują mieszanki modelowe produktów leczniczych o różnej zawartości substancji leczniczej, w których wykonują oznaczenia. Po przeprowadzeniu oceny statystycznej wyników wykonują pełną charakterystykę metody. C14-Ćwiczenia 14- Pełna analiza jakościowa i ilościowa złożonego leku recepturowego – postać stała płynna i rozproszona. C15-Ćwiczenia 15- Badanie leku recepturowego – studenci samodzielnie proponują i opracowują metody wykrywania, wyodrębniania, rozdzielania i określania zawartości substancji leczniczych. C16-Ćwiczenia 16- Izolacja eskuliny z Hippocastani cortex. C17-Ćwiczenia 17- Izolacja kofeiny z liści herbaty (Theae folium). Izolacja kofeiny z liści herbaty (Theae folium). C18-Ćwiczenia 18- Oznaczanie zawartości kwasu rozmarynowego w preparatach metodą densytometryczną po rozdziale TLC. C19-Ćwiczenia 19- Oznaczanie i porównanie zawartości arbutyny w substancji roślinnej i preparatach metodą FPVI (kolorymetryczną) i metodą FPIX (HPLC). C20-Ćwiczenia 20- Badania jakościowe i ilościowe preparatów roślinnych zawierających wyciągi z Echinacea sp. według FPIX metodą HPLC. Strona 13 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia C21-Ćwiczenia 21- Oznaczanie stężenia kwasu mykofenolowego w osoczu metodą HPLC. C22-Ćwiczenia 22- Oznaczanie stężenia leków antyarytmicznych w surowicy. C23-Ćwiczenia 23- Oznaczanie stężenia leków immunosupresyjnych w krwi pełnej metodą LC-MS/MS. C24-Ćwiczenia 24- Ocena jakości zdrowotnej wybranych produktów żywności – MDA (malonylodialdehyd) jako wskaźnik zmian peroksydacyjnych w produktach żywności, metodą HPLC. C25-Ćwiczenia 25- Oznaczanie zawartości cukrów prostych w sokach owocowych z wykorzystaniem techniki wysokosprawnej chromatografii cieczowej. C26-Ćwiczenia 26- Oznaczanie i porównanie zawartości białka w róż-nych środkach spożywczych za pomocą nowoczesne-go automatycznego zestawu destylacyjnego, model K-350 i blokowego modelu grzewczego, firmy Buchi oraz automatycznej biurety firmy Scott. C27-Ćwiczenia 27- Oznaczanie zawartości tłuszczu w posiłkach gotowanych i gotowych produktach spożywczych metodą ekstrakcji ciągłej za pomocą aparatu Soxhleta. C28-Ćwiczenia 28- Analiza działania mutagennego przy użyciu testu Amesa. C29-Ćwiczenia 29- Kompleksowa analiza fotodegradacji leków przy użyciu HPLC oraz testu oceny cytotoksyczności. C30-Ćwiczenia 30- Zalecenia EMA odnośnie oceny ryzyka środowiskowego stosowania leków. C31-Ćwiczenia 31- Badanie metodą ASA zawartości metali ciężkich w wybranych preparatach farmaceutycznych i tkankowych. C32-Ćwiczenia 32- Badanie metodą WD-XRF zawartości krzemu w wybranych preparatach ziołowych. C33-Ćwiczenia 33- Wyznaczanie metodą UV/Vis stałej trwałości kompleksu β-cyklodekstryny z wybraną pochodną adamantanu (amantadyna, rymantadyna lub memantyna). C34-Ćwiczenia 34- Badanie powierzchni tabletek powlekanych metodą FT-IR z detekcją fotoakustyczną PAS (specjalny detektor, rejestracja widma oscylacyjnego warstwy powierzchniowej) oraz identyfikacja związków organicznych w tabletkach metodą mikroskopii w średniej podczerwieni (metoda spektroskopii oscylacyjnej FT-IR, zastosowanie mikroskopu na podczerwień). C35-Ćwiczenia 35- Charakterystyka NMR-owska olanzapiny w roztworze: wykonanie kompletu widm 1D ( 1H i 13C, DEPT) i 2D (1H COSY, 1H-13C HETCOR) i ich interpretacja. C36-Ćwiczenia 36- Identyfikacja form polimorficznych olanzapiny w tabletkach metodą 13C CP/MAS NMR. C37-Ćwiczenia 37- Analiza morfologii i rozpuszczania tabletek metodą obrazowania NMR (MRI). C38-Ćwiczenia 38- Analiza ksenobiotyków, w tym leków i narkotyków w materiale biologicznym przy zastosowaniu technik TLC, HPLC i GC/MS. C39-Ćwiczenia 39- Identyfikacja metodą GC/MS toksycznych zanieczyszczeń w alkoholach nielegalnego pochodzenia. C40-Ćwiczenia 40- Czystość mikrobiologiczna lub jałowość wybranych form produktów leczniczych pochodzenia naturalnego lub wyrobów medycznych (np. krople do nosa, uszu), badanie metodą filtracji. C41-Ćwiczenia 41- Test LAL – pokaz. C42-Ćwiczenia 42- Test ochrony przeciwdrobnoustrojowej. Strona 14 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia C43-Ćwiczenia 43- Określanie antagonizmu i synergizmu związków przeciwdrobnoustrojowych. C44-Ćwiczenia 44- II faza badania aktywności środków dezynfekcyjnych (szkiełka lub krążki metalowe). C45-Ćwiczenia 45- Analiza zależności zmiennych ilościowych (regresja liniowa, korelacja). C46-Ćwiczenia 46- Analiza danych jakościowych. C47-Ćwiczenia 47- Metody nieparametryczne. C48-Ćwiczenia 48- Komputerowy program Statistica. S1-Seminarium 1- Terapia monitorowana – cel, założenia, terminologia. S2-Seminarium 2- Kryteria dla leków do prowadzenia terapii monitorowanej. S3-Seminarium 3- Znaczenie farmakokinetyki w terapii monitorowanej – system LADME. S4-Seminarium 4- Zakres terapeutyczny, stężenia subterapeutyczne i toksyczne. S5-Seminarium 5- Materiał biologiczny – rodzaj materiału, czas pobrania próbki, przechowywanie i transport. S6-Seminarium 6- Uwarunkowania formalno-prawne laboratorium diagnostycznego. S7-Seminarium 7- Zlecenie badania – formularz skierowania. S8-Seminarium 8- Wynik badania – zakres informacji, interpretacja. S9-Seminarium 9- Praktyczne metody optymalizacji dawkowania. S10-Seminarium 10- Terapia monitorowana – polimorficzny metabolizm uwarunkowany genetycznie. S11-Seminarium 11- Terapia monitorowana – interakcje lekowe. S12- Seminarium 12- Techniki izolacji leku z materiału biologicznego S13-Seminarium 13- Metody analityczne stosowane w terapii monitorowanej. S14-Seminarium 14- Walidacja metod analitycznych stosowanych w terapii monitorowanej. S15-Seminarium 15- Kontrola jakości w terapii monitorowanej. S16-Seminarium 16- Terapeutyczne monitorowanie stężeniem wybranych leków kardiologicznych. S17-Seminarium 17- Terapeutyczne monitorowanie stężeniem leków przeciwpadaczkowych. S18-Seminarium 18- Terapeutyczne monitorowanie stężeniem leków przeciwdepresyjnych. S19-Seminarium 19glikopeptydowych. Terapeutyczne monitorowanie stężeniem antybioty-ków amino glikozydowych S20-Seminarium 20- Terapeutyczne monitorowanie stężeniem leków antyretrowirusowych. S21-Seminarium 21- Terapeutyczne monitorowanie stężeniem wybranych leków przeciwnowotworowych. S22-Seminarium 22- Terapeutyczne monitorowanie stężeniem leków immunosupresyjnych. S23-Seminarium 23- Znaczenie parametrów farmakokinetycznych leków w optymalizacji farmakoterapii. Strona 15 z 22 i Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia S24-Seminarium 24- Monitorowanie biomarkerów. Analiza farmakokinetyczno-farmakodynamiczna. S25-Seminarium 25- Skład chemiczny podstawowych artykułów żywności oraz omówienie rodzajów zanieczyszczeń, obowiązkowo badanych, zgodnie z odpowiednimi regulacjami prawa w kwestii bezpieczeństwa żywności. 7. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia Symbol przedmiotowe go efektu kształcenia np. W1, U1, K1 W1, W2, U1, U3 Symbole form prowadzonych zajęć np. W, S, C W1, W2 C1, C2,C3, C4, C5, C6 Sposoby weryfikacji efektu kształcenia Kryterium zaliczenia Pole definiuje metody wykorzystywana do oceniania studentów np.: kartkówka, kolokwium, raport z ćwiczeń itp. Każda metoda powinna być opisana odrębnie. Obowiązkowa obecność na zajęciach Wykłady – obecność 2pkt Ćwiczenia – wykonanie ćwiczeń – 20 pkt. - raporty - 20 pkt. Maksymalna liczba punktów 42 Minimalna liczba punktów 17 W1, W2, W3, U1, U2, U3 W3, W4, W5, W6, W7, W8, W9, W11, W13, W14, C7, C8, C9, C10, C11,C12, C13, C14, C15 Ćwiczenia pokazowe - 5 pkt. Wykłady obecność – 5 pkt. Ćwiczenia wykonanie – 15 pkt. Seminarium aktywność - 10 pkt. Kolokwium - 40 pkt. W1 W22, W23, W24, W25, W26 Obecność na wykładzie 10 pkt W4 W14, W15,W16,W17, W18, C16, C17, C18, C19, C20 Wykłady - obecność – 10 pkt. Ćwiczenia – wykonanie - 30 pkt. C21,C22, C23, S1-S24 Obecność -wykłady i seminaria - 20 pkt. Wykonanie ćwiczeń – 7 pkt. Aktywność na seminariach – 8 pkt. Repetytorium – 19 pkt. W19, W20, W21,C25, C26, C27, S25 Kartkówka- 8pkt Aktywność - 8 pkt Seminarium – 4 pkt Kolokwium – 10 pkt C28, C29, C30, C31 Ćwiczenia-wykonanie i raport – 15 pkt. Maksymalna liczba punktów 15 Minimalna liczba punktów 6 W1, W2,W28, U12-U23, K1-K3 W27,W28, W29, W30, C32, C33, C34, C35, C36, C37 Ćwiczenia (aktywność, kartkówka, wykonanie) – 12 pkt. Wykłady (obecność) 3 pkt. Kolokwium – 25 pkt. Maksymalna liczba punktów 40 Minimalna liczba punktów 16 W29, U24, U25, U26 W31, W32, W33, W34, W35, W36, W37, C38, C39, C40, Zaliczenie pisemne – test wielokrotnego wyboru – 20 pkt. W30, W31, W32, W33, W34, U27, U28, K4 W38, W39, W40, W41, W42, C41, C42, C43, C44, Wykłady-obecność- 2,5 pkt. Ćwiczenia-wykonanie – 17,5 pkt. U29, U30, U31 W43, W44, W45, W46, W47, C45, C46, C47, C48 Wykłady – obecność 5 pkt. Praca domowa – 5 pkt. Kolokwium - 10 pkt. W5, W6, W7, W8, W9, W10, W11, W12, W13, W14, W15, W16, W17, W18, W19, U4 W20, W21,W22, W23, W24, W25, W26, U5, U6, U7, U8 W27, U9, U10, U11 Maksymalna liczba punktów 75 Minimalna liczba punktów 30 Maksymalna liczba punktów 10 Strona 16 z 22 Minimalna liczba punktów 4 Maksymalna liczba punktów 40 Minimalna liczba punktów 16 Maksymalna liczba punktów 54 Minimalna liczba punktów 22 Maksymalna liczba punktów 30 Minimalna liczba punktów 12 Maksymalna liczba punktów 20 Minimalna liczba punktów 8 Maksymalna liczba punktów 20 Minimalna liczba punktów 8 Maksymalna liczba punktów 20 Minimalna liczba punktów 8 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia W35, W36, W37, W38, U32, U33, U34 W39, W40, W41, W42, W43, W44 W45 W48, W49, W50, W51, W52 Wykłady-obecność – 5 pkt. Maksymalna liczba punktów 5 Minimalna liczba punktów 2 W53, W54, W55, W56, W57 Repetytorium pisemne – 5 pkt. Maksymalna liczba punktów 5 Minimalna liczba punktów 2 W10, W12, W58, W59 Farmakoekonomika Maksymalna liczba punktów 4 Minimalna liczba punktów 2 8. Kryteria oceniania Forma zaliczenia przedmiotu: np. egzamin testowy, egzamin praktyczny lub zaliczenie bez oceny (nie dotyczy) ocena kryteria Suma punktów w semestrze VII i VIII 2,0 (ndst) Poniżej 160 pkt. Suma punktów w semestrze IX Poniżej 80 pkt. Suma punktów w semestrze VII i VIII 3,0 (dost) 160-178 punktów – 3 (dst) Suma punktów w semestrze IX 80-89,5 punktów – 3 (dst) Suma punktów w semestrze VII i VIII 3,5 (ddb) 178,5-199,5 punktów – 3,5 (dość db) Suma punktów w semestrze IX 90-100,5 punktów – 3,5 (dość db) Suma punktów w semestrze VII i VIII 4,0 (db) 200-222,5 punktów – 4 (db) Suma punktów w semestrze IX 101-112,5 punktów – 4 (db) Suma punktów w semestrze VII i VIII 4,5 (pdb) 223-244,5 punktów – 4,5 (ponad db) Suma punktów w semestrze IX 113-123 punktów – 4,5 (ponad db) Suma punktów w semestrze VII i VIII 5,0 (bdb) 245-266 punktów – 5 (bdb) Suma punktów w semestrze IX 123,5-134 punktów – 5 (bdb) 9. Literatura Strona 17 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia Literatura obowiązkowa: 1. Farmakopea Polska VI, VII, VIII, IX; 2. Cygański A., Metody spektroskopowe w chemii analitycznej, Wydawnictwo WNT, 2012; 3. Zając M., Jelińska A., Muszalska I., Nogowska M., Stanisz B., Ocena jakości substancji leczniczych i preparatów farmaceutycznych według wymagań farmakopealnych i ICH, Wydawnictwo Kontekst, Poznań, 2000; 4. Zając M., Jelińska A.; Ocena jakości produktów leczniczych, Wydawnictwo Naukowe Uniwersytetu Medycznego w Poznaniu, 2010; 5. Witkiewicz Z.; Podstawy chromatografii, WNT, Warszawa, 2005; 6. Szczepaniak W.; Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, Warszawa, 2012; 7. Paruszewski R. i wsp.; Ilościowa analiza środków leczniczych, AM Warszawa; 8. Pawiński T, i wsp.; Analiza jakościowa środków leczniczych. Skrypt do ćwiczeń z Chemii Leków, WUM 2014; 9. Zejc A., Gorczyca M.; Chemia leków, PZWL Warszawa 2009; 10. Patrick G.; Chemia leków – krótkie wykłady, PWN Warszawa 2009; 11. Zając M., Pawełczyk E., Jelińska A.; Chemia leków, AM Poznań 2006; 12. E. Pawełczyk i wsp., Chemiczne mechanizmy działania leków; AM Poznań 1995; 13. Fitak B.; Podstawowe metody badania tożsamości substancji farmaceutycznych; AM, Warszawa 1999; 14. Nomenklatura związków organicznych : PTCh, Warszawa 1994, 15. Normy zakładowe producenta; 16. Pawełczyk E., Zając M.: Walidacja metod analizy chemicznej, AM, Poznań, 1999; 17. Kohlmünzer S.; Farmakognozja, PZWL, Warszawa, 2003; 18. H. Gertig, J. Przysławski – Bromatologia – zarys nauki o żywności i żywieniu, PZWL, Warszawa, 2006; 19. Gertig – Żywność a zdrowie i prawo, PZWL Warszawa, 2004; 20. J. Gawęcki, L. Hryniewiecki – Podstawy nauki o żywieniu, PWN Warszawa, 1998; 21. Skrypt do ćwiczeń dla studentów Wydziału Farmaceutycznego WUM. Praca zbiorowa pod red. Andrzeja Tokarza, Warszawa, 2011. 22. Rozporządzenie Ministra Zdrowia z dnia 22 listopada 2010 r. w sprawie dozwolonych substancji dodatkowych (Dziennik Ustaw Nr 232 poz. 1525) z modyfikacjami; 23. Ustawa o bezpieczeństwie żywności i żywienia. Dziennik Ustaw nr 171, poz. 1224, 2006 z modyfikacjami; 24. Gabrielsson J., Weiner D., Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Data Analysis, Swedish Pharmaceutical Press, Stockholm 2000; 25. Noe D.A. A short Course in Clinical Pharmacokinetics, Applied Therapeutics, Vancouver, 1993; 26. Levy G.A.; Lake J.R., Holt D.W., Wallemacq P., Current trends in transplantation: drug therapy and monitoring, Abbott Laboratories/Abbott Park, 2009; 27. Wiela-Hojeńska A., Blaski i cienie immunoterapii, Wydawnictwo Consort, Wrocław, 2009 ; 28. Orzechowska-Juzwenko K., Farmakologia Kliniczna, znaczenie w praktyce medycznej, Górnicki Wydawnictwo Medyczne, Wrocław, 2006; 29. Burton M.E., Shaw L.M., Schentag J.J., Evans W.E., Applied Pharmacokinetics & Pharmacodynamics. Principles of Therapeutic Drug Monitoring, Lippincott Williams&Wilkins, Philadelphia , 2006; 30. Hermann T.W. Farmakokinetyka, Teoria i Praktyka, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa, 2002; 31. Therapeutic Drug Monitoring, clinical guide, Abbott Laboratories, 2010; 32. Guder W.G., Narayanan S., Wisser H., Zawta B., Próbki: od pacjenta do laboratorium. Wpływ zmienności przedanalitycznej na jakość wyników badań laboratoryjnych. 32. Tyski S.: Zakres prac normalizacyjnych komisji technicznych ds. dezynfekcji i antyseptyki PKN i CEN. Część I – Informacje ogólne, normy fazy I oraz normy obszaru medycznego. Laboratorium 10; 10-15 (2006); 33. Tyski S.: Zakres prac normalizacyjnych komitetów technicznych ds. dezynfekcji i antyseptyki PKN i CEN. Część II – Normy obszaru weterynarii oraz obszaru spożywczego, przemysłowego, gospodarstwa domowego i sfery instytucjonalnej. Laboratorium 11; 12-16 (2006); 34. Starościak B.: Badania mikrobiologiczne kosmetyków w świetle norm EN–PN ISO. Świat Przemysłu Kosmetycznego 3, 14-16 (2012); 35. Rozporządzenie Ministra Zdrowia z dnia 23 grudnia 2002 roku w sprawie określenia procedur pobierania próbek kosmetyków oraz procedur przeprowadzania badań laboratoryjnych; 36. Grzybowska W., Wójcik A., Tyski S.: Ocena oddziaływania neomycyny z antybiotykiem innej grupy na wybrane szczepy bakteryjne. Med. Dośw. Mikrobiol., 2004, 56, 187-198; Strona 18 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia 37. Grzybowska W., Banaszczyk-Ruś M, Tyski S.: Ocena oddziaływania aminoglikozydu z antybiotykiem innej grupy na wybrane szczepy bakteryjne. Med. Dośw. Mikrobiol., 2004, 56, 275-285; 38. Grzybowska W., Banaszczyk-Ruś M, Wójcik A.,Tyski S.: Porównanie metod szachownicy i „time-kill” stosowanych do badania zestawienia dwóch antybiotyków. Med. Dośw. Mikrobiol., 2004, 56, 391-403; 39. Grzybowska W., Banaszczyk-Ruś M, Tyski S.: Porównanie metod szachownicy i E-testu stosowanych do badania przeciwbakteryjnej aktywności zestawień dwóch antybiotyków. Med. Dośw. Mikrobiol., 2005, 57, 65-75; 40. Nowak J.Z., Zawilska J.B. (red.) Receptory i mechanizmy przekazywania sygnału; Wyd. Nauk. PWN, Warszawa, 2004; 41. J. Chmaj Testy statystyczne; 42. J. Kurkowiak Analiza statystyczna z pakietem Statistica materiały dostępne w wersji elektronicznej; 43. Nowak J.Z., Zawilska J.B. (red.) Receptory i mechanizmy przekazywania sygnału; Wyd. Nauk. PWN, Warszawa, 2004; 44. Nowak J.Z., Zawilska J.B. (red.)Receptory: struktura, charakterystyka, funkcja; Wyd. Nauk. PWN, Warszawa, 2004; 45. Brunton Laurence L., Laza John S., Parker Keith L. Farmakologia Goodmana &Gilmana; Wyd. Czelej, Warszawa, 2010; 46. Lauffenburger D. Receptors: Models for Binding, Trafficking, and Signaling, 1993; Literatura uzupełniająca: 1. Kealey D., Haines P.J.; Chemia analityczna – krótkie wykłady; PWN, Warszawa 2009; 2. Minczewski J., Marczenko Z.; Chemia analityczna, PWN, 2005 3. Kocjan R.; Chemia analityczna, PZWL, 2002; 4. Steinhilber D., Schubert-Zsilavecz M., Roth H. J.; Chemia Medyczna, MedPharm Polska 2012; 5. Kwapiszewski W., Krężel J.; Podstawy nazewnictwa leków, AM, Łódź 1996; 6. Patrick G.L.; Chemia organiczna – krótkie wykłady; PWN, Warszawa 2008; 7. Kostowski W., Kulikowski P.; Farmakologia; PZWL 2010; 8. Kostowski W., Herman Z.S.; Farmakologia; PZWL 2005; 9. European Pharmacopoeia 2005 – 2013; 10. Patrick G.L.; Chemia medyczna; WNT 2003; 11. Skrypt z chemii leków. Chemiczna analiza środków leczniczych (leki proste): R. Kasprzykowska, A.S. Kołodziejczyk: Uniwersytet Gdański, Gdańsk 2010; 12.ICH Q2 Validation of Analytical Procedures: Text and Methodology; 13.ICH Q3A Impurities in New Drug Substances; 14.ICH Q3B Impurities in New Drug Products; 15.ICH Q3C Impurities: Guideline for Residual Solvents; 16.ICH Q3D Guideline For Elemental Impurities; 17. Reich E. & Schibli A.; High-Performance Thin_Layer Chromatography for the Analysis of Medicinal Plants. Thieme, Stuttgart, 2007; 18. Strzelecka H., Kamińska J., Kowalski J., Walewska E.; Chemiczne metody badań roślinnych surowców leczniczych. PZWL, Warszawa,1982; 19.Dey P.M., Harborne J.B.; Methods in Plant Biochemistry. Plant Phenolics. Academic Press, London, 1989; 20.Silverstein R.M., Webster F.X., Kremle D.J.; Spektroskopowe metody identyfikacji związków organicznych, PWN, Warszawa, 2007; 21.Halabalaki M., Vougogiannopoulou K., Mikros E., Skaltsounis A.L.; Recent advances and new strategies in the NMR-based identification of natural products. Current Opinion in Biotechnology, 25 (2014) 1–7; 22.Steinmann D., Ganzera M.; Recent advances on HPLC/MS in medicinal plant analysis. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis 55 (2011) 744–757; 23.Brown P.N. & Lister P,; Current initiatives for the validation of analytical methods for botanicals. Current Opinion in Biotechnology, 25 (2014) 124–128; 24.Wolfender J-L., Ndjoko K., Hostettmann K.; Liquid chromatography with ultraviolet absorbance–mass spectrometric detection and with nuclear magnetic resonance spectroscopy: a powerful combination for the on-line structural investigation of plant metabolites. Journal of Chromatography A, 1000 (2003) 437–455; 25.Pellati F., Orlandini G., Benvenuti J.; Simultaneous metabolite fingerprinting of hydrophilic and lipophilic compounds in Echinacea pallida by high-performance liquid chromatography with diode array and electrospray ionization-mass spectrometry detection. Journal of Chromatography A, 1242 (2012) 43– 58; 26.Eliasson A.C.: Carbohydrates in Food, Second Edition, CRC Press 2006; 27.Goeij S.: Quantitative analysis methods for sugars, Universiteit van Amsterdam; http://www.science.uva.nl/onderwijs/thesis/centraal/files/f1341724672.pdf Strona 19 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia 28.Molnár-Perl I.: Role of chromatography in the analysis of sugars, carboxylic acids and amino acids in food. Journal of Chromatography A, 2000, 891(1), 1-32. 29. Z. Kęcki, Podstawy spektroskopii molekularnej, PWN, Warszawa 1992; 30. Red. A. Hryniewicz, E.Rokita, Fizyczne metody badań w biologii, medycynie i ochronie środowiska, PWN, Warszawa 1999; 31. R.M. Silverstein, F.X. Webster, D.J. Kiemle, Spektroskopowe metody identyfikacji związków organicznych, PWN, Warszawa 2012; 32. Red. W. Zieliński, A. Rajca, Metody spektroskopowe i ich zastosowanie do identyfikacji związków organicznych, WNT, Warszawa 2000; 33. Piotrowski J.K. ,Podstawy toksykologii, Wydawnictwa NT, Warszawa 2006; 34.Watkins, III, J.B., Klaassen C.D., Casarett and Doull's Essentials of Toxicology, McGraw-Hill Professional”, 2nd edition (July 12, 2010); 35. Klaassen C.D., Watkins III J.B., wyd.I Zielińska-Psuja B., Sapota A., „Casarett&Doull Podstawy toksykologi, MedPharm Polska, 2014; 36. PN-EN ISO 22716:2009 Kosmetyki – Dobre Praktyki Produkcji (GMP) – Przewodnik Dobrych Praktyk Produkcji 37. PN-EN ISO 21149:2009 Kosmetyki – Mikrobiologia – Zliczanie i wykrywanie aerobic mesophilic bacteria; 38. PN-EN ISO 16212:2011 Kosmetyki – Mikrobiologia – Oznaczanie liczby drożdży i pleśni; 39. PN-EN ISO 18416:2009 Kosmetyki – Mikrobiologia – Wykrywanie Candida albicans; 40. PN-EN ISO 22717:2010 Kosmetyki – Mikrobiologia – Wykrywanie obecności Pseudomonas aeruginosa; 41. PN-EN ISO 21150:2010 Kosmetyki – Mikrobiologia – Wykrywanie obecności Escherichia coli; 42. PN-EN ISO 22718:2010 Kosmetyki – Mikrobiologia – Wykrywanie obecności Staphylococcus ureus; 43. PN-EN 13727+A1:2014-02 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Ilościowa zawiesinowa metoda określania; bakteriobójczego działania w obszarze medycznym. Metoda badania i wymagania (faza 2, etap 1); 44. PN-EN 1499:2013-07 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Higieniczne mycie rąk. Metoda badania i wymagania (faza 2/etap 2); 45. PN-EN 1500:2013-07 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Higieniczna dezynfekcja rąk metodą wcierania. Metoda badania i wymagania (faza 2/etap 2); 46. PN-EN 12791:2005 (U) Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Chirurgiczna dezynfekcja rąk. Metoda badania i wymagania (faza 2/etap 2); 47. PN-EN 14561:2008 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Ilościowa nośnikowa metoda określania działania bakteriobójczego środków przeznaczonych do narzędzi stosowanych w obszarze medycznym. Metoda badania i wymagania (faza 2, etap 2); 48. PN-EN 13624:2013-12 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Ilościowa zawiesinowa metoda określania działania grzybobójczego lub działania bójczego na grzyby drożdżopodobne w obszarze medycznym. Metoda badania i wymagania (faza 2, etap 1); 49. PN-EN 14562:2008 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Ilościowa nośnikowa metoda określania działania grzybobójczego lub bójczego wobec grzybów drożdżopodobnych środków przeznaczonych do narzędzi stosowanych w obszarze medycznym. Metoda badania i wymagania (faza 2, etap 2); 50. PN-EN 14348:2006 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Ilościowa zawiesinowa metoda określania prątkobójczego działania chemicznych środków dezynfekcyjnych stosowanych w obszarze medycznym, w tym środków do dezynfekcji narzędzi. Metody badania i wymagania (faza 2, etap 1); 51. PN-EN 14563:2012 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne – Ilościowa nośnikowa metoda określania działania prątkobójczego lub bójczego na prątki gruźlicy chemicznych środków dezynfekcyjnych stosowanych do narzędzi w obszarze medycznym – Metoda badania i wymagania (faza 2, etap 2); 52. PN-EN 14476:2013-12 Chemiczne środki dezynfekcyjne i antyseptyczne. Ilościowa zawiesinowa metoda określania wirusobójczego działania w obszarze medycznym. Metoda badania i wymagania (faza 2, etap 1); 53. Ross S.M., Introduction to Probability and Statistics for Engineers and Scientists; 54. Wayne W. D., Biostatistics: A foundation for analysis in the health Science; 10. Kalkulacja punktów ECTS (1 ECTS = od 25 do 30 godzin pracy studenta) Forma aktywności Liczba godzin Liczba punktów ECTS Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim: Strona 20 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia Wykład 113 Seminarium 45 Ćwiczenia 242 Samodzielna praca studenta (przykładowe formy pracy): W tym polu opisujemy nakład samodzielnej pracy przeciętnego studenta konieczny aby zaliczyć przedmiot. W kalkulacji należy uwzględnić m.in. konieczność przygotowania się do zajęć, wykonania pracy domowych, przygotowania się do zaliczeń itp. Przygotowanie studenta do zajęć 148 Przygotowanie studenta do zaliczeń 84 Przygotowanie raportów 40 Razem 672 27 11. Informacje dodatkowe Informacje dotyczące przedmiotu, miejsca odbywania się i terminu zajęć umieszczone są w przewodniku dydaktycznym, gablocie przy wejściu do Zakładów. Konsultacje udzielane są w godzinach pracy Zakładów. Zaliczenie zajęć blokowych odbywa się rocznie przez opiekuna bloku. Ocena wynika z punktacyjnego systemu zaliczenia: - za każdy przedmiot w bloku student może uzyskać maksymalnie tyle punktów, ile wynosi liczba godzin zajęć realizowanych w jednostce; - do zaliczenia semestru trzeba uzyskać co najmniej 60% całkowitej liczby punktów w danym semestrze; - zaliczenie każdego przedmiotu wymaga uzyskania minimum 40% możliwych punktów w danej jednostce; - jednostki prowadzące zajęcia dydaktyczne decydują o sposobie przyznawania punktów z danego przedmiotu. Do zaliczenia FBP Farmacja analityczna studenta obowiązuje zebranie z każdego modułu w semestrze minimum 40 % punktów możliwych do zdobycia. Jednak łącznie ze wszystkich modułów w semestrze ilość zdobytych punktów musi stanowić 60 % możliwych do zdobycia. W semestrze VII, VIII i IX maks. ilość punktów wynosi odpowiednio 138, 128 i 134. Zakład Chemii Leków - Dr hab. Tomasz Pawiński [email protected] Informacje dotyczące przedmiotu, miejsca odbywania się i terminu zajęć umieszczone są w przewodniku dydaktycznym, gablocie przy wejściu do Zakładów. Konsultacje udzielane są w godzinach pracy Zakładów. Nie zapewniamy środków ochrony osobistej (rękawiczki, fartuchy, okulary, obuwie ochronne). Podpis Kierownika Jednostki Podpis osoby odpowiedzialnej za sylabus Strona 21 z 22 Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r. Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia Strona 22 z 22