Projektowanie leków - Wydział Farmaceutyczny

Transkrypt

Załącznik nr 1 do zarządzenia nr 54/2015 Rektora WUM z dnia 14.07.2015 r.
Załącznik nr 2 do procedury opracowywania i okresowego przeglądu programów kształcenia
Indywidualny Tok Studiów
Projektowanie leków
1. Metryczka
Nazwa Wydziału:
Program kształcenia
(kierunek studiów,
poziom i profil
kształcenia, forma
studiów, np. Zdrowie
publiczne I stopnia profil
praktyczny, studia
stacjonarne):
Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej
Farmacja, jednolite studia magisterskie, forma studiów: stacjonarne
i niestacjonarne, profil ogólnoakademicki
Rok akademicki:
2016/2017
Nazwa
modułu/przedmiotu:
Projektowanie leków
Kod przedmiotu (z
systemu Pensum):
-4199; -4205
Jednostka/i
prowadząca/e
kształcenie:
Kierownik
jednostki/jednostek:
1. Katedra Chemii Nieorganicznej i Analitycznej (KChNiA)
2. Zakład Bioanalizy i Analizy Leków (ZBiAL)
3. Zakład Chemii Fizycznej (ZChF)
4 .Zakład Chemii Leków (ZChL)
5, Zakład Badania Środowiska (ZBŚ)
6 Zakład Farmakodynamiki (ZFd)
7. Zakład Farmakoekonomiki (ZFe)
8 Katedra Farmacji Stosowanej i Bioinżynierii (KiZFSiB)
9. Katedra i Zakład Technologii Leków i Biotechnologii
Farmaceutycznej (KiZTLiBF)
10. Zakład Toksykologii (ZT)
11 Zakład Chemii Organicznej
12 Wydział chemii Uniwersytet Warszawski (ChemUW)
13. Narodowy Instytut Leków (NIL)
14 Instytut Chemii Organicznej PAN (ICHO)
1. prof.dr hab. W. Kołodziejski (KChNiA)
2.prof.dr hab. P. Wroczyński (ZBiAL)
3. prof.dr hab. I. Wawer (ZChF)
4.dr hab. T. Pawiński (ZChL)
5. prof.dr hab. G. Nałęcz-Jawecki (ZBŚ)
6.dr hab. M. Bujalska-Zadrożny (ZFd)
7.dr hab. T. Hermanowski (ZFe)
8.prof.dr hab. M. Małecki (KFiMPF)
9. dr hab. J. Turło (KiZTLiBF
10. prof dr hab. I. Grudziński (ZT)
11 prof. dr hab. D. Maciejewska
12 prof dr hab A. Leś
Strona 1 z 24
13.prof dr hab.
14. prof. dr hab. W. Danikiewicz
Rok studiów (rok, na
którym realizowany jest
przedmiot):
IV, V
Semestr studiów
(semestr, na którym
realizowany jest
przedmiot):
VII, VIII, IX
Typ modułu/przedmiotu
(podstawowy,
kierunkowy,
fakultatywny):
fakultatywny
Osoby prowadzące
(imiona, nazwiska oraz
stopnie naukowe
wszystkich
wykładowców
prowadzących
przedmiot):
Katedra i Zakład Chemii Nieorganicznej i Analitycznej
- prof. dr hab. W. Kołodziejski
- dr hab. M. Sobczak
- dr hab. J. Kolmas
- dr A. Kaflak
- dr M. Kuras
- dr E. Pindelska
- dr M. Zielińska Pisklak
- dr A. Lis-Cieplak
- dr Ł. Pajchel
Zakład Bioanalizy i Analizy Leków
- prof. dr hab. Z. Fijałek
Zakład Chemii Fizycznej
- prof. dr hab. Iwona Wawer
- dr J. Chmaj
- dr J. Kurkowiak
- dr Ł. Szeleszczuk
- dr K. Zawada
- dr K. Makarowa
- dr D. Pisklak
- dr M. Łażniewski
Zakład Chemii Leków
- dr hab. T. Pawiński
- dr A. Dzierzgowska-Szmidt
- dr E. Pirianowicz-Chaber
Zakład Badania Środowiska
- prof. dr hab. G. Nałęcz-Jawecki
Zakład Farmakodynamiki
- mgr E. Gąsińska
Zakład Farmakoekonomiki
- mgr U. Cegłowska
Katedra Farmacji Stosowanej i Bioinżynierii
-prof. dr hab. M. Małecki
Katedra i Zakład Technologii Leków i Biotechnologii Farm.
- dr hab. J. Turło
Zakład Toksykologii
- prof. dr hab. I. Grudzinski
Zakład Chemii Organicznej
- prof. dr hab. D. Maciejewska
- dr hab. P. Luliński
- dr T.Żołek
- dr M. Niemyjska
- dr E. Hejchman
Strona 2 z 24
Wydział Chemii Uniwersytet Waeszawski
- - prof. dr hab. A. Leś
Narodowy Instytut Leków
- prof . dr hab. Z Chilmonczyk
- dr hab. J. Maurin
- dr A. Błażewicz
- mgr M. Kilian
- mgr M. Popławska
Instytut Chemii Organicznej PAN
- prof. dr hab. W. Danikiewicz
Erasmus TAK/NIE (czy
przedmiot dostępny jest
dla studentów w ramach
programu Erasmus):
NIE
Osoba odpowiedzialna
za sylabus (osoba, do
której należy zgłaszać
uwagi dotyczące
sylabusa):
Dr Dariusz Pisklak
Liczba punktów ECTS:
27
2. Cele kształcenia
Strona 3 z 24
1. Poznanie podstaw teoretycznych metod wykorzystywanych w modelowaniu molekularnym
2. Poznanie metod stosowanych w komputerowo wspomaganym projektowaniu leków
3. Opanowanie przez studenta teoretycznych i praktycznych podstaw spektroskopii NMR i EPR
4. Możliwości praktycznego wykorzystania spektroskopii NMR i EPR w farmacji, chemii i medycynie
5. Poznanie podstaw teoretycznych metod stosowanych w analizie substancji farmaceutycznych w
fazie stałej ( XRD, ssNMR)
6. Zdobycie umiejętność doboru odpowiedniej metodyki oraz wykorzystania metod modelowania
molekularnego w analizie danych eksperymentalnych.
7. Zdobycie umiejętność wykorzystania metod wspomaganych komputerowo w projektowaniu leków
(CADD)
8. Poznanie podstaw teoretycznych oraz możliwości wykorzystania spektrometrii MS w analizie
farmaceutycznej
9. Poznanie podstawowych praw i pojęć krystalograficznych oraz sposobu klasyfikacji ciał
krystalicznych opartego na symetrii.
10. Zaznajomienie się z technikami dyfrakcji i rozpraszania promieniowania rentgenowskiego i
neutronów na monokrysztale jak i próbkach polikrystalicznych oraz ich zastosowanie w analizie
strukturalnej.
11. Zrozumienie pojęcia polimorfizmu ciał krystalicznych oraz zależności pomiędzy strukturą a funkcją
cząsteczek i ich właściwościami fizykochemicznymi
12. Przedstawienie podstawowych pojęć chemii teoretycznej i kwantowej
13. Zaznajomienie studentów z podstawowymi metodami kwantowymi do przewidywania struktury i
reaktywności związków chemicznych i układów biochemicznych
14. Zdobycie wiedzy na temat metod analizy bioinforamtycznej oraz możliwości wykorzystania baz
bioinformatycznych
15. Wiedza i zrozumienie roli nowoczesnej syntezy organicznej w projektowaniu substancji
16. Umiejętność analizowania materiału literaturowego w procesie projektowania substancji o
zaplanowanych właściwościach (wybór struktur wiodących, wybór metod syntezy nowych
substancji i materiałów, krytyczna ocena otrzymanych rezultatów).
17. Poznanie metod analizy chemometrycznej
18. Zdobycie wiedzy na temat aktualnych trendów rozwoju nanofarmacji.
19. Poznanie podstaw rachunku macierzowego i zastosowań do rozwiązywania układów równań
liniowych i diagonalizacji macierzy
20. Zdobycie wiedzy na temat metod otrzymywania innowacyjnych postaci leków
21. Poznanie podstaw analizy chemometrycznej
22. Zdobycie wiedzy na temat aktualnych trendów rozwoju nanofarmacji
23. Zapoznanie z różnymi metodami analizy chemicznej produktów leczniczych prostych i złożonych,
w różnych postaciach leku (analiza jakościowa i ilościowa metodami klasycznymi i nowoczesnymi
metodami instrumentalnymi).
24. Zapoznanie z metodami oceny jakości produktów leczniczych zgodnie z wymogami
farmakopealnymi i normami producenta.
25. Zdobycie umiejętności samodzielnego wyboru metod analitycznych oraz interpretacji wyników.
26. Zdobycie wiedzy na temat procedur rejestracji leków w Polsce.
27. Poznanie genetycznych uwarunkowań dotyczących polimorficznego
potencjalnych interakcji będących m. in. wynikiem polimorfizmu.
Strona 4 z 24
metabolizmu
oraz
28. Zdobycie wiedzy na temat stosowania wybranych metod biologicznych w badaniach leków.
29. Zdobycie wiedzy na temat wykorzystania metod spektroskopowych w farmaceutycznej analizie
instrumentalnej (ASA, WD-XRF, UV/Vis, FT-IR, NMR).
30. Zdobycie praktycznych
spektroskopowymi.
umiejętności
wykonywania
analizy
farmaceutyków
metodami
31. Zdobycie umiejętności samodzielnego wyboru metody analitycznej, interpretacji wyników.
32. Poznanie elementów analizy toksykologicznej, izolowanie z różnego rodzaju materiału
biologicznego, wykrywanie i identyfikacja poszczególnych grup leków.
33. Doskonalenie umiejętności oznaczenia oraz interpretacji uzyskanych wyników badań leków oraz
ocena narażenia na ksenobiotyki.
34. Pogłębienie wiedzy z zakresu nowoczesnych instrumentalnych metod analitycznych.
35. Zapoznanie studentów z molekularnymi podstawami działania leków ze szczególnym
uwzględnieniem aktywności receptorowej i procesu przekazywania sygnału w obrębie komórki.
36. Zapoznanie studentów z wpływem ekspresji genów na aktywność receptorową leków.
37. Zapoznanie studentów z metodami stosowanymi w badaniach przedklinicznych in vitro.
38. Utrwalenie materiału dotyczącego podstawowych metod wnioskowania statystycznego.
39. Opanowanie metod analizy zależności zmiennych.
40. Zdobycie wiedzy na temat metod diagnostycznych wykorzystujących przeciwciała monoklonalne
(mAb) in vitro i in vivo.
41. Zdobycie wiedzy na temat metod pozyskiwania i produkcji przeciwciał o określonej swoistości.
42. Zdobycie wiedzy na temat technik obrazowania z wykorzystaniem mAb.
43. Zdobycie wiedzy na temat mAb i ich fragmentów sprzęgniętych z radioizotopami w diagnostyce,
obrazowaniu i leczeniu nowotworów.
44. Zdobycie wiedzy na temat zastosowania mAb jako odtrutki np. w zatruciach glikozydami
naparstnicy
45. Zdobycie wiedzy na temat zastosowani przeciwciał monoklonalnych w wykrywaniu substancji
występujących w bardzo niskich stężeniach np.: toksyn, farmaceutyków, narkotyków czy
hormonów ciążowych.
46. Zapoznanie z systemem refundacji leków i udział badań klinicznych w procesie refundacji
Strona 5 z 24
3. Wymagania wstępne
1.
Zna podstawy nomenklatury związków organicznych (zasady ogólne z uwzględnieniem układów
heterocyklicznych i kolejności pierwszeństwa grup charakterystycznych)
2.
Zna podstawy chemii ogólnej, nieorganicznej i organicznej i podstawy pracy laboratoryjnej.
3.
Zna podstawowe metody analizy ilościowej klasycznej i instrumentalnej substancji leczniczych
oraz analizy jakościowej.
4.
Znajomość podstaw chemii fizycznej w zakresie termodynamiki, statyki chemicznej oraz kinetyki
5.
Zna podstawowe pojęcia z dziedziny metod statystycznej oceny otrzymywanych wyników.
6.
Zna podstawy biochemii, anatomii i fizjologii człowieka.
7.
Umie na podstawie struktury chemicznej określić właściwości chemiczne nieznanej substancji i
zaproponować metody określenia tożsamości i metodę oznaczania ilościowego.
8.
Zna podstawy nomenklatury związków organicznych oraz struktury związków pochodzenia
naturalnego.
9.
Zna podstawy metod chromatograficznych ze szczególnym uwzględnieniem chromatografii
cieczowej i cienkowarstwowej
10. Zna podstawy identyfikacji związków metodami spektrometrii mas i spektroskopii magnetycznego
rezonansu jądrowego.
11. Zna podstawowe mechanizmy decydujące o losie leku w organizmie ludzkim.
12. Zna podstawy fizjologii człowieka i szlaki metaboliczne w organizmie człowieka.
13. Zna podstawy teoretyczne metod analitycznych stosowanych w analizie leków.
14. Zna podstawowe kryteria walidacji metody analitycznej i parametry walidacyjne decydujące o
wiarygodności metody.
15. Znajomość podstaw spektroskopii oraz analizy instrumentalnej metodami spektroskopowymi.
16. Student zna podstawy biologii, mikrobiologii oraz genetyki i immunologii w zakresie I-III roku
studiów.
17. Zna podstawowe pojęcia statystyki oraz podstawowe statystyki opisowe dla jednej zmiennej.
18. Znajomość podstaw obsługi komputera
4. Przedmiotowe efekty kształcenia
Lista efektów kształcenia
Symbol
przedmiotow
ego efektu
kształcenia
Symbol
tworzony
przez osobę
wypełniającą
sylabus
(kategoria:
W-wiedza,
Uumiejętności,
Kkompetencje
oraz numer
efektu)
Treść przedmiotowego efektu kształcenia
Odniesienie do
efektu
kierunkowego
(numer)
Efekty kształcenia określają co student powinien wiedzieć, rozumieć i być
zdolny wykonać po zakończeniu zajęć. Efekty kształcenia wynikają z celów
danego przedmiotu. Osiągniecie każdego z efektów powinno być
zweryfikowane, aby student uzyskał zaliczenie.
Numer
kierunkowego
efektu
kształcenia
zawarty w
Rozporządzeni
u Ministra
Nauki bądź
Uchwały
Senatu WUM
właściwego
kierunku
studiów.
Strona 6 z 24
W1
Student zna charakterystykę i możliwości wykorzystania
rekombinowanych wektorów wirusowych AAV w terapii genowej
W2
Student zna charakterystykę, funkcję oraz możliwości wykorzystania
krótkich, niekodujących RNA (miRNA, siRNA) jako potencjalnych
czynników terapeutycznych
W3
Student zna źródła komórek macierzystych, charakterystykę i
wykorzystanie ich w terapii
W4
Student zna wymogi farmakopealne dotyczące preparatów genowych
U1
Umiejętność wykorzystania baz danych w analizie problemów
biologicznych.
BU17
U2
Umiejętność posługiwania się programami obliczeniowymi z dziedziny
farmacji teoretycznej.
BU11, BU12
U3
Umiejętność wykorzystania narzędzi bioinformatycznych w
rozwiązywaniu problemów naukowych oraz prawidłowego doboru
metodologii.
BU11, BU12
U4
Umiejętność analizy wyników narzędzi bioinformatycznych
BU11, BU12
W5
Znajomość mechanizmów fizyko-chemicznych odpowiedzialnych za
oddziaływanie leku z receptorem
CW1,DW16.
DW17, AW11
W6
Wiedza na temat możliwości wykorzystania metod modelowania w
projektowaniu leków
CW9 DW16
W7
Opanowanie podstaw teoretycznych i praktycznych na których bazują
poszczególne metody obliczeniowe
BU11, BU12
W8
Znajomość możliwości zastosowania oraz wad i zalet stosowania
określonych metod obliczeniowych
BU11, BU12
W9
Znajomość podstaw metod teoretycznych stosowanych w projektowaniu
leków in-silico
BU11, BU12
W10
Znajomość metod bioinformatycznych stosowanych w projektowaniu
leków.
CW9
U5
Umiejętność dobrania odpowiednich metodę obliczeniowych w celu
rozwiązania określonego problemu naukowego
BU11, BU12
U6
Samodzielne posługiwanie się pakietami obliczeniowymi typu : Gaussian,
Sybyl, Hyperchem
BU11, BU12
U7
Umiejętność wykorzystania wyników teoretycznych w analizie danych
eksperymentalnych
BU11
U8
Umiejętność posługiwania odpowiednimi pakietami bioinformatycznymi
BU12
U9
U10
Umiejętność wykorzystania metod modelowania homologicznego w
przewidywaniu struktur białek
Samodzielna interpretacja i analiza uzyskanych wyników obliczeń
Strona 7 z 24
BU11, BU12,
BU16
teoretycznych
W11
W12
W13
W14
Zna podział , budowę i zasady nomenklatury polimerów biomedycznych.
Zna klasyfikację, metody otrzymania oraz właściwości nanomateriałów
stosowanych w farmacji i medycynie.
Zna współczesne koncepcje i rozwiązania dotyczące innowacyjnych
nośników substancji leczniczych
Zna współczesne technologie otrzymywania koniugatów substancji
leczniczych, proleków wielkocząsteczkowych i polimerowych systemów
terapeutycznych.
BW17, BW27
CW23
CW24, CW25
CW22, CW24,
CW28
W15
Zna podstawowe pojęcia z zakresu algebry liniowej (macierze,
wyznaczniki, przestrzenie liniowe)
W16
Zna pojęcia z zakresu rachunku całkowego
BW23
U11
Umiejętność samodzielnego wykonania podstawowych działań z zakresu
rachunku macierzowego oraz rachunku całkowego
BU12
U12
Student potrafi rozwiązywać równania różniczkowe zwyczajne liniowe
BU12
U13
Student potrafi sformułować podstawowe prawa i teorie z chemii
teoretycznej
BW6,
BW15,BU11
U14
Student potrafi wskazać odpowiednie metody kwantowe i symulacyjne do
przewidywania struktury przestrzennej związków chemicznych
BU11, BU12
U15
Student potrafi wskazać odpowiednie metody teoretycznej oceny
parametrów termodynamicznych układów biochemicznych
BU11, BU12
U16
Student potrafi wskazać odpowiednie metody kwantowe i symulacyjne do
przewidywania budowy i dynamiki układów chemicznych
BU11, BU12
W17
Zna metody poszukiwania nowych substancji leczniczych
CW9
W18
Zna metody wytwarzania przykładowych substancji leczniczych,
stosowane operacje oraz jednostkowe procesy chemiczne, ich ekonomikę i
ekologię
CW10
U17
Opisuje i analizuje zjawiska i procesy fizyczne występujące w
farmakoterapii i diagnostyce chorób
BU3
U18
Wykorzystuje metody i modele matematyczne w farmacji
BU12
U19
Wykorzystuje technologie informacyjne do wyszukiwania potrzebnych
informacji oraz do samodzielnego i twórczego rozwiązywania problemów
BU17
K1
Posiada nawyk korzystania z technologii informacyjnych do
wyszukiwania i selekcjonowania informacji
BK1
K2
Wyciąga i formułuje wnioski z własnych pomiarów i obserwacji.
BK2
K3
Posiada umiejętność pracy zespołowej
BK3
W19
Zna podstawy krystalografii geometrycznej
BW6
Strona 8 z 24
W20
Zna pojęcia związane z grupami przestrzennymi i klasami symetrii
BW6
W21
Zna problematykę polimorfizmu i metody poszukiwania nowych
substancji leczniczych
CW12
U20
Umie dokonać prostej analizy rentgenograficznej
BW6
U21
Umie posługiwać się bazami krystalograficznymi PDB i CSD
BU 17
U22
Umie wykorzystać dane krystalograficzne w analizie strukturalnej
związków
BU12
W22
Zna podstawę działania spektrometru MS oraz metody jonizacji i
analizatory mas stosowane w spektrometrii MS
BW13
W23
Zna możliwości wykorzystania spektrometrii MS w analizie związków
farmaceutycznych
BW13
W24
Zna podział stosowanych metod spektroskopii NMR i EPR.
W25
Zna rodzaje technik stosowanych w spektroskopii NMR i EPR.
W26
Rozumie podstawy fizykochemiczne zjawiska rezonansu magnetycznego
W27
Zna podstawowe problemy rejestracji widm NMR w ciele stałym
W28
Zna techniki wykorzystywane w rejestracji widm 2D NMR w roztworach
W29
U23
Zna możliwości wykorzystywania technik NMR i EPR w badaniach
farmaceutycznych, chemicznych i medycznych.
Przedstawia podstawy teoretyczne różnych rodzajów spektroskopii NMR
(w roztworze, w ciele stałym i zasady mikroobrazowania)
U24
Wyjaśnia podstawy teoretyczne spektroskopii EPR
U25
Posiada umiejętność samodzielnej interpretacji i analizy widm NMR i
EPR.
U26
Zna zasady doboru odpowiednich technik NMR i EPR do problemu
naukowego.
U27
Posiada umiejętność przeprowadzenia (pod kontrolą prowadzącego)
eksperymentu NMR i EPR (przygotowanie próbki, dobór warunków
startowych do przeprowadzenia pomiaru)
U28
Wyjaśnia różnice pomiędzy różnymi technikami 2D NMR w roztworach
K4
Posiada nawyk korzystania z technologii informacyjnych do
wyszukiwania i selekcjonowania informacji niezbędnych do prawidłowego
modelowania wstępnych pomiarów
W30
Zna podstawy metod chemometrycznych oraz analizy dużych zbiorów
danych eksperymentalnych.
BU11, BU12
W31
Zna zasady prawidłowego doboru metody chemometrycznej do
określonego zbioru danych
BU11, BU12
W32
Zna metody klasyczne i instrumentalne stosowane w ocenie jakości
substancji do celów farmaceutycznych z uwzględnieniem związków
Strona 9 z 24
BW13, CW6,
W33
W34
U29
U30
U31
W35
U32
chiralnych oraz w analizie ilościowej w produktach leczniczych.
CW11, CW22
Zna i rozumie metody badań oceny jakości postaci leku.
CW6, CW22,
CW23,
CW29,CW30
Posiada wiedzę na temat walidacji metod, stosowanych analizie
preparatów leczniczych.
Potrafi zaplanować i przeprowadzić badania precyzując cel i właściwie
zinterpretować wyniki.
Stosuje techniki komputerowe do interpretacji wyników analizy i zbierania
informacji o leku
Przeprowadza analizę substancji leczniczych metodami farmakopealnymi
oraz dokonuje jej izolacji z produktu leczniczego
Zna zalecenia EMA odnośnie analizy ryzyka środowiskowego stosowania
leków.
Potrafi wykonać biotest z bakteriami luminescencyjnymi oraz
zinterpretować wyniki.
BW25
CU18
CU19
CU17
DW31
FU1
U33
Potrafi ocenić działanie mutagenne próbki przy użyciu testu Amesa.
FU1
U34
Umie wykonać i zinterpretować analizę fotodegradacji substancji
czynnych leków.
FU1
W36
Zna problematykę polimorfizmu.
U35
Identyfikuje substancje nieorganiczne.
U36
U37
U38
U39
U40
U41
U42
U43
U44
U45
U46
W37
U47
Wykorzystuje wiedzę o właściwościach substancji nieorganicznych w
farmacji.
Dobiera metodę analityczną do rozwiązania konkretnego zadania
analitycznego oraz przeprowadza jej walidację.
Wykonuje analizy jakościowe i ilościowe pierwiastków oraz związków
chemicznych metodami instrumentalnymi oraz ocenia wiarygodność
wyniku analizy w oparciu o metody statystyczne.
Opisuje strukturę i właściwości związków organicznych, wie, jak
otrzymywać związki organiczne w skali laboratoryjnej oraz analizować
wybrane związki organiczne
Przeprowadza kontrolę jakości substancji do celów farmaceutycznych oraz
leków zgodnie z wymaganiami farmakopealnymi; proponuje odpowiednią
metodę analityczną do określonego celu i przeprowadza walidację metody
analitycznej.
Interpretuje wyniki uzyskane w zakresie oceny jakości substancji do celów
farmaceutycznych oraz potwierdza zgodność uzyskanych wyników.
Wykorzystuje metody matematyczne w opracowaniu i interpretacji
wyników analiz i pomiarów.
Obsługuje komputer w zakresie edycji tekstu, grafiki, analizy
statystycznej, gromadzenia i wyszukiwania danych oraz przygotowania
prezentacji.
Wykorzystuje narzędzia informatyczne do opracowywania i
przedstawiania wyników doświadczeń.
Wykorzystuje technologie informacyjne do wyszukiwania potrzebnych
informacji oraz do samodzielnego i twórczego rozwiązywania problemów.
Stosuje techniki komputerowe do interpretacji wyników analizy i zebrania
informacji o leku.
Zna pojęcia związane z toksykologią,
w tym zagadnienia dotyczące metod alternatywnych stosowanych w
toksykologii.
Stosuje odpowiednie metody wnioskowania statystycznego.
Strona 10 z 24
CW12
BU5
BU6
BU7
BU8
BU10
CU2
CU18
BU13
BU15
BU16
BU17
CU19
DW26
BU13, BU14
U48
Potrafi określić zależność cech stosując odpowiednie metody.
BU14
U49
Wykorzystuje pakiet Statistica do analiz statystycznych
BU14
Rozumie komórkowe i molekularne mechanizmy działania leków oraz
wybranych cząsteczek znajdujących się obecnie na etapie oceny
przedklinicznej i klinicznej.
Zna budowę i funkcje poszczególnych receptorów komórkowych dla
cząsteczek biologicznie czynnych.
. Zna klasyfikację poszczególnych receptorów komórkowych oraz potrafi
odróżnić ich poszczególne typy i podtypy.
W38
W39
W40
Zna metodologię wybranych badań receptorowych in vitro.
W41
U51
CW2
FW1
FW1
Potrafi przypisać działanie receptorowe do aktywności poszczególnych
substancji czynnych.
Rozumie i potrafi zidentyfikować zależności pomiędzy strukturą
chemiczną leku a jego aktywnością receptorową.
U50
CW2, DW17
FU1
FU1
U52
Identyfikuje wpływ ekspresji genów na zależność ligand-receptor.
FU1
W42
Zna metody pozyskiwania i produkcji przeciwciał monoklonalnych (mAb)
FW1
W43
Zna techniki obrazowania z wykorzystaniem mAb.
FW1
W44
Zna techniki immunofluorescencyjne z wykorzystaniem mAb.
FW1
Zna zasady stosowania mAb sprzęgniętych z radioizotopami w
diagnostyce, obrazowaniu i leczeniu nowotworów.
Zna techniki stosowania przeciwciał monoklonalnych w wykrywaniu
substancji występujących w bardzo niskich stężeniach.
Zna zasady stosowania mAb jako odtrutki np. w zatruciach glikozydami
naparstnicy. Zna zasady stosowania mAb jako odtrutki np. w zatruciach
glikozydami naparstnicy.
Zna system refundacji i zastosowanie badań klinicznych w procesie
refundacji.
W45
W46
W47
W48
FW1
FW1
FW1
EW36
5. Formy prowadzonych zajęć
Forma
Liczba godzin
Liczba grup
Wykład
216
1
Seminarium
10
1
Ćwiczenia
174
2
6. Tematy zajęć i
treści
kształcenia
W1 Rekombinowane wektory wirusowe AAV.
W2 Krótkie, niekodujące cząsteczki RNA (miRNA, siRNA).
W3 Komórki macierzyste.
W4 Preparaty genowe w Farmakopei.
W5 Budowa białek i ich klasyfikacja strukturalna.
Strona 11 z 24
Minimalna liczba osób
w grupie
W6 Bioinformatyczne, biomedyczne i chemoinformatyczne bazy danych.
W7 Podstawowe pojęcia i metody używane w biologii systemów.
W8 Sekwencjonowanie następnej generacji i metody analizy uzyskanych danych.
W9 Wprowadzenie do analizy filogenetycznej.
W10 Kinetyka reakcji biochemicznych i komputerowe modele sieci biochemicznych.
W11 Nanomateriały do zastosowań medycznych i farmaceutycznych.
W12 Liposomy jako nośniki substancji leczniczych.
W13 Zastosowanie kropek kwantowych i nanocząstek magnetycznych w farmacji i medycynie.
W14 Nanorurki i fulereny jako nośniki substancji leczniczych.
W15 Polimery biomedyczne - struktura, otrzymywanie, właściwości fizykochemiczne i biologiczne.
W16 Polimery biodegradowalne i bioresorbowalne.
W17 Polimery jako nowoczesne nośniki substancji leczniczych, genów i komórek oraz składniki implantów.
W18 Dendrymery w technologii innowacyjnych postaci leków. Dendrymery „domino” - przyszłość
technologii postaci leków.
W19 Koniugaty substancji leczniczych i proleki wielkocząsteczkowe.
W20 Nanoroboty i nanourządzenia w terapii chorób nowotworowych.
W21 Macierze. Działania na macierzach. Macierze transponowane, symetryczne, antysymetryczne. Macierz
odwrotna.
W22. Wyznaczniki. Własności i zastosowania.
W23 Układy równań liniowych. Układy Cramera. Metody eliminacji Gaussa-Jordana i Gaussa. Macierze
elementarne i zastosowanie do wyznaczania macierzy odwrotnej . Rząd macierzy. Twierdzenie
Kroneckera-Capellego i zastosowania.
W24 Przestrzenie wektorowe (informacyjnie). Pojęcie przestrzeni liniowej. Przestrzeń Rn. Podprzestrzenie.
Liniowa zależność i niezależność. Baza i wymiar przestrzeni. Ogólna postać rozwiązania układu równań
liniowych.
W25 Wartości własne i wektory własne. Wyznaczanie wartości własnych i odpowiadających In wektorów
własnych. Diagonalizacja macierzy. Zastosowania do wyznaczania rozwiązania układu równań
różniczkowych zwyczajnych liniowych o stałych współczynnikach.
W26 Liczby zespolone. Postać algebraiczna i trygonometryczna. Wzór de Moivre’a. Postać wykładnicza.
Wzory Eulera.
W27 Równania różniczkowe II-go rzędu. Równania różniczkowe II-go rzędu liniowe – ogólna teoria.
Układy funkcji liniowo niezależne. Wrońskian. Zagadnienia początkowe i brzegowe. Równania
różniczkowe liniowe o stałych współczynnikach. Metoda uzmiennienia stałych. Metoda współczynników
nieoznaczonych.
W28 Całki podwójne.
Strona 12 z 24
W29 Niezbędne pojęcia matematyczne. Postulaty mechaniki kwantowej
kwantowe (cząstka w pudle, oscylator).
Jednowymiarowe modele
W30 Wielowymiarowe modele kwantowe (rotator, atom wodoru, molekularny jon wodoru.
Funkcja falowa wieloelektrodowa.
W31 Metoda wariacyjna. Metoda Hartree-Focka. Własności molekularne (optymalna geometria, rozkład
gęstości elektronowej, drgania normalne, parametry NMR).
W32 Oddziaływania międzycząsteczkowe (metoda supercząsteczki, metoda perturbacyjna) i ich rodzaje
(elektrostatyczne, indukcyjne, dyspersyjne, wymienne).
W33 Metoda funkcjonału gęstości. Własności molekularne cząsteczek i ich oddziaływań.
W34 Elementarne pojęcia termodynamiki statystycznej (zespoły statystyczne, funkcje termodynamiczne).
W35 W7 Metody symulacyjne (mechanika molekularna, dynamika molekularna, metoda Monte Carlo),
metody adaptowane do badań dużych układów biochemicznych.
W36 Definicja, cele, zalety i wady chemii kombinatorycznej. Biopolimery – naturalne biblioteki
kombinatoryczne. Chemiczne aspekty syntezy peptydów.
W37 Metody syntezy kombinatorycznej: synteza split-mix, synteza równoległa. Materiały, aparatura,
odczynniki.
W38 Identyfikacja związków w syntezie kombinatorycznej; biblioteki kodowane. Projektowanie syntezy
kombinatorycznej.
W39 Przykładowe rozwiązania w syntezie kombinatorycznej: synteza substancji leczniczych, synteza
katalizatorów reakcji estryfikacji, synteza oligonukleotydów na ciele stałym, synteza na fagach.
W40 Sprawdzenie wyników samodzielnej pracy studentów w grupach. Dyskusja na temat multimedialnych
prezentacji studentów.
W41 Zielona chemia w syntezie nowych substancji leczniczych - dwanaście zasad zielonej chemii.
Narzędzia do pomiaru parametrów zielonej chemii.
W42 Zielona metryka reakcji. Ekoskala.
W43 Zielone syntezy - katalizatory i rozpuszczalniki. Ocena wybranych syntez pod względem ich
„zieloności”. Dyskusja.
W44 Oddziaływanie promieniowania mikrofalowego z materią. Budowa reaktora mikrofalowego. Różne
typy reaktorów mikrofalowych: laboratoryjne, przemysłowe (przemysł farmaceutyczny, chemiczny,
spożywczy).
W45 Wieloskładnikowa synteza w reaktorze mikrofalowym - związki o aktywności mikrobiologicznej,
przeciwnowotworowej. Zastosowanie promieniowania mikrofalowego do syntezy leków i w kosmetyce.
Dyskusja.
W46 Nowe materiały polimerowe - synteza polimerów ze śladem molekularnym. Definicje, metody syntezy,
badanie właściwości.
W47 Zastosowanie polimerów imprintowanych w analizie farmaceutycznej (aminy biogenne). Nowe
postaci leku. Dyskusja.
W48 Elementy strategii efektywnego modelowania molekularnego.
W49 Aspekty projektowania substancji leczniczych - modyfikacje i ulepszanie metod powszechnie
Strona 13 z 24
stosowanych.
W50 Projektowanie i poszukiwanie cząstki aktywnej, ocena właściwości fizykochemicznych oraz
aktywności biologicznej.
W51 Badanie oddziaływań z DNA na przykładzie analogów pentamidyny.
W52 Poszukiwanie modeli CoMFA na przykładzie układów z 1-alkilo-4-arylopiperazyną.
W 53 Modelowanie molekularne w syntezie imprintowanych polimerów.
W54 Dyskusja na temat multimedialnych zespołowych prezentacji przygotowanych przez studentów.
W55 Podstawy krystalografii geometrycznej. Definicja kryształu, wprowadzenie podstawowych pojęć:
węzeł, prosta sieciowa, płaszczyzna sieciowa, sieć przestrzenna, sieć krystaliczna, komórka elementarna,.
Opis morfologii kryształu. Projekcja stereograficzna, siatka Wulfa, przykładowe projekcje monokryształów.
Operacje i elementy symetrii grup punktowych (klasy symetrii). Złożenie elementów symetrii. Przegląd klas
symetrii. Układy krystalograficzne.
W56 Symetria translacyjna sieci. Sieci Bravais'ego. Strukturalne elementy symetrii. Grupy przestrzenne charakterystyka wybranych prostych grup przestrzennych. Interpretacja informacji zawartych w
Międzynarodowych Tablicach Międzynarodowej Unii Krystalograficznej (IUCr). Graficzne przedstawianie
symboli grup przestrzennych – symbolika międzynarodowa Hermanna-Maugina
W57 Rentgenowska analiza strukturalna. Zjawisko dyfrakcji – dyfrakcja promieni rentgenowskich i
dyfrakcja neutronów. Źródła promieniowania rentgenowskiego i jego oddziaływanie z materią. Warunki
dyfrakcji na kryształach. Równania Lauego i Braggów. Sieć odwrotna, konstrukcja sfery Ewalda.
W58 Wygaszenia refleksów i ich związek z grupami przestrzennymi. Związek intensywności refleksów z
rozkładem gęstości elektronowej w krysztale. Transformacja fourierowska. Czynniki wpływające na
intensywność wiązki ugiętej. Czynnik struktury - pomiar i zastosowanie.
W59 Problem fazowy. Metody bezpośrednie. Mapy gęstości elektronowej. Udokładnienie struktury.
Uogólnienie wyników z wykorzystaniem bazy danych krystalograficznych (CSD).
W60 Badania materiałów polikrystalicznych. Teorie wzrostu kryształów i metody ich hodowania.
W61 Kokrystalizacja, polimorfizm, chiralność i struktura absolutna. Elementy krystalochemii - klasyfikacje
struktur.
W62 Budowa i podział receptorów . Mechanizm oddziaływani ligand –receptor.
W63 Termodynamika oddziaływani ligand –receptor . Rola entropii i solwatacji . Poszukiwanie struktury
wiodącej.
W64 Metody QSAR , COMFA, COMSIA. Budowa modelu farmakoforowego.
W65 Metody poszukiwania nowych leków oparte o strukturę celu molekularnego, procedura dokowani, rola
funkcji oceniających.
W66 Optymalizacja struktury wiodącej pod węglem procesu LADME. Metody QSPR w optymalizacji
biodostępności i farmakokinetyki.
W67 Podstawy NMR.
W68 Model wektorowy.
W69 Relaksacja.
W70 Przesunięcie chemiczne.
W71 Transformacja Fouriera.
Strona 14 z 24
W72 Sprzężenia spinowo-spinowe.
W73 Rejestracja i opracowanie widm.
W74 Budowa spektrometru.
W75 NMR w chemii organicznej.
W76 NMR w ciele stałym.
W77 Obrazowanie NMR (MRI).
W78 Podstawy teoretyczne zjawiska elektronowego rezonansu paramagnetycznego (EPR). Efekt Zeemana,
struktura subtelna i nadsubtelna. Parametry widm EPR.
W79 Zastosowania spektroskopii EPR. Metody sond spinowych i pułapek spinowych.
W80 Budowa i zasad działania spektrometru MS.
W81 Metody jonizacji próbek wykorzystywane w spektrometrii MS.
W82 Analizatory masy stosowane w spektrometrii MS.
W83 Możliwości i przykłady zastosowania spektrometrii MS w analizie farmaceutycznej.
W84 Zastosowanie metod chemometrycznych w analizie dużych zbiorów danych
W85 Wykorzystanie metod sztucznej inteligencji oraz sicie neuronowych w analizie zbiorów danych
W86 Metody PCA oraz metody rozpoznawania wzorca
W87 1H 13C NMR w badaniach metabolitów roślinnych
W88 Metody chromatograficzne sprzężone ze spektrometrią MS w analizie złożonych mieszanin
W89 Farmakopea Polska i Europejska.
W90 Enancjoselektywne metody analizy substancji i produktów leczniczych.
W91 Identyfikacja nieznanej substancji metodą HPLC-MS/MS.
W92 Metoda XRPD (rentgenowskiej dyfraktometrii proszkowej)..
W93 Walidacja metod analitycznych stosowanych w badaniach produktów leczniczych
W94 Absorpcyjna spektrometria atomowa (ASA) i spektroskopia fluorescencji rentgenowskiej z dyspersją
długości fali (WD-XRF).
W95 Zaawansowane metody spektrofotometrii UV/Vis.
W96 Spektroskopia oscylacyjna IR i Ramana.
W97 Nowoczesne techniki spektroskopii NMR.
W98 OMICS w toksykologii: toksykogenomika, toksykoproteomika, toksykometabolomika.
W99 Metody obrazowania molekularnego.
W100 Wprowadzenie do nanotoksykologii.
W101 Toksykologia alternatywna „3R”.
Strona 15 z 24
W102 wnioskowania statystycznego
W103 Zależność i niezależność cech. Korelacja Pearsona i Spearmana
W104 Regresja liniowa
W115 Walidacja metod analitycznych
W106 Testy nieparametryczne
W107 Receptory i mechanizmy przekazywania sygnału w komórce. Klasyfikacja receptorów.
W108 Wpływ cząsteczek biologicznie czynnych na aktywność receptorów. Zależność między strukturą
chemiczną leku a działaniem receptorowym .
W109 Metodologia badań receptorowych in vitro.
W110 Ekspresja genów a zależność ligand – receptor.
W111 Znaczenia badań receptorowych dla projektowania nowatorskich strategii terapeutycznych.
W112 Przegląd metod diagnostycznych wykorzystujących przeciwciała monoklonalne (mAb) In vitro i In
vivo. Metody pozyskiwania i produkcji przeciwciał o określonej swoistości.
W113 Techniki obrazowania z wykorzystaniem mAb (mikroskopia, cystometria przepływowa, techniki z
wykorzystaniem znaczników fluorescencyjnych, kropki kwantowe).
W114 mAb i fragmenty przeciwciał sprzęgnięte z radioizotopami w diagnostyce, obrazowaniu i leczeniu
nowotworów.
W115 Metody immunofluorescencyjne oparte o wykorzystanie mAb.
W116 Zastosowanie przeciwciał monoklonalnych oparte na wykrywaniu substancji występujących w bardzo
niskich stężeniach np.: toksyn, farmaceutyków, narkotyków czy hormonów ciążowych. Zastosowanie jako
odtrutki np. w zatruciach glikozydami naparstnicy.
W117 Specyfikacja produktu leczniczego
W118Procedury rejestracji leków w Polsce i UE.
C1
1. Podstawy obsługi programu HyperChem
2. Obliczenia z wykorzystaniem metod Mechaniki Molekularnej
C2
1. Analiza Konformacyjna:
2. Dynamika Molekularna
C3
1. Obsługa pakietu Gaussian
2. Obliczenia z wykorzystaniem metod pól empirycznych
C4
Obliczenia z wykorzystaniem metod ab-initio oraz DFT
C5
Strona 16 z 24
1. Wyznaczanie parametrów spektralnych (NMR , IR) na podstawie obliczeń kwantowych
2. Interpretacja danych spektroskopowych(NMR, IR) na podstawie obliczonych
parametrów teoretycznych
C6
1. Podstawy obsługi programu Sybyl
2. Budowanie bazy kombinatorycznej związków
3. Przygotowanie struktury białkowej do wykorzystania w procesie projektowania leków
C7
Wykorzystanie metod dokowania w projektowaniu leków ( structure based drug design).Analiza danych ,
określenie oddziaływań wpływających na stabilizacje oddziaływania ligand białko
C8
Projektowania leków oparte o strukturę związków aktywnych (ligand based drug design) metody QSAR .
Budowa modelu farmakoforowego
C9
1. Podstawy systemu operacyjnego Linux
2. Ćwiczenia z analizy filogenetycznej białek
C10
Modelowanie homologiczne I
- podstawowe pojęcia i założenia modelowania homologicznego
- analiza sekwencji białek przy zastosowaniu metod sekwencyjnych, profilowych, meta profilowych,
hybrydowych i ab initio
- metody poszukiwaniu wzorców do modelowania homologicznego białek
C11
Modelowanie homologiczne II
- modelowanie homologiczne przykładowego białka
a) wybór wzorca
b) uliniowienie strukturalne wzorców
c) uliniowienie sekwencyjno-strukturalne wzorców z celem modelowania
d) modelowanie elementów rdzeniowych i pętli
e) ocena zaproponowanego modelu
C1 2
Analiza genomowa:
- podstawy statystyki stosowanej w analizie genomów
- analiza danych z sekwencjonowania następnej generacji
C13 Elementy symetrii makroskopowej. Kombinacje elementów symetrii i klasy symetrii. Wykreślanie
projekcji elementów symetrii grup punktowych.
C14 Strukturalne elementy symetrii. Zapoznanie
osiowych, diagonalnych i diamentowych.
równoważnych. Wtórne elementy symetrii i
Tablicami Krystalograficznymi. Najważniejsze
kolokwium.
się z działaniem osi śrubowych, płaszczyzn ślizgowych
Wyznaczanie kierunków i punktów symetrycznie
grupy przestrzenne. Ćwiczenia z Międzynarodowymi
zadania i problemy krystalograficzne – powtórka przed
C15 Analiza rentgenograficzna struktury cząsteczki i kryształu wybranego, prostego związku chemicznego.
C16 Zapoznanie się z bazami danych strukturalnych:
- Bazą związków organicznych CSD (Cambridge Structural Database),
- Bazą związków nieorganicznych ICSD;
- Bazą makromolekuł (Protein Data Bank);
Praca z CSDB.
Strona 17 z 24
C17 Rejestracja i identyfikacja widm substancji leczniczych 1D i 2D NMR w roztworze.
C18 Charakterystyka spektroskopii NMR w ciele stałym – zapoznanie z procedurami niezbędne do
przeprowadzenia pomiarów wysokiej zdolności rozdzielczej (np. na wybranych produktach leczniczych)
C19 Analiza produktów spożywczych metodą protonowego obrazowania MRI.
C20 Identyfikacja substancji paramagnetycznych na podstawie widma EPR. Badanie czynników
wpływających na kształt widma
C21Sondy spinowe i pułapki spinowe w spektroskopii EPR – badanie układów wielofazowych i
wieloskładnikowych.
C22 Badanie tożsamości, czystości i zawartości leków jednoskładnikowych dostępnych w obrocie
aptecznym w różnych postaciach (stała, półstała i płynna).
C23 Rozdział i oznaczanie ilościowe enancjomerów leków chiralnych.
C24 Wykorzystanie pośrednich metod rozdziału enencjomerów do oznaczania leków techniką HPLC.
C25 Identyfikacja nieznanej substancji metodą HPLC-MS/MS.
C26 Identyfikacja składu fazowego mieszaniny przy pomocy metody XRPD (rentgenowskiej dyfrakcji
proszkowej.
C27 Oznaczanie wybranych pierwiastków metodą spektrometrii mas z plazmą indukcyjnie sprzężoną (ICPMS).
C28 Analiza działania mutagennego przy użyciu testu Amesa.
C29 Kompleksowa analiza fotodegradacji leków przy użyciu HPLC oraz testu oceny cytotoksyczności.
C30 Zalecenia EMA odnośnie oceny ryzyka środowiskowego stosowania leków.
C31 Badanie metodą ASA zawartości metali ciężkich w wybranych preparatach farmaceutycznych i
tkankowych.
C32 Badanie metodą WD-XRF zawartości krzemu w wybranych preparatach ziołowych.
C33 Wyznaczanie metodą UV/Vis stałej trwałości kompleksu β-cyklodekstryny z wybraną pochodną
adamantanu (amantadyna, rymantadyna lub memantyna).
C34 Badanie powierzchni tabletek powlekanych metodą FT-IR z detekcją fotoakustyczną PAS (specjalny
detektor, rejestracja widma oscylacyjnego warstwy powierzchniowej) oraz identyfikacja związków
organicznych w tabletkach metodą mikroskopii w średniej podczerwieni (metoda spektroskopii oscylacyjnej
FT-IR, zastosowanie mikroskopu na podczerwień).
C35 Spektroskopia 13C w roztworze:w badaniach substancji aktywnych (wykonanie widm 1D ( 1H i
DEPT) i 2D (1H COSY, 1H-13C HETCOR) i ich interpretacja).
C36 Spektroskopia 15N NMR w roztworze w badaniach substancji aktywnych.
C37 Zastosowanie spektroskopii
13
C i 15N CP/MAS NMR w badaniach substancji aktywnych.
C38 Analiza zależności zmiennych ilościowych (regresja liniowa, korelacja).
C39 Analiza danych jakościowych.
C40 Metody nieparametryczne.
Strona 18 z 24
13
C,
C41 Komputerowy program Statistica.
7. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia
Symbol
przedmiotowe
go efektu
kształcenia
np. W1, U1,
K1
W1, W2, W3,
W4
U1, U2, U3, U4
W5, W6
W7 – W10
U5 – U10
K1, K2, K3
W11. W12,
W13, W14
W15 – W16,
U11, U12
U13, U14, U15,
U16
Symbole form
prowadzonych zajęć
np. W, S, C
Sposoby weryfikacji efektu kształcenia
Kryterium zaliczenia
Pole definiuje metody
wykorzystywana do oceniania
studentów np.: kartkówka,
kolokwium, raport z ćwiczeń itp.
Każda metoda powinna być opisana
odrębnie.
Kryterium zaliczenia
W1, W2, W3, W4
Obecność na wykładzie – 10 pkt.
W5- W10
W62 – W66
C1 – C12
Obecność na ćwiczeniach – 20pkt.
Realizacja projektu -40 pkt.
W11 – W20
W21 – W28
W17, W18,
U17, U19,
K1, K2, K3
W36 _W54
W19, W20, W21
U20, U21,U22
W55 – W61
C13 – C16
Obecność na wykładach- 5p
Test końcowy- 10p
Obowiązkowa obecność na zajęciach
Wykłady – obecność ----------10pkt
Przygotowanie prezentacji -15 pkt.
Sprawdzian końcowy
- 5 pkt
Wykłady – obecność 10pkt
Sprawdzian końcowy - 20 pkt.
W80, W81, W82,W83
W22, W23
W24 – W29
U23 – U28, K2,
K4
W29 – W35
W67 – W79
C17 – C21
Obowiązkowa obecność na wszystkich
ćwiczeniach
Ćwiczenia 15 pkt.
Sprawdzian końcowy 30 pkt.
Maksymalna liczba punktów 10
Minimalna liczba punktów 4
W84, W85, W86, W87,
W88
W32, W33, U29,
U30, U31
W89, W90
C22,C23, C24
Wykłady – obecność 2pkt
Ćwiczenia – wykonanie ćwiczeń – 8 pkt.
- raporty
- 8 pkt.
W32, W33,
W34, U29, U30,
U31
W91, 92, W93, C25,
C26, C27
Wykłady obecność – 7 pkt.
Ćwiczenia – 15 pkt.
W35, U32, U33,
U34
C28, C29, C30,
Ćwiczenia-wykonanie i raport – 15 pkt.
W31, W30
Strona 19 z 24
W32, W33,W36,
U35-U46, K1-K3
W37
U47, U48, U49
W38, W39,
W40, W41, U50,
U51, U52
W42, W43,
W44, W45,
W46, W47
W48
W94, W95, W96, W97,
C31, C32, C33, C34, C35,
C36, C37
Ćwiczenia (aktywność, kartkówka,
wykonanie) – 12 pkt.
Wykłady (obecność) 2 pkt.
Kolokwium – 18 pkt.
W98- W101
W102 – W106
C38 –C41
Wykłady – obecność 5 pkt.
Praca domowa – 5 pkt.
Kolokwium - 10 pkt.
W107 – W111
Wykłady-obecność – 5 pkt.
W112, W113, W114,
W115, W116
Repetytorium pisemne – 5 pkt.
W117, W118
8. Kryteria oceniania
Forma zaliczenia przedmiotu: np. egzamin testowy, egzamin praktyczny lub zaliczenie bez oceny (nie dotyczy)
Suma punktów w semestrze VII i VIII
2,0 (ndst)
Poniżej 152 pkt.
Suma punktów w semestrze IX
Poniżej 86 pkt.
3,0 (dost)
153-173 punktów – 3 (dst)
87-98 punktów – 3 (dst)
3,5 (ddb)
174-190 punktów – 3,5 (dość db)
99-108 punktów – 3,5 (dość db)
4,0 (db)
191-210- punktów – 4 (db)
109-119 punktów – 4 (db)
4,5 (pdb)
209-230 punktów – 4,5 (ponad db)
120-131 punktów – 4,5 (ponad db)
5,0 (bdb)
231-255 punktów – 5 (bdb)
Strona 20 z 24
132-145 punktów – 5 (bdb)
9. Literatura
Literatura obowiązkowa
1.Farmakopea Polska VI, VII, VIII, IX;
2.Cygański A., Metody spektroskopowe w chemii analitycznej, Wydawnictwo WNT, 2012;
3.Zając M., Jelińska A., Muszalska I., Nogowska M., Stanisz B., Ocena jakości substancji leczniczych
i preparatów farmaceutycznych według wymagań farmakopealnych i ICH, Wydawnictwo
Kontekst, Poznań, 2000;
4.Zając M., Jelińska A.; Ocena jakości produktów leczniczych, Wydawnictwo Naukowe
Uniwersytetu Medycznego w Poznaniu, 2010;
5.Witkiewicz Z.; Podstawy chromatografii, WNT, Warszawa, 2005;
6.Szczepaniak W.; Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, Warszawa, 2012;
7. Paruszewski R. i wsp.; Ilościowa analiza środków leczniczych, AM Warszawa;
8.Pawiński T, i wsp.; Analiza jakościowa środków leczniczych. Skrypt do
ćwiczeń z Chemii Leków, WUM 2014;
9. Zejc A., Gorczyca M.; Chemia leków, PZWL Warszawa 2009;
10.Patrick G.; Chemia leków – krótkie wykłady, PWN Warszawa 2009;
11.Zając M., Pawełczyk E., Jelińska A.; Chemia leków, AM Poznań 2006;
12.E. Pawełczyk i wsp., Chemiczne mechanizmy działania leków; AM
Poznań 1995;
13.Fitak B.; Podstawowe metody badania tożsamości substancji
farmaceutycznych; AM, Warszawa 1999;
14.Nomenklatura związków organicznych : PTCh, Warszawa 1994,
15.Szala S. Terapia genowa. Wydawnictwo Naukowe PWN, 2003
16. Stokłosowa S. Hodowla komórek i tkanek. Wydawnictwo Naukowe PWN, 2006
17.Bioinformatyka. Podręcznik do analizy genów i białek. A.D. Baxevanis, B.F.F. Quellette, PWN,
2005
18. Bioinformatyka i ewolucja molekularna. P.G. Higgs, T.K. Attwood, PWN, 2008
19. Pod. red. Z. Florjańczyk, S. Pęczek. Chemia polimerów. Tom I, II i III. Oficyna Wydawnicza
Politechniki Warszawskiej, Warszawa, 2001.
20. J. F. Rabek. Współczesna wiedza o polimerach. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa,
2009.
21 M. Nałęcz. Biocybernetyka i inżynieria biomedyczna 2000. Tom IV. pod red. S. Błażewicz, L.
Stoch. Biomateriały. Akademicka Oficyna Wydawnicza EXIT, Warszawa 2003.
22. Wybrane artykuły przeglądowe dotyczące innowacyjnych postaci leków opublikowane w
renomowanych czasopismach naukowych.
23. Pawełczyk E., Zając M.: Walidacja metod analizy chemicznej, AM,
Poznań, 1999;
24. Gabrielsson J., Weiner D., Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Data Analysis, Swedish
Pharmaceutical Press, Stockholm 2000;
25. Chmaj J.: Matematyka stosowana. Wykłady i ćwiczenia. 2015. Internet.
26. Richard B. Silverman. Chemia organiczna w projektowaniu Leków. Wydawnictwo NaukowoTechniczne. Warszawa 2004.
Strona 21 z 24
27. Andrew Leach : Molecular Modelling: Principles and Applications Pearson Educational Limited
28. Orzechowska-Juzwenko K., Farmakologia Kliniczna, znaczenie w praktyce medycznej, Górnicki
Wydawnictwo Medyczne, Wrocław, 2006;
29. Burton M.E., Shaw L.M., Schentag J.J., Evans W.E., Applied Pharmacokinetics &
Pharmacodynamics. Principles of Therapeutic Drug Monitoring, Lippincott Williams&Wilkins,
Philadelphia , 2006;
30. Therapeutic Drug Monitoring, clinical guide, Abbott Laboratories, 2010;
31. J. Chmaj Testy statystyczne;
32. J. Kurkowiak Analiza statystyczna z pakietem Statistica materiały
dostępne w wersji elektronicznej;
33. Nowak J.Z., Zawilska J.B. (red.) Receptory i mechanizmy przekazywania sygnału; Wyd. Nauk.
PWN, Warszawa, 2004;
34. Nowak J.Z., Zawilska J.B. (red.)Receptory: struktura, charakterystyka, funkcja; Wyd. Nauk.
PWN, Warszawa, 2004;
35. Brunton Laurence L., Laza John S., Parker Keith L. Farmakologia Goodmana &Gilmana; Wyd.
Czelej, Warszawa, 2010;
36. Lauffenburger D. Receptors: Models for Binding, Trafficking, and Signaling, 1993;
Literatura uzupełniająca:
1.Kealey D., Haines P.J.; Chemia analityczna – krótkie wykłady; PWN, Warszawa 2009;
2.Minczewski J., Marczenko Z.; Chemia analityczna, PWN, 2005
3.Kocjan R.; Chemia analityczna, PZWL, 2002;
4.Steinhilber D., Schubert-Zsilavecz M., Roth H. J.; Chemia Medyczna, MedPharm Polska 2012;
5.Kwapiszewski W., Krężel J.; Podstawy nazewnictwa leków, AM, Łódź 1996;
6.Patrick G.L.; Chemia organiczna – krótkie wykłady; PWN, Warszawa 2008;
7.Kostowski W., Kulikowski P.; Farmakologia; PZWL 2010;
8.Kostowski W., Herman Z.S.; Farmakologia; PZWL 2005;
9.European Pharmacopoeia 2005 – 2013;
10.Patrick G.L.; Chemia medyczna; WNT 2003;
11.Skrypt z chemii leków. Chemiczna analiza środków leczniczych (leki proste): R. Kasprzykowska,
A.S. Kołodziejczyk: Uniwersytet Gdański, Gdańsk 2010;
12.Silverstein R.M., Webster F.X., Kremle D.J.; Spektroskopowe metody identyfikacji związków
organicznych, PWN, Warszawa, 2007;
13. Z. Kęcki, Podstawy spektroskopii molekularnej, PWN, Warszawa 1992;
14. Red. A. Hryniewicz, E.Rokita, Fizyczne metody badań w biologii, medycynie i ochronie
środowiska, PWN, Warszawa 1999;
15. R.M. Silverstein, F.X. Webster, D.J. Kiemle, Spektroskopowe metody identyfikacji związków
organicznych, PWN, Warszawa 2012;
16. Red. W. Zieliński, A. Rajca, Metody spektroskopowe i ich zastosowanie do identyfikacji
związków organicznych, WNT, Warszawa 2000;
17. Piotrowski J.K. ,Podstawy toksykologii, Wydawnictwa NT, Warszawa 2006;
18.Watkins, III, J.B., Klaassen C.D., Casarett and Doull's Essentials of Toxicology, McGraw-Hill
Professional”, 2nd edition (July 12, 2010);
19. Klaassen C.D., Watkins III J.B., wyd.I Zielińska-Psuja B., Sapota A., „Casarett&Doull Podstawy
toksykologi, MedPharm Polska, 2014;
20. Ross S.M., Introduction to Probability and Statistics for Engineers and Scientists;
Strona 22 z 24
21. Wayne W. D., Biostatistics: A foundation for analysis in the health Science;
10. Kalkulacja punktów ECTS (1 ECTS = od 25 do 30 godzin pracy studenta)
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
Wykład
216
Seminarium
10
Ćwiczenia
174
Samodzielna praca studenta (przykładowe formy pracy): W tym polu opisujemy nakład samodzielnej pracy
przeciętnego studenta konieczny aby zaliczyć przedmiot. W kalkulacji należy uwzględnić m.in. konieczność
przygotowania się do zajęć, wykonania pracy domowych, przygotowania się do zaliczeń itp.
Przygotowanie studenta do zajęć
180
Przygotowanie studenta do zaliczeń
90
Przygotowanie raportów
30
Razem
700
27
11. Informacje dodatkowe
Informacje dotyczące przedmiotu, miejsca odbywania się i terminu zajęć umieszczone są w przewodniku
dydaktycznym, gablocie przy wejściu do Zakładów. Konsultacje udzielane są w godzinach pracy Zakładów.
Zaliczenie zajęć blokowych odbywa się rocznie przez opiekuna bloku.
Ocena wynika z punktacyjnego systemu zaliczenia:
- za każdy przedmiot w bloku student może uzyskać maksymalnie tyle punktów, ile wynosi liczba godzin
zajęć realizowanych w jednostce;
- do zaliczenia semestru należy uzyskać co najmniej 60% całkowitej liczby punktów w danym semestrze;
- zaliczenie każdego przedmiotu wymaga uzyskania minimum 40% możliwych punktów w danej jednostce;
- jednostki prowadzące zajęcia dydaktyczne decydują o sposobie przyznawania punktów z danego
przedmiotu.
Do zaliczenia FBP Projektowanie leków studenta obowiązuje zebranie z każdego modułu w semestrze
minimum 40 % punktów możliwych do zdobycia. Jednak łącznie ze wszystkich modułów w semestrze ilość
zdobytych punktów musi stanowić 60 % możliwych do zdobycia.
Zakład Chemii Leków - Dr Dariusz Maciej Pisklak
[email protected]
Nie zapewniamy środków ochrony osobistej (rękawiczki, fartuchy, okulary, obuwie ochronne).
Strona 23 z 24
Podpis Kierownika Jednostki
Podpis osoby odpowiedzialnej za sylabus
Strona 24 z 24

Projektowanie leków - Wydział Farmaceutyczny

Transkrypt

Podobne dokumenty

Plan inwestycyjny zabezpieczenia technicznego na rok …………

18 kwietnia 2016 r. Godzina 10-13 ORGANIZACJA OPIEKI NAD

1. Metryczka 2. Cele kształcenia 3. Wymagania wstępne

KARTA PRÓBY NA STOPIEŃ BISZKOPTA Imię i

Dokumentacja fotograficzna mostu na rzece Wisłok w ciągu drogi

Załącznik nr 7. Formularz oceny recenzenta

Język angielski - Wydział Farmaceutyczny

Diagnostyka hematologiczna

Umiejętność z PP Wymagania szczegółowe Uczeń

OŚWIADCZENIE KIEROWNIKA PROJEKTU